Summary

Isolamento da medula óssea de camundongos neonatais e preparação de macrófagos derivados da medula óssea

Published: May 24, 2024
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Summary

Este protocolo descreve um método não enzimático e direto para isolar células da medula óssea de camundongos neonatais de 7 a 9 dias de idade e gerar macrófagos diferenciados usando um sobrenadante de células L929 como fonte de fator estimulador de colônias de granulócitos (M-CSF). Os macrófagos derivados da medula óssea foram posteriormente analisados quanto aos antígenos de superfície F4/80, CD206, CD11b e competência funcional.

Abstract

Várias técnicas para isolar a medula óssea de camundongos adultos foram bem estabelecidas. No entanto, isolar a medula óssea de camundongos neonatais é desafiador e demorado, mas para alguns modelos, é translacionalmente relevante e necessário. Este protocolo descreve um método eficiente e direto para preparar células da medula óssea de filhotes de 7 a 9 dias de idade. Essas células podem então ser isoladas ou diferenciadas em tipos específicos de células de interesse. Os macrófagos são células imunológicas cruciais que desempenham um papel importante na inflamação e infecção. Durante o desenvolvimento, os macrófagos neonatais contribuem significativamente para a remodelação tecidual. Além disso, o fenótipo e as funções dos macrófagos neonatais diferem daqueles de seus homólogos adultos. Este protocolo também descreve a diferenciação de macrófagos neonatais das células isoladas da medula óssea na presença de meio condicionado por L929. Marcadores de superfície para macrófagos neonatais diferenciados foram avaliados por meio de análise por citometria de fluxo. Para demonstrar a funcionalidade, a eficiência fagocítica também foi testada usando Escherichia coli conjugada com corante sensível ao pH.

Introduction

A medula óssea envolve populações de células-tronco hematopoiéticas e mesenquimais que são auto-renováveis e podem ser diferenciadas em várias linhagens celulares. As células-tronco hematopoiéticas na medula óssea dão origem a linhagens mieloides e linfóides1. As células-tronco mesenquimais produzem osteoblastos (osso), adipócitos (gordura) ou condrócitos (cartilagem)2. Essas células têm múltiplas aplicações no campo da biologia celular e engenharia de tecidos, incluindo terapia gênica 3,4. As células progenitoras presentes na medula óssea se diferenciam em tipos celulares específicos na presença de fatores de crescimento específicos da linhagem. A eritropoietina promove a proliferação de células progenitoras eritroides, o fator estimulador de colônias de granulócitos (G-CSF) estimula o crescimento de colônias de neutrófilos e a trombopoetina regula a produção de plaquetas como alguns exemplos de fatores de crescimento específicos da linhagem5. O FACS marcado com antígeno de superfície celular e a classificação de células ativadas por magnetismo (MACS) são métodos bem estabelecidos para isolamento e purificação dos tipos específicos de células derivadas da medula óssea6.

Embora os estudos neonatais estejam avançando para encontrar as causas das mortes neonatais e abordar as complicações durante os partos prematuros, o desenvolvimento terapêutico direto continua sendo uma necessidade médica não atendida. Smith e Davis afirmaram: “Os pacientes pediátricos permanecem órfãos terapêuticos”7. Existem vários desafios, como amostras pequenas, efeitos do resultado ao longo da vida e questões éticas na obtenção de consentimento em estudos clínicos de neonatos8. Portanto, há uma alta demanda por modelos de estudo in vivo e in vitro específicos para neonatos para alcançar relevância translacional. Devido às semelhanças entre os níveis anatômicos e teciduais, períodos gestacionais curtos e tamanhos de ninhada, os roedores são o sistema modelo de mamíferos mais estudado.

