Summary

Оценка лабильного органического углерода в почве Использование процедур последовательного Фумигация инкубационного

Published: October 29, 2016
doi:

Summary

Labile organic carbon (LOC) and the potential carbon turnover rate are sensitive indicators of changes in soil nutrient cycling processes. Details are provided for a method based on fumigating and incubating soil in a series of cycles and using the CO2 accumulated during the incubation periods to estimate these parameters.

Abstract

Методы управления и изменения окружающей среды могут изменить питательных веществ почвы и круговорота углерода. Почва лабильным органического углерода, легко разлагаются C бассейн, очень чувствителен к помехам. Он также является основным субстратом для почвенных микроорганизмов, которая имеет основополагающее значение для круговорота питательных веществ. Из-за этих атрибутов, лабильным органический углерод (LOC) был идентифицирован в качестве параметра индикатора для здоровья почвы. Количественная скорость оборота LOC также помогает в понимании изменений в процессах велосипедного питательных веществ в почве. Последовательный метод фумигации инкубации был разработан для оценки LOC почвы и потенциальную скорость оборота C. Метод требует фумигации проб почвы и количественной оценки CO 2 -С respired в течение инкубационного периода 10 дней в течение ряда циклов фумигации-инкубации. Лабильная органического углерода и потенциальный коэффициент текучести C затем экстраполированы из накопленного СО 2 с отрицательной экспоненциальной модели. Порядок проведения этого метода описываютd.

Introduction

Из-за его жизненно важную роль в Углерод (С) и круговорот питательных веществ и его чувствительность к изменению почвы, LOC почвы является важным параметром для измерения как показатель качества почвенного органического вещества. Леса и агроэкосистемы в значительной степени зависят от минерализации питательных веществ в почве органического вещества в качестве источника питательных веществ. Деятельность по управлению может изменить размер пула и скорость оборота почвы органического углерода, что приводит к изменениям в поставке питательных веществ 1. Почва органического углерода состоит из двух основных фракций непокорного C, который имеет текучесть кадров в несколько тысяч лет, и LOC, который имеет текучесть кадров от нескольких недель до нескольких лет 2,3,4. Почва лабильным C состоит из легко разлагающихся субстратов , таких как микробной биомассы С, с низким молекулярным весом соединений (аминокислоты, простые углеводы) из растительного rhizodeposition, а также побочных продуктов разложения и выщелачивания из растений помета 1,4,5. Поскольку почва лабильным С легко разлагаются, товысокочувствительными к практике управления и природных явлений , которые нарушают или изменяющих почвы 6. Почва лабильным C служит в качестве основного источника энергии для почвенных микроорганизмов в разложении органического вещества 7. В качестве такого, LOC воздействий круговороте питательных веществ в большей степени , чем устойчивые формы почвенного органического C 8. Почвенные микроорганизмы также ответственны за большинство гетеротрофной дыхания , которое происходит при разложении непокорного органического вещества почвы с помощью облегченного заливной эффекта LOC 9,10,11. Это дыхание играет существенную роль в глобальных циклах C , потому что почва органического углерода примерно вдвое больше , чем в атмосфере C 11.

В результате его важность в наземных экосистемах, несколько методов были разработаны для оценки LOC почвы. Эти методы могут быть разграничены на три общих классификаций: физические, химические и биохимические. Денситометрические методы разделения являются физические метODS , которые состоят из отделения почвы органического углерода в тяжелых или легких фракций или в грубой и тонкой органической частиц C 12,13,14,15. Методы разделения относительно легко выполнить, но они не часто дают стабильные результаты , поскольку эти фракции меняются в зависимости от минерального состава типа почвы, растительного материала размера и плотности, а также почвы совокупной консистенции 13,15. Методы разделения также производят только количественную информацию о LOC 15.

Несколько химических методов доступны для оценки LOC. Водной экстракции из органического углерода относительно легко осуществимо, и методы часто дают легко воспроизводимые результаты. Тем не менее, эти извлечений не связаны весь спектр доступных субстратов для микроорганизмов 15. Существует несколько способов окисления для химического фракционирования почвенного органического углерода были разработаны. Методы окисления имеют преимущество, характеризующие количество и качество лабильного органического углерода, Хотя некоторые методы требуют работы с опасными химическими веществами и существует изменчивость среди методов в воспроизводимости результатов 15. Способ экстракции кислотой гидролиз другой тип химической процедуры фракционирования , который может измерять количество и качество LOC, но результаты этого метода не способствуют интерпретации его биологических свойств 13,15.

