Summary

En hög genomströmning analys för Prediktion av kemiska toxiciteten av automatiserad fenotypiska profilering av Caenorhabditis elegans

Published: March 14, 2019
doi:

Summary

En kvantitativ metod har utvecklats för att identifiera och förutse akuta toxicitet av kemikalier genom att automatiskt analysera fenotypiska profilering av Caenorhabditis elegans. Det här protokollet beskriver hur man behandla maskar med kemikalier i en plattan med 384 brunnar, fånga videos och kvantifiera toxikologiska relaterade fenotyper.

Abstract

Tillämpa Toxicitetstestning av kemikalier i högre ordning organismer, till exempel möss eller råttor, är tidskrävande och dyrt, på grund av sin långa livslängd och underhåll problem. Tvärtom Nematoden Caenorhabditis elegans (C. elegans) har fördelar att göra det till ett idealiskt val för toxicitetstester: en kort lifespan, lätt odling och effektiv reproduktion. Här beskriver vi ett protokoll för automatisk fenotypiska profilering av C. elegans i en plattan med 384 brunnar. Nematoder maskar är odlade i en plattan med 384 brunnar med flytande medium och kemisk behandling, och videor tas av varje brunn att kvantifiera den kemiska påverkan på 33 mask funktioner. Experimentella resultat visar att de kvantifierade fenotyp funktionerna kan klassificera och förutsäga den akuta toxiciteten för olika kemiska föreningar och upprätta en prioriteringslista för ytterligare traditionella kemiska toxicitet bedömning tester i en gnagare modell.

Introduction

Tillsammans med den snabba utvecklingen av kemiska föreningar tillämpas på industriell produktion och människors dagliga liv, är det viktigt att studera de toxicitetstester modeller för kemikalier. I många fall är den gnagare djurmodell anställd för att utvärdera den potentiella toxiciteten av olika kemikalier på hälsa. Bestämningen av dödliga koncentrationer (dvs. den analyseras 50% dödliga dosen [LD50] av olika kemikalier) används i allmänhet som den traditionella parametern i en gnagare (råtta/mus) modell in vivo vilket är tidskrävande och dyrt. Dessutom, på grund av att minska, förfina eller ersätta (3R) principen som är central för djurskydd och etik, nya metoder som möjliggör utbyte av högre djur är värdefulla för vetenskaplig forskning1,2,3 . C. elegans är en frilevande nematoder som har isolerats från marken. Det har använts som en forskning organism i laboratoriet på grund av dess positiva egenskaper, som en kort lifespan, lätt odling och effektiv reproduktion. Dessutom bevaras många grundläggande biologiska spridningsvägar, inklusive grundläggande fysiologiska processer och stressreaktioner i C. elegans, i högre däggdjur4,5,6,7 , 8. i ett par jämförelser som vi och andra har gjort, det finns en god överensstämmelse mellan C. elegans toxicitet och toxicitet observerades hos gnagare9. Allt detta gör C. elegans en bra modell för att testa effekterna av kemiska toxicitet Invivo.

Nyligen har kvantifieras vissa studier de fenotypiska egenskaperna hos C. elegans. Funktionerna kan användas för att analysera toxicitet av kemikalier2,3,10 och åldrandet av maskar11. Vi har också utvecklat en metod som kombinerar en flytande mask odlingsskålar system och en bild analyssystem, där maskar är odlade i en plattan med 384 brunnar enligt olika kemiska behandlingar12. Denna kvantitativa teknik har utvecklats för att automatiskt analysera 33 parametrar i C. elegans efter 12-24h av kemisk behandling i en plattan med 384 brunnar med flytande medium. En automatiserad Mikroskop scenen används för experimentell video förvärv. Videor bearbetas av ett skräddarsydda program och 33 funktioner relaterade till maskar rörliga beteende är kvantifierade. Metoden används för att kvantifiera de masken fenotyperna under behandling av 10 föreningar. Resultaten visar att olika toxicitet kan ändra fenotyperna av C. elegans. Dessa kvantifierade fenotyper kan användas för att identifiera och förutse den akuta toxiciteten av olika kemiska föreningar. Det övergripande målet med denna metod är att underlätta observation och fenotypiska kvantifiering av experiment med C. elegans i en flytande kultur. Denna metod är användbar för tillämpningen av C. elegans i kemisk toxicitet utvärderingar och fenotyp kvantifieringar, som hjälpa till att förutsäga den akuta toxiciteten av olika kemiska föreningar och upprätta en prioriteringslista för ytterligare traditionella kemisk toxicitet bedömning på en gnagare modell. Dessutom kan denna metod tillämpas på toxicitet screening och testning av nya kemikalier eller föreningen som mat tillsatsen agent föroreningar, pharmacautical föreningar, miljömässiga exogena förening och så vidare.