Aqui, descrevemos um procedimento detalhado, altamente viável e reprodutível para isolar a medula óssea de filhotes de camundongos de 7 a 9 dias de idade e sua capacidade de se diferenciar em macrófagos. No entanto, uma variedade de linhagens celulares pode ser alcançada com o uso de sinais de diferenciação distintos. Também demonstramos a presença de marcadores de superfície celular e a presença de atividade fagocítica in vitro esperada para macrófagos derivados da medula óssea (BMDMs).

Protocol

Todos os procedimentos foram aprovados pelos Comitês Institucionais de Cuidados e Uso de Animais da Virgínia Ocidental e foram realizados seguindo as recomendações do Guia para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório do Conselho Nacional de Pesquisa. Filhotes de camundongos C57BL/6J foram usados para este estudo. Os detalhes de todos os reagentes e equipamentos utilizados estão listados na Tabela de Materiais. 1. Preparação de mídia Prepar…

Representative Results

Usando o método descrito neste estudo, 25 a 37 milhões de células da medula óssea podem ser isoladas com sucesso de uma ninhada de cinco filhotes de camundongos C57BL / 6. Este método foi validado com tamanhos de ninhada que variam de 5 a 7 filhotes. A idade mínima para isolamento em nossos experimentos foi de 7 dias. Dependendo do tamanho da ninhada e do número de células necessárias para o experimento ser inferior a um milhão, os pesquisadores podem tentar esse protocolo para camundongos com menos de 7 dias d…

Discussion

Pesquisas envolvendo modelos de camundongos neonatais podem apresentar uma série de desafios. Os neonatos têm um sistema imunológico em desenvolvimento que é único em comparação com os adultos8. Como tal, os dados gerados a partir de modelos animais adultos não devem ser considerados aplicáveis a recém-nascidos, e vários trabalhos publicados articularam bem essa ideia18,19. Portanto, modelos específicos para neonatais e fontes …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi apoiado pelo National Institutes of Health [R01 AI163333] para CMR. Reconhecemos o apoio financeiro adicional fornecido à Instalação de Citometria de Fluxo e Núcleo de Célula Única da West Virginia University pelas seguintes doações: WV CTSI grant GM104942, Tumor Microenvironment CoBRE grant GM121322 e NIH grant OD016165.

Materials

40 µm strainer Greiner 542040 Cell culture
96 well round (U) bottom plate Thermo Scientific 12-565-65 Cell culture
Anti-mouse CD11b-BV786 BD Biosciences 740861 FACS analysis
Anti-mouse CD206-Alexa Fluor488 BD Biosciences 141709 FACS analysis
Anti-mouse F4/80-PE BD Biosciences 565410 FACS analysis
Countess3 Thermo Scientific TSI-C3ACC Automated cell counter
DMEM Hyclone SH30022.01 Cell culture
DMSO VWR WN182 Cell culture
DPBS, 1x Corning 21-031-CV Cell culture
Escherichia coli O1:K1:H7 ATCC 11775 Infection
EVOS FL  Invitrogen 12-563-649 Cell Imaging System 
FBS Avantor  76419-584 Cell culture
FluoroBright BMDM Thermo fisher Scientific A1896701 Dye free culture media
Glutamine Cytiva SH30034.01 Cell culture
HEPES Cytiva SH30237.01 Cell culture
L-929 ATCC Differentiation
LSRFortessa Becton Dickinson Flowcytometer
Lysotracker red DND 99 Invitrogen L7528 Fluorescent dye
MEM Corning 15-010-CV Cell culture
Penicillin /streptomycin  Hyclone SV30010 Cell culture
pHrodo green STP ester  Invitrogen P35369 Fluorescent dye
T75 flask Cell star 658170 Cell culture
Trypsin-EDTA Gibco 25300120 Cell culture
Zeiss 710  Zeiss P20GM103434 Confocal

Referências

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Citar este artigo
Annamanedi, M., Vance, J. K., Robinson, C. M. Neonatal Mouse Bone Marrow Isolation and Preparation of Bone Marrow-Derived Macrophages. J. Vis. Exp. (207), e66613, doi:10.3791/66613 (2024).

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