Биохимические методы интерпретации LOC почвы были разработаны. Лабильная органического углерода может быть измерена как CO 2 , выброшенного микроорганизмами в дыхательных анализах. Эти анализы дают оценки истинного минерализуемого органического вещества, но , как правило , только самые неустойчивые соединения являются минерализованные в ходе теста 15. Почва микробной биомассы С измеряли фумигации-инкубирования 16 и фумигации-экстракции 17 была использована для разработки выводов о LOC. Тем не менее, эти процедуры дают оценки C в микробной биомассы, а не LOC. Обе процедуры включают окуривание вычитание значений от не-окурены почвы для определения микробной биомассы C, но было высказано предположение , что значения , полученные без вычитания не-фумигации почвы обеспечивают измерение лабильных органических фракций С в дополнение к микробной биомассы 18 ,

Процедура 13 последовательного фумигации-инкубирование (СФИ) для измерения LOC является биохимическим методом адаптировано из процедуры 16 фумигации-инкубационного почвы микробной биомассы измерения C. Метод СФИ имеет ряд преимуществ по сравнению с другими методами оценки LOC. Концептуальная основа для метода состоит в том, что LOC является микробиологически разлагаемые C, который регулирует рост микробов и что LOC физически доступным и химически разлагаются почвенными микроорганизмами. В полевых условиях, микробный рост, как правило, ограничивается наличием углерода, наличие питательных веществ, доступных порового пространства, и / или хищничества. Эти факторы являются почти ELIMIтакелажные путем фумигации, создавая беспрепятственные условия для роста микробов. Нет питательных веществ не будут удалены в течение инкубационного периода метода. В течение нескольких фумигации и инкубационных циклов, микробный рост становится ограниченным количеством C и качеством (лабильность) 13. Накопленная CO 2 respired во время циклов инкубации используется экстраполировать LOC с простой отрицательной экспоненциальной модели 11,13,19. Потенциальная скорость оборота C также может быть получен из наклона экспоненциальной модели, поэтому метод СФИ имеет преимущество по сравнению с большинством других методов LOC одновременно оценки концентрации и потенциальную скорость оборота LOC 11. Для других методов, информация о потенциальных темпов оборачиваемости LOC может быть установлено только в том случае индикаторы , такие как 14 C используются 13. Метод СФИ, таким образом, относительно простой и недорогой метод для получения измерения обоих LOC и его потенциальных темпов оборота.

Protocol

1. Сбор почвы получить образцы представителя условий в экспериментальной зоне и в пределах экспериментальных установок 20 Определение различий в свойствах сайта, таких как склоновых и свойств почвы, включая текстуры, объемная плотность, рН, органические глубины горизонта, и…

Representative Results

Метод СФИ был использован , как описано в этой статье , в серии экспериментов , проведенных на юго – востоке Соединенных Штатов 24,25,26,27. Вместе эти эксперименты охватывает различные типы растительности, в том числе Loblolly сосны (Pinus Таеда L.), проса (Panicum virgatum L.)…

Discussion

The SFI method is an effective protocol for detecting differences in soil LOC and potential C turnover rates over a range of management practices (such as fertilization, tillage, vegetation control, and harvest practices) and soil conditions. Soil LOC content and C turnover rate can be used to understand alterations of nutrient cycles. The SFI method also provides measurement of microbial biomass C from the first fumigation-incubation event. The ability to measure soil LOC, C turnover, and microbial biomass C concurrentl…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors gratefully acknowledge Michelle Gonzales, Kenny Kidd, Brad Osbon, and all other personnel that conducted the laboratory procedures for these data. The authors are thankful for assistance from Andrew Scott in developing software coding to conduct model-fitting procedures. The authors also appreciate the funding from the U.S. Department of Agriculture National Institute of Food and Agriculture, Sustainable Agriculture and Research & Education, Sun Grant South Central region, and the National Council of Air and Stream Improvement that made possible the studies from which representative results provided in this paper were drawn.

