Summary

הכנה והתרבות של שמיעתית פרוסות עוף גזע המוח

Published: March 21, 2011
doi:

Summary

גזע המוח השמיעתית עוף מורכבת גרעינים אחראי לעיבוד צליל binaural. הכנה אחד פרוסה העטרה שומרת את כל המעגלים, בעוד גישה תרבותית מספק הכנה מיוחדת כדי לחקור את התפתחות מבנה ותפקוד עצבי השמיעה ברמה המולקולרית, התאית הרשת.

Abstract

גזע המוח השמיעתית עוף היא מערכת מבוססת מודל, שבו נעשה שימוש נרחב כדי ללמוד את האנטומיה והפיזיולוגיה של עיבוד שמיעתי בתקופות דיסקרטי הפיתוח 1-4, כמו גם מנגנוני קידוד הזמני במערכת העצבים המרכזית 5-7.

כאן אנו מציגים שיטה להכין עוף גזע המוח השמיעתית פרוסות כי ניתן להשתמש הפרוצדורות חריפה או פרוסות תרבות organotypic לטווח ארוך מניפולציות ניסיוני.

גזע המוח השמיעתית עוף מורכב angularis גרעין, זית magnocellularis, laminaris מעולה. גרעינים אלה אחראי לעיבוד צליל binaural חד ההכנות פרוסה העטרה לשמר את המעגלים כולו. בסופו של דבר, תרבויות פרוסה organotypic יכול לספק את ההזדמנות כדי לתפעל מספר פרמטרים התפתחותיים כגון הפעילות הסינפטית, ביטוי של מרכיבים טרום postsynaptic, ביטוי של רגישות להיבטים השליטה גן ביטוי ההפרש

גישה זו יכולה לשמש כדי להרחיב את הידע הכללי על התפתחות המעגל העצבי עידון, והתבגרות.

Protocol

1. הכנת שטח הביתור ברציפות נוזל השדרה בועה מלאכותית מוחין (ACSF) בתערובת של 95% O 2 / 5% CO 2 (pH שבין 7.2-7.4, osmolarity 295-310 mOsm / ליטר). בעוד ACSF מבעבעת, נקי עבודה עם שטח EtOH 70%. כמו כן לנקות את vibratome ואת ?…

Discussion

במשך כמה עשורים, להכנת פרוסה חריפה של גזע המוח עוף שימש ללמוד עיבוד שמיעתי 9, 10. גישה זו סיפקה כמות עצומה של חוץ גופית נתונים פיזיולוגיים על עיבוד binaural משני מצבים התפתחותיים בוגרת 4, 11, 12. הרבה ידוע על המעגל הזה מאוד מיוחדים ואת תפקיד גרעין כל משחק בעיבוד…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

בהווה ובעבר חברי רובל מעבדה.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Chicken ACSF        
NaCl   Fisher Scientific M-11624 130 mM
NaHCO3   Fisher Scientific M-10576 26 mM
KCl   Sigma P-9333 3 mM
NaH2PO4   Sigma S-8282 1.25 mM
Glucose   Sigma G-7528 10 mM
MgCl2   Fisher Scientific M33-500 1 mM
CaCl2   Acros Organics 423525000 2 mM
Chicken culture medium (store at 4°C)        
advanced minimum essential medium (with NEAA, sodium pyruvate at 110 mg/l, without L-glutamate)   Gibco Invitrogen 12492-013 48.00%
Earl’s balanced salt solution   Sigma E-2888 24.00%
L-glutamine (200 mM)   Sigma G-7513 1.00%
Glucose solution (200 g/l, sterile filtered)   Sigma G-7528 2.75%
horse serum (heat inactivated, sterile filtered)   Sigma H-1138 24.00%
Penicillin-streptomycin*   Sigma P-0781 1.00 ml
* = Add to 100 ml culture medium if needed to prevent contamination
Specific equipment        
Millicell-CM cell culture inserts PICMORG50 Millipore    
6-well plate 6 Well Cell Culture Cluster Corning Incorporated    
Incubator Forma Scientific CO2 Water Jacketed Incubator Forma Scientific    

References

  1. Howard, M. A., Burger, R. M., Rubel, E. W. A developmental switch to GABAergic inhibition dependent on increases in Kv1-type K+ currents. J Neurosci. 27, 2112-2123 (2007).
  2. Kuba, H., Koyano, K., Ohmori, H. Development of membrane conductance improves coincidence detection in the nucleus laminaris of the chicken. J Physiol. 540, 529-542 (2002).
  3. Gao, H., Lu, Y. Early development of intrinsic and synaptic properties of chicken nucleus laminaris neurons. Neuroscience. 153, 131-143 (2008).
  4. Sanchez, J. T., Wang, Y., Rubel, E. W., Barria, A. Development of glutamatergic synaptic transmission in binaural auditory neurons. J Neurophysiol. 104, 1774-1789 (2010).
  5. Jackson, H., Hackett, J. T., Rubel, E. W. Organization and development of brain stem auditory nuclei in the chick: ontogeny of postsynaptic responses. J Comp Neurol. 210, 80-86 (1982).
  6. Rubel, E. W., Parks, T. N. Organization and development of brain stem auditory nuclei of the chicken: tonotopic organization of n. magnocellularis and n. laminaris. J Comp Neurol. 164, 411-433 (1975).
  7. Rubel, E. W., Smith, D. J., Miller, L. C. Organization and development of brain stem auditory nuclei of the chicken: ontogeny of n. magnocellularis and n. laminaris. J Comp Neurol. 166, 469-489 (1976).
  8. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. J Neurosci Methods. 37, 173-182 (1991).
  9. Reyes, A. D., Rubel, E. W., Spain, W. J. Membrane properties underlying the firing of neurons in the avian cochlear nucleus. J Neurosci. 14, 5352-5364 (1994).
  10. Monsivais, P., Rubel, E. W. Accommodation enhances depolarizing inhibition in central neurons. J Neurosci. 21, 7823-7830 (2001).
  11. Lu, T., Trussell, L. O. Development and elimination of endbulb synapses in the chick cochlear nucleus. J Neurosci. 27, 808-8017 (2007).
  12. Kuba, H., Yamada, R., Fukui, I., Ohmori, H. Tonotopic specialization of auditory coincidence detection in nucleus laminaris of the chick. J Neurosci. 25, 1924-1934 (2005).
  13. Trussell, L. O. Cellular mechanisms for preservation of timing in central auditory pathways. Curr Opin Neurobiol. 7, 487-492 (1997).
  14. Trussell, L. O. Synaptic mechanisms for coding timing in auditory neurons. Annu Rev Physiol. 61, 477-496 (1999).
  15. Sorensen, S. A., Rubel, E. W. The level and integrity of synaptic input regulates dendrite structure. J Neurosci. 26, 1539-1550 (2006).

Play Video

Cite This Article
Sanchez, J. T., Seidl, A. H., Rubel, E. W., Barria, A. Preparation and Culture of Chicken Auditory Brainstem Slices. J. Vis. Exp. (49), e2527, doi:10.3791/2527 (2011).

View Video