Summary

Preparação de amostras de organoides retinianos para microscopia eletrônica de transmissão

Published: June 07, 2024
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Summary

Este protocolo fornece um procedimento de preparação otimizado e elaborado para amostras de organoides retinianos para microscopia eletrônica de transmissão. É adequado para aplicações que envolvem a análise de sinapses em organoides retinianos maduros.

Abstract

Os organoides retinianos (ROs) são um sistema de cultura tridimensional que imita as características da retina humana que se diferenciaram das células-tronco pluripotentes induzidas (iPSCs) sob condições específicas. O desenvolvimento e a maturação da sinapse em ROs têm sido estudados imunocitoquímica e funcionalmente. No entanto, a evidência direta da ultraestrutura de contato sináptico é limitada, contendo sinapses de fita especiais e sinapses químicas convencionais. A microscopia eletrônica de transmissão (MET) é caracterizada por alta resolução e uma história respeitável elucidando o desenvolvimento da retina e a maturação das sinapses em humanos e várias espécies. É uma ferramenta poderosa para explorar a estrutura sináptica em ROs e é amplamente utilizada no campo de pesquisa de ROs. Portanto, para explorar melhor a estrutura dos contatos sinápticos de RO em nanoescala e obter evidências microscópicas de alta qualidade, desenvolvemos um método simples e repetível de preparação de amostras de RO TEM. Este artigo descreve o protocolo, os reagentes usados e as etapas detalhadas, incluindo a preparação da fixação do RO, pós-fixação, incorporação e visualização.

Introduction

A retina, um órgão sensorial visual vital em humanos e mamíferos, exibe uma estrutura laminada distinta caracterizada por três camadas nucleares que abrigam somas de neurônios e duas camadas plexiformes formadas por conexões sinápticas1, incluindo sinapses convencionais e a sinapse de fita especializada 2,3. A sinapse da fita desempenha um papel crucial na transmissão de impulsos de vesículas de maneira gradual 2,3. O processo de visão envolve a transmissão de sinais eletro-ópticos através de vários níveis de neurônios e sinapses, atingindo o córtex visual 4,5.

Os organoides retinianos (ROs) representam um sistema de cultura tridimensional (3D) derivado de células-tronco pluripotentes induzidas (iPSCs), mimetizando os estados fisiológicos do tecido retiniano in vitro 1,6,7. Essa abordagem é promissora para estudar doenças da retina8, triagem de drogas9 e servir como uma terapia potencial para condições degenerativas irreversíveis da retina, como retinite pigmentosa10 e glaucoma11. Como um poderoso sistema de condução óptica in vitro, a sinapse dentro das ROs é uma estrutura crucial que facilita a transformação e transferência efetivasdo sinal 5.

O desenvolvimento de RO pode ser dividido em três estágios de acordo com suas características morfológicas e perfis de expressão molecular 6,12. As ROs no estágio 1 (em torno de D21-D60) compreendem células progenitoras neurais da retina, muitas células ganglionares da retina (RGCs) e algumas células amácrinas starburst (SACs), correspondendo à primeira época do desenvolvimento fetal humano. No estágio 2 (em torno de D50-D150), as ROs expressam alguns precursores de fotorreceptores, interneurônios e genes relacionados à sinaptogênese, o que representa uma fase de transição. Os fotorreceptores desenvolvem maturidade no estágio 3 ROs (por volta de D100-D150), correspondendo ao terceiro estágio do desenvolvimento fetal humano 6,12,13. Notavelmente, em comparação com ROs no estágio 1 e estágio 2, os ROs no estágio 3 têm uma estrutura lamelar distinta cujas sinapses amadureceram12, incluindo a presença de sinapses de fita14. Além disso, um estudo recente confirmou que as sinapses maduras existem na transmissão de sinais luminosos, indicando que são funcionais13. Assim, os ROs no estágio 3 são frequentemente selecionados para investigar a estrutura sináptica.

A imuno-histoquímica é amplamente aplicada ao estudo da expressão de várias proteínas moleculares. No entanto, a limitação da microscopia óptica reside em sua capacidade de observar apenas um número restrito de células e moléculas específicas por vez, resultando na falta de uma análise abrangente das relações entre as células e o ambiente circundante. A Microscopia Eletrônica de Transmissão (TEM) é caracterizada por alta resolução, com resolução limitada de 0,1-0,2 nm, superando o microscópio óptico em ~10-20 vezes15. Ele compensa os defeitos da microscopia óptica e é usado para elucidar o desenvolvimento da retina e a maturação das sinapses em humanos16,17 e várias espécies 18,19,20,21. O MET permite a distinção direta dos componentes pré-sinápticos e pós-sinápticos18,20 e até permite a observação abrangente de estruturas subcelulares, como fitas 2,3, vesículas22 e mitocôndrias23. Portanto, o MET é uma ferramenta essencial para identificar tipos de sinapses e explorar a ultraestrutura dos contatos sinápticos em ROs em nanoescala.