Materials

Soil auger sampling kit JMC PN039 Several other manufacturers of punch augers are available
Parafilm Curwood PM999
Aluminum weighing boats Fisherbrand 08-732-103
General purpose drying oven Fisher Scientific 15-103-0511 Many other manufacturers of general purpose laboratory ovens are available
10.5 L vacuum desiccator Corning 3121-250
Glass scintillation vial Wheaton 968560
Glass threaded vials, 41 mL  Fisherbrand 03-339-21N
Chloroform, stabilized with amylenes Sigma-Aldrich 67-66-3
Boiling chips Fisher Scientific S25201
Glass rod Fisherbrand S63449
Size 10 rubber stopper Fisherbrand 14-130P Rubber stoppers can be purchased as solid and drilled in center to install glass rod or bought with a hole to insert glass rod
Wide-mouth PPCO bottle, 0.5 L ThermoScientific 3121050016
Sodium hydroxide, reagent grade Sigma-Aldrich S5881
Barium chloride Sigma-Aldrich 202738
Phenolphthalein indicator Fisher Scientific S25466
Hydrochloric acid solution, 0.1 N Fisher Scientific SA54-4

Referências

  1. Blair, G., et al. Soil carbon fractions based on their degree of oxidation, and the development of a carbon management index for agricultural systems. Aust. J. Agric. Res. 46, 1459-1466 (1995).
  2. Schimel, D. S., et al. Soil organic matter dynamics in paired rangeland and cropland toposequences in North Dakota. Geoderma. 36, 201-214 (1985).
  3. Parton, W. J., et al. Analysis of factors controlling soil organic matter levels in great-plains grasslands. Soil Sci. Soc. Am. J. 51, 1173-1179 (1987).
  4. Wu, H., et al. Labile organic C and N mineralization of soil aggregate size classes in semiarid grasslands as affected by grazing management. Biol. Fertil. Soils. 48, 305-313 (2011).
  5. Jones, D. L., et al. Plant and mycorrhizal regulation of rhizodeposition. New Phytol. 163, 459-480 (2004).
  6. Harrison, K. G., et al. The effect of changing land use of soil radiocarbon. Science. 262, 725-726 (1993).
  7. Jinbo, Z., et al. Land use effects on the distribution of labile organic carbon fractions through soil profiles. Soil Sci Soc. Am. J. 70, 660-667 (2006).
  8. Whalen, J. K., et al. Carbon and nitrogen mineralization from light- and heavy-fraction additions to soil. Soil Biol Biochem. 32, 1345-1352 (2000).
  9. Gregorich, E. G., et al. Towards a minimum data set to assess soil organic matter quality in agricultural soils. Can. J. Soil Sci. 74, 367-385 (1994).
  10. Hamer, U., et al. Priming effects in different soil types induced by fructose, alanine, oxalic acid and catechol additions. Soil Biol. Biochem. 37, 445-454 (2005).
  11. Feng, W., et al. Shifting sources of soil labile organic carbon after termination of plant carbon inputs in a subtropical moist forest of southwest China. Ecol. Res. 26, 437-444 (2011).
  12. Tisdall, J. M., Carter, M. R., Stewart, B. A. Formation of soil aggregates and accumulation of soil organic matter. Structure and Organic Matter Storage in Agricultural Soils. , 57-96 (1996).
  13. Zou, X. M., et al. Estimating soil labile organic carbon and potential turnover rates using a sequential fumigation-incubation procedure. Soil Biol. Biochem. 37, 1923-1928 (2005).
  14. Cambardella, C. A., Elliott, E. T. Particulate soil organic matter changes across a grassland cultivation sequence. Soil Sci. Soc. Am. J. 56, 777-783 (1992).
  15. Strosser, E. Methods for determination of labile soil organic matter: an overview. J. Agrobiol. 27, 49-60 (2010).
  16. Jenkinson, D. A., Powlson, D. S. The effects of biocidal treatment on metabolism in soil V: a method for measuring soil biomass. Soil Biol. Biochem. 8, 209-213 (1976).
  17. Vance, E. D., et al. An extraction method for measuring soil microbial biomass C. Soil Biol. Biochem. 19, 703-707 (1987).
