Summary

To-foton calciumbilleddannelse af forhjerneaktivitet i opførende voksne zebrafisk

Published: July 28, 2023
doi:

Summary

Her præsenterer vi en protokol til at udføre to-foton calciumbilleddannelse i den dorsale forhjerne hos voksne zebrafisk.

Abstract

Voksne zebrafisk (Danio rerio) udviser et rigt repertoire af adfærd til at studere kognitive funktioner. De har også en miniaturehjerne, der kan bruges til at måle aktiviteter på tværs af hjerneområder gennem optiske billeddannelsesmetoder. Imidlertid har rapporter om registrering af hjerneaktivitet i opførende voksne zebrafisk været sparsomme. Denne undersøgelse beskriver procedurer til udførelse af to-foton calciumbilleddannelse i den dorsale forhjerne hos voksne zebrafisk. Vi fokuserer på trin til at forhindre voksne zebrafisk i at bevæge hovedet, hvilket giver stabilitet, der muliggør laserscanningsbilleddannelse af hjerneaktiviteten. De hovedfastholdte dyr kan frit bevæge deres kropsdele og trække vejret uden hjælpemidler. Proceduren sigter mod at forkorte tiden for nakkestøttekirurgi, minimere hjernens bevægelse og maksimere antallet af registrerede neuroner. En opsætning til præsentation af et fordybende visuelt miljø under calciumbilleddannelse er også beskrevet her, som kan bruges til at studere neurale korrelater underliggende visuelt udløst adfærd.

Introduction

Calciumfluorescensbilleddannelse med genetisk kodede indikatorer eller syntetiske farvestoffer har været en kraftfuld metode til måling af neuronal aktivitet i dyr, herunder ikke-menneskelige primater, gnavere, fugle og insekter1. Aktiviteten af hundredvis af celler, op til ca. 800 μm under hjerneoverfladen, kan måles samtidigt ved hjælp af multifotonbilleddannelse 2,3. Aktiviteten af specifikke celletyper kan også måles ved at udtrykke calciumindikatorer i genetisk definerede neuronale populationer. Anvendelse af billeddannelsesmetoden til små hvirveldyrmodeller åbner nye muligheder inden for neuronal beregning på tværs af hjerneområder.

Zebrafisk er et meget anvendt modelsystem inden for neurovidenskabelig forskning. Larvezebrafisk omkring 6 dage efter befrugtning er blevet brugt til calciumbilleddannelse på grund af deres miniaturehjerne og gennemsigtige krop4. Unge zebrafisk (3-4 uger gamle) bruges også til at studere de neurale mekanismer, der ligger til grund for sensorimotoriske veje 5,6. Imidlertid nås det maksimale præstationsniveau for kompleks adfærd, herunder associativ læring og social adfærd, i en ældre alder 7,8. Således kræves en pålidelig protokol for at studere flere kognitive funktioner i hjernen hos voksne zebrafisk ved hjælp af billeddannelsesmetoder. Mens zebrafisklarve og unge zebrafisk kan indlejres i agarose til in vivo-billeddannelse, lider voksne zebrafisk på 2 måneder eller ældre af hypoxi under sådanne forhold og er fysisk for stærke til at blive fastholdt af agarose. Derfor kræves en kirurgisk procedure for at stabilisere hjernen og gøre det muligt for dyret at trække vejret frit gennem gællerne.

Her beskriver vi en nakkestøtteprotokol, der involverer et nyt design af en enkelt hovedstang. Den reducerede operationstid på 25 min er dobbelt så hurtig som den tidligere metode9. Vi beskriver også designet af optagekammeret (semi-sekskantet tank), hovedtrinnet og en hurtiglåsemekanisme til at kombinere de to dele9. Endelig beskrives opsætningen til at præsentere en fordybende visuel stimulus til at studere visuelt udløst hjerneaktivitet og adfærd også. Samlet set kan de procedurer, der er beskrevet her, bruges til at udføre to-foton calciumbilleddannelse i genetisk definerede cellepopulationer i en hovedbehersket voksen zebrafisk, hvilket muliggør undersøgelse af hjerneaktiviteter under forskellige adfærdsparadigmer.

Protocol

Alle dyreforsøg blev godkendt og udført i overensstemmelse med retningslinjerne fra Institutional Animal Care and Use Committee of Academia Sinica. Detaljer om forskningsværktøjerne findes i materialefortegnelsen. 1. Klargøring af optagekammer Forbered en halvsekskantet tank, en bundplade og et hovedtrin (figur 1A; Supplerende filer 1-3). Hovedscenen består af to metalstolper fastgjort til en cirku…

Representative Results

Protokollen består af to dele: nakkestøttekirurgi og to-foton calciumbilleddannelse af neuronale aktiviteter i forhjernen. Operationens succes er defineret af dyrets overlevelse og nakkestøttens stabilitet. Overlevelsesraten kan forbedres betydeligt ved hyppig perfusion af 0,01% TMS-opløsning gennem munden under operationen. Fisk skal komme sig efter anæstesi og trække vejret aktivt inden for 1-2 minutter efter at være nedsænket i akvariumvand. To-foton calciumbilleddannelse muliggør aktivitetsregistrering af in…

Discussion

Her beskriver vi en detaljeret protokol til at fastholde hovedet af voksne zebrafisk til to-foton calciumbilleddannelse. Der er to kritiske trin for at opnå en nakkestøtte, der er stabil nok til laserscanningsbilleddannelse. Først skal hovedstangen limes på kraniernes specifikke fastgørelsessteder. Andre dele af kraniet er ofte for tynde til at give mekanisk stabilitet og kan endda blive brudt under stærke kropsbevægelser. For det andet skal huden over fastgørelsesstederne fjernes grundigt. Resterende vand skal o…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af Institute of Molecular Biology, Academia Sinica og National Science and Technology Council, Taiwan. Maskinværkstedet ved Institut for Fysik, Academia Sinica hjalp med at fremstille specialdesignede dele. Vi vil også gerne takke P. Argast (Friedrich Miescher Institute for Biomedical Research, Basel, Schweiz) for designet af hurtiglåsemekanismen på hovedscenen.