Protocol

Protokollet följer riktlinjerna för djurens vård av djur etikkommittén i Beijing Center för förebyggande och kontroll i Kina. 1. kemiska beredningar Få kemikalier (tabell 1 och Tabell för material). Bestämma den högsta och lägsta dos av enskilda kemikalier för en minsta koncentration av 100% dödlighet (LC100, 24 h) och en maximal koncentration av 100% nonlethality (LC0, 24 h) till maskar. Använd minst sex spädningar av den h?…

Representative Results

Vi har testat fenotyperna av maskar som utsätts för olika koncentrationer av mer än 10 kemikalier12. I testet kvantifierades 33 olika funktioner för varje kemisk förening vid tre tidpunkter (0 h, 12 h och 24 h). En jämförelse mellan en handbok och en automatisk analys av en livslängd analysen gjordes tidigare,11,12. I denna analys hittade vi att kemikalier och koncentrationer kan påverka de masken …

Discussion

Fördelarna med C. elegans har lett till dess ökande användning i toxikologi9, både för mekanistiska studier och high-throughput screening metoder. En ökad roll för C. elegans i kompletterar andra modellsystem i toxikologisk forskning har varit anmärkningsvärd under de senaste åren, särskilt för snabb toxicitet bedömning av nya kemikalier. Denna artikel ger en ny analys av hög genomströmning, kvantitativ genomgång av masken fenotyper i en plattan med 384 brunnar f?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka CGC för Vänligen skicka den C. elegans. Detta arbete stöddes av nationella nyckel forskning och utveckling Program i Kina (nr 2018YFC1603102, nr 2018YFC1602705); National Natural Science Foundation Kina Grant (nr 31401025, #81273108 #81641184), kapital hälsa forskning och utveckling av särskilda projekt i Peking (nr 2011-1013-03), fondens öppnandet av Beijing nyckel laboratorium miljötoxikologi (# 2015HJDL03), och naturvetenskap Foundation i Shandong-provinsen, Kina (ZR2017BF041).

Materials

2-Propanol Sigma-Aldrich 59300
384-well plates Throme 142761
Agar Bacto 214010
Atropine sulfate Sigma-Aldrich PHL80892
Bleach buffer 0.5 mL of 10 M NaOH, 0.5 mL of5% NaClO, 9 mL ofultrapure water
Cadmium chloride Sigma-Aldrich 202908
Calcium chloride Sigma-Aldrich 21074
CCD camera Zeiss AxioCam HRm Zeiss microscopy GmbH
Cholesterol Sigma-Aldrich C8667
Copper(II) sulfate Sigma-Aldrich 451657
Ethanol Sigma-Aldrich 24105
Ethylene glycol Sigma-Aldrich 324558
Glycerol Sigma-Aldrich G5516
K-Medium 3.04 g of NaCl and 2.39 g of KCl in 1 L ultrapure water
LB Broth  10 g/L Tryptone, 5 g/L Yeast Extract, 5 g/L NaCl 
Magnesium sulfate heptahydrate Sigma-Aldrich 63140
NGM Plate 3 g ofNaCl, 17 g ofagar, 2.5 g ofpeptone in 1 L of ultrapure water, after autoclave add 1 mL of cholesterol (5 mg/mL in ethanol), 1 mL of MgSO4 (1 M), 1 mL of CaCl2 (1 M), 25 mL of PPB buffer
Peptone Bacto 211677
Potassium chloride Sigma-Aldrich 60130
Potassium phosphate dibasic Sigma-Aldrich 795496
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich 795488
PPB buffer 35.6 g of K2HPO4, 108.3 g of KH2PO4 in 1 L ultrapure water
shaker ZHICHENG ZWY-200D
Sodium chloride Sigma-Aldrich 71382
Sodium fluoride Sigma-Aldrich s7920
Sodium hydroxide Sigma-Aldrich 71690
Sodium hypochlorite solution Sigma-Aldrich 239305
The link of program https://github.com/weiyangc/ImageProcessForWellPlate
Tryptone Sigma-Aldrich T7293
Yeast extract Sigma-Aldrich Y1625
Zeiss automatic microscope  Zeiss AXIO Observer.Z1 Zeiss automatic microsco with peproprietary software Zen2012 and charge coupled device(CCD) camera