  18. De-Polli, H., et al. Chloroform fumigation-extraction labile C pool (microbial biomass C "plus") shows high correlation to microbial biomass C in Argentinian and Brazilian soils. Cienc. Suelo. 25, 15-22 (2007).
  19. Olson, J. S. Energy storage and the balance of producers and decomposers in ecological systems. Ecology. 44, 322-331 (1963).
  20. Pennock, D., Carter, M. R., Gregorich, E. G., et al. Chapter 1, Unit 1, Soil sampling designs. Soil Sampling and Methods of Analysis. , (2008).
  21. Luizao, R. C. C., et al. Seasonal variation of soil microbial biomass: the effects of clearfelling a tropical rainforest and establishment of pasture in the central Amazon. Soil Biol. Biochem. 24, 805-813 (1992).
  22. Horwath, W. R., Paul, E. A., Weaver, R. W., et al. Microbial biomass. Methods of soil analysis part 2: microbiological and biochemical properties. , 753-773 (1994).
  23. Jenkinson, D. S., Ladd, J. N., Paul, E. A., Ladd, J. N. Microbial biomass in soil: measurement and turnover. Soil Biochemistry. , 415-471 (1981).
  24. Blazier, M. A., Gungor, E. B. O., et al. Poultry litter fertilization impacts on soil, plant, and water characteristics in loblolly pine (Pinus taeda L.) plantations and silvopastures in the mid-South USA. Principles, application, and assessment in soil science. , 43-74 (2011).
  25. Blazier, M. A., et al. Straw harvesting, fertilization, and fertilizer type alter soil biophysical properties in a loblolly pine plantation in the mid-South USA. Biol. Fertil. Soils. 45, 145-153 (2008).
  26. Blazier, M. A., et al. Loblolly pine age and density affects switchgrass growth and soil carbon in an agroforestry system. For. Sci. 58, 485-496 (2012).
  27. Blazier, M. A., et al. Nitrogen and carbon of switchgrass, loblolly pine, and cottonwood biofuel production systems in the Southeast United States. For. Sci. 61, 522-534 (2015).
  28. Zhang, M., et al. Decomposition differences of labile carbon from litter to soil in a tropical rain forest and rubber plantation of Xishuagbanna, southwest China. Eur. J. Soil Biol. 55, 55-61 (2013).
  29. Nelson, D. W., Sommers, L. E., Sparks, D., et al. Total carbon, organic carbon, and organic matter. Methods of soil analysis. Part 3: chemical methods. , 961-1090 (1996).
  30. Huang, L., et al. Correlation among soil microorganisms, soil enzyme activities, and removal rates of pollutants in three constructed wetlands purifying micro-polluted river water. Soil Biol. Biochem. 70, 221-228 (2012).
  31. Kong, L., et al. Enzyme and root activities in surface-flow constructed wetlands. Chemosphere. 76, 601-608 (2009).
  32. Cui, L., et al. Evaluation of nutrient removal efficiency and microbial enzyme activity in a baffled subsurface-flow constructed wetland system. Bioresour. Technol. 146, 656-662 (2013).
  33. Jenkinson, D. S., Wilson, J. R. Determination of microbial biomass carbon and nitrogen in soil. Advances in nitrogen cycling in agricultural ecosystems. , 368-386 (1988).
  34. Sparling, G. P., et al. Interference from plant roots in the estimation of soil microbial ATP, C, N, and P. Soil Biol. Biochem. 17, 275-278 (1985).
  35. Christie, P., Beatte, J. A. M. Significance of sample size in measurement of soil microbial biomass by the chloroform fumigation-incubation method. Soil Biol. Biochem. 19, 149-152 (1987).
  36. McLaughlin, K. K., Hobbie, S. E. Comparison of labile soil organic matter fractionation techniques. Soil Sci. Soc. Am. J. 68, 1616-1625 (2004).
  37. Xia, X., et al. Variation of soil labile organic carbon pools along an elevational gradient in the Wuyi Mountains, China. J. Resour. Ecol. 1, 368-374 (2010).

Play Video

Citar este artigo
Blazier, M. A., Liechty, H. O. Assessment of Labile Organic Carbon in Soil Using Sequential Fumigation Incubation Procedures. J. Vis. Exp. (116), e54614, doi:10.3791/54614 (2016).

View Video