É crucial observar que a preparação da amostra é de grande importância para a aquisição de micrografias eletrônicas de alta qualidade. Embora alguns estudos tenham realizado ME em ROs 12,13,24, os procedimentos detalhados não são claros. Como a qualidade da imagem de microscopia eletrônica depende em grande parte do efeito da fixação do RO e da permeação do reagente, vários fatores importantes precisam ser considerados durante a preparação. Consequentemente, para melhor investigar os contatos sinápticos em ROs, apresentamos um método com boa reprodutibilidade que mostra os pontos de operação de fixação de RO, incorporação e identificação de locais de observação.

Protocol

1. Obtenção de ROs de iPSCs25 NOTA: Os ROs foram derivados de iPSCs modificando o procedimento relatado anteriormente. Dissocie iPSCs em ~ 90% de confluência usando uma protease bacteriana (consulte a Tabela de Materiais). Corte as colônias em pedaços e raspe-os com um levantador de células. Após a coleta, ressuspenda os aglomerados de células em 0,25 mL de M…

Representative Results

O estabelecimento de ROs 3D por meio da diferenciação de iPSC fornece uma ferramenta poderosa para estudar os mecanismos de doenças da retina e a terapia de reposição de células-tronco. Embora outros tenham demonstrado as conexões sinápticas em ROs funcional e imunocitoquimicamente, a evidência direta de sinapses convencionais e de fita é muito limitada. Aqui apresentamos um método para investigar a ultraestrutura de dois tipos de sinapses em ROs por MET. Após 180 dias de cul…

Discussion

Neste artigo, apresentamos um protocolo detalhado para observação da ultraestrutura sináptica convencional e de fita em ROs por TEM. Esse protocolo é baseado nos métodos de preparo retiniano descritos anteriormente com algumas modificações20. Para melhorar a taxa de sucesso do tratamento da amostra e a qualidade das micrografias de MET, considere os seguintes pontos-chave. Em primeiro lugar, é importante reconhecer que as ROs se desenvolvem a partir de iPS…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi apoiado em parte por doações do Programa Nacional de Pesquisa e Desenvolvimento da China (2022YFA1105503), do Laboratório Estadual de Neurociência (SKLN-202103) e da Fundação de Ciências Naturais de Zhejiang da China (Y21H120019), da Fundação de Ciências Naturais da China (82070981).

Materials

100 mm Petri dish Corning 430167
Acetone Electron Microscopy Science 10000
B27 supplement Gibco A3582801
Cell lifter Santa Cruz sc-395251
Copper grids Beijing Zhongjingkeyi Technology Co., Ltd. AZH400HH
DigitalMicrograph Software Gatan, Inc. Software
Dispase StemCell Technologies #07913 Bacterial protease
DMEM/F12 medium Gibco #11320033
Embedding mold Beijing Zhongjingkeyi Technology Co., Ltd. GZ10592
Epon-812 resin Electron Microscopy Science #14900
Fetal Bovine Serum (FBS) Biological Industries #04-0021A
Glutaraldehyde Electron Microscopy Science 16020
hiPSC Shownin Biotechnology Co. Ltd. RC01001-A
Lead citrate Beijing Zhongjingkeyi Technology Co., Ltd. GZ02618
L-GlutaMax Life Technologies #35050061 L-glutamine substitute
Matrigel Corning 356234
Microscope slide CITOTEST 80312-3161
N2 supplement Gibco 17502048
Na2HPO4· 12H2O Sigma 71650 A component of PB/PBS
NaH2PO4· H2O Sigma 71507 A component of PB/PBS
Non-essential amino acids Sigma #M7145
Optical microscope Lab Binocular Biological Microscope Xsz-107bnii
OsO4 TED PELLA 4008-160501
Oven Bluepard BPG9040A
Paraformaldehyde Electron Microscopy Science 157-8
Penicillin-Streptomycin Gibco #15140-122
Semi/ultrathin microtome Reichert-Jung 396649
Taurine Sigma #T0625
Toluidine blue Sangon Biotech E670105-0100
Transmission Electron Microscopes HITACHI H-7500
Uranyl acetate TED PELLA CA96049
β-mercaptoethanol Sigma 444203

Referências

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Citar este artigo
Liu, X., Rao, B., Lin, Q., Gao, M., Zhang, J. Preparing Retinal Organoid Samples for Transmission Electron Microscopy. J. Vis. Exp. (208), e66590, doi:10.3791/66590 (2024).

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