Materials

Acquisition card MBF Bioscience Vidrio vDAQ Microscope
Back-projection film Kimoto Diland screen – GSK present visual stimulus
Band-pass filter (510/80 nm) Chroma ET510/80m Microscope
Base plate for the semi-hexagonal tank custom made see supplemental files recording chamber
Camera filter (<875 nm) Edmund optics #86-106 Behavior recording
Camera filter (>700 nm) Edmund optics #43-949 Behavior recording
Camera lens Thorlabs MVL50M23 Behavior recording
Chameleon Vision-S Coherent Vision-S Laser
Circular plate for the head stage custom made see supplemental files recording chamber
Controller for piezo actuator Physik Instrumente  E-665. CR Microscope
Current amplifier Thorlabs TIA60 Microscope
Elitedent Q-6 Rolence Enterprise Q-6 Surgery: UV lamp
Emission Filter 510/80 nm Chroma ET510/80m Microscope
Head bar custom made see supplemental files recording chamber
Infrared light Thorlabs M810L3 Behavior recording
LED projector AAXA P2B LED Pico Projector present visual stimulus
Moist paper tissue (Kimwipe) Kimtech Science 34155 Surgery: moist paper tissue
Motorized XY sample stage Zaber X-LRM050 Microscope
Neutral Density Filters (50% Transmission) Thorlabs NE203B present visual stimulus
Ø1/2" Post Holder ThorLabs PH1.5V Surgery: hollow tube for cannon
Ø1/2" Stainless Steel Optical Post ThorLabs TR150/M Surgery: fish loading module
Objective lens 16x, 0.8NA Nikon CF175 Microscope
Oil-based modeling clay Ly Hsin Clay C4086 Surgery: head bar holder
Optical adhesive Norland Products NOA68 Surgery: UV curable glue
Photomultiplier tube Hamamatsu H11706P-40 Microscope
Piezo actuator Physik Instrumente  P-725.4CA PIFOC Microscope
Pockels Cell Conoptics M350-80-LA-BK-02 Microscope
Red Wratten filter (> 600 nm) Edmund optics #53-699 present visual stimulus
Resonant-Galvo Scan System INSS RGE-02 Microscope
Right-Angle Clamp for Ø1/2" Post ThorLabs RA90/M Surgery: fish loading module
Rotating Clamp for Ø1/2" Post ThorLabs SWC/M Surgery: fish loading module
ScanImage MBF Bioscience Basic version Microscope
Semi-hexagonal tank custom made see supplemental files recording chamber
Super-Bond C&B Kit Sun Medical Co. Super-Bond C&B Surgery: dental cement
Tricaine methanesulfonate Sigma Aldrich E10521 Surgery: anesthetic
USB Camera FLIR BFS-U3-13Y3M-C Behavior recording
Vetbond 3M 1469SB Surgery: tissue glue

Referências

  1. Grienberger, C., Konnerth, A. Imaging calcium in neurons. Neuron. 73 (5), 862-885 (2012).
  2. Chow, D. M., et al. Deep three-photon imaging of the brain in intact adult zebrafish. Nature Methods. 17 (6), 605-608 (2020).
  3. Mittmann, W., et al. Two-photon calcium imaging of evoked activity from L5 somatosensory neurons in vivo. Nature Neuroscience. 14 (8), 1089-1093 (2011).
  4. Friedrich, R. W., Jacobson, G. A., Zhu, P. Circuit neuroscience in zebrafish. Current Biology. 20 (8), R371-R381 (2010).
  5. Kappel, J. M., et al. Visual recognition of social signals by a tectothalamic neural circuit. Nature. 608 (7921), 146-152 (2022).
  6. Bartoszek, E. M., et al. Ongoing habenular activity is driven by forebrain networks and modulated by olfactory stimuli. Current Biology. 31 (17), 3861-3874 (2021).
  7. Valente, A., Huang, K. H., Portugues, R., Engert, F. Ontogeny of classical and operant learning behaviors in zebrafish. Learning & Memory. 19 (4), 170-177 (2012).
  8. Buske, C., Gerlai, R. Maturation of shoaling behavior is accompanied by changes in the dopaminergic and serotoninergic systems in zebrafish. Developmental Psychobiology. 54 (1), 28-35 (2012).
  9. Huang, K. H., et al. A virtual reality system to analyze neural activity and behavior in adult zebrafish. Nature Methods. 17 (3), 343-351 (2020).
  10. Rupprecht, P., Prendergast, A., Wyart, C., Friedrich, R. W. Remote z-scanning with a macroscopic voice coil motor for fast 3D multiphoton laser scanning microscopy. Biomedical Optics Express. 7 (5), 1656-1671 (2016).
  11. Papadopoulos, I. N., Jouhanneau, J. -. S., Poulet, J. F. A., Judkewitz, B. Scattering compensation by focus scanning holographic aberration probing (F-SHARP). Nature Photonics. 11 (2), 116-123 (2017).
  12. Torigoe, M., et al. Zebrafish capable of generating future state prediction error show improved active avoidance behavior in virtual reality. Nature Communications. 12 (1), 5712 (2021).
check_url/pt/65526?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Bandonil, J. S., Liao, Y., Fathi, A., Huang, K. Two-Photon Calcium Imaging of Forebrain Activity in Behaving Adult Zebrafish. J. Vis. Exp. (197), e65526, doi:10.3791/65526 (2023).

View Video