Referências

  1. Anderson, G. L., et al. Assessing behavioral toxicity with Caenorhabditis elegans. Environmental Toxicology and Chemistry. 23 (5), 1235-1240 (2004).
  2. Boyd, W. A., et al. A high-throughput method for assessing chemical toxicity using a Caenorhabditis elegans reproduction assay. Toxicology and Applied Pharmacology. 245 (2), 153-159 (2010).
  3. Boyd, W. A., Williams, P. L. Comparison of the sensitivity of three nematode species to copper and their utility in aquatic and soil toxicity tests. Environmental Toxicology and Chemistry. 22 (11), 2768-2774 (2003).
  4. Dengg, M., van Meel, J. C. Caenorhabditis elegans as model system for rapid toxicity assessment of pharmaceutical compounds. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 50 (3), 209-214 (2004).
  5. Schouest, K., et al. Toxicological assessment of chemicals using Caenorhabditis elegans and optical oxygen respirometry. Environmental Toxicology and Chemistry. 28 (4), 791-799 (2009).
  6. Sprando, R. L., et al. A method to rank order water soluble compounds according to their toxicity using Caenorhabditis elegans, a Complex Object Parametric Analyzer and Sorter, and axenic liquid media. Food and Chemical Toxicology. 47 (4), 722-728 (2009).
  7. Wang, D., Xing, X. Assessment of locomotion behavioral defects induced by acute toxicity from heavy metal exposure in nematode Caenorhabditis elegans. Journal of Environmental Sciences (China). 20 (9), 1132-1137 (2008).
  8. Leung, M. C., et al. Caenorhabditis elegans: an emerging model in biomedical and environmental toxicology. Toxicological Sciences. 106 (1), 5-28 (2008).
  9. Li, Y., et al. Correlation of chemical acute toxicity between the nematode and the rodent. Toxicology Research. 2 (6), 403-412 (2013).
  10. Boyd, W. A., et al. Effects of genetic mutations and chemical exposures on Caenorhabditis elegans feeding: evaluation of a novel, high-throughput screening assay. PLoS One. 2 (12), 1259 (2007).
  11. Xian, B., et al. WormFarm: a quantitative control and measurement device toward automated Caenorhabditis elegans aging analysis. Aging Cell. 12 (3), 398-409 (2013).
  12. Gao, S., et al. Classification and prediction of toxicity of chemicals using an automated phenotypic profiling of Caenorhabditis elegans. BMC Pharmacology and Toxicology. 19 (1), 18 (2018).
  13. Moyson, S., et al. Mixture effects of copper, cadmium, and zinc on mortality and behavior of Caenorhabditis elegans. Environmental Toxicology and Chemistry. 37 (1), 145-159 (2018).
  14. Wang, X., et al. Lifespan extension in Caenorhabditis elegans by DMSO is dependent on sir-2.1 and daf-16. Biochemical and Biophysical Research Communications. 400 (4), 613-618 (2010).
  15. Boyd, W. A., et al. Developmental Effect of the ToxCast Phase I and Phase II Chemicals in Caenorhabditis elegans and Corresponding Responses in Zebrafish, Rats, and Rabbits. Environmental Health Perspectives. 124 (5), 586-593 (2016).

Play Video

Citar este artigo
Gao, S., Chen, W., Zhang, N., Xu, C., Jing, H., Zhang, W., Han, G., Flavel, M., Jois, M., Zeng, Y., Han, J. J., Xian, B., Li, G. A High-throughput Assay for the Prediction of Chemical Toxicity by Automated Phenotypic Profiling of Caenorhabditis elegans. J. Vis. Exp. (145), e59082, doi:10.3791/59082 (2019).

View Video