Summary

L'isolement et la cytométrie en flux analyse des cellules mononucléaires du sang périphérique gliome infiltrant

Published: November 28, 2015
doi:

Summary

Présenté ici est une méthode simple pour l'isolement et le flux analyse cytométrique de cellules mononucléaires du sang périphérique gliome infiltrant qui donne des données quantitatives en fonction du temps sur le nombre et le statut activation des cellules immunitaires qui entrent dans le microenvironnement de tumeur cérébrale tôt.

Abstract

Notre laboratoire a démontré récemment que les cellules tueuses naturelles (NK) sont capables d'éradiquer GL26 de souris orthotopique implanté et rat CNS-1 gliomes malins peu de temps après la prise de greffe intracrânienne si les cellules cancéreuses sont rendues déficientes dans l'expression de la lectine galectine β-galactoside liaison -1 (gal-1). Des travaux plus récents montre maintenant que une population de GR-1 des cellules myéloïdes + / CD11b + est essentiel à cet effet. Pour mieux comprendre les mécanismes par lesquels les NK et les cellules myéloïdes coopèrent pour conférer rejet de tumeur gal-1-deficient nous avons mis au point un protocole détaillé pour l'isolement et l'analyse des cellules mononucléaires du sang périphérique gliome infiltrant (PBMC). La méthode est mise en évidence en comparant les PBMC ici infiltration dans le microenvironnement tumoral de Gal-1 exprimant GL26 gliomes avec ceux-gal rendu déficient par une shRNA-knockdown. Le protocole commence par une description de la façon dont la culture et de préparer GL26 CElls pour l'inoculation dans le cerveau de souris C57BL / 6J syngénique. On explique ensuite les étapes impliquées dans l'isolement et l'analyse par cytométrie flux de PBMC de gliome infiltrant du micro-environnement de la tumeur cérébrale précoce. Le procédé est adaptable à un certain nombre de modèles expérimentaux in vivo dans lequel des données temporelles sur infiltration immunitaire dans le cerveau est nécessaire. La méthode est sensible et hautement reproductibles, comme des PBMC de gliome infiltrant peuvent être isolées à partir de tumeurs intracrâniennes dès que la prise de greffe de post-tumeur 24 h avec le nombre de cellules observées similaires de points appariés de temps tout au long de tumeurs expériences indépendantes. Un seul expérimentateur peut réaliser le procédé à partir de cerveau de récolte de circuler analyse cytométrique des PBMC de gliome infiltrant dans environ 4-6 heures selon le nombre d'échantillons à analyser. Modèles de gliome alternatifs et / ou de détection des anticorps spécifiques de cellules peuvent également être utilisés à la discrétion des expérimentateurs pour évaluer l'infiltration de plusieurs autres immune types cellulaires d'intérêt sans la nécessité de modification de la procédure globale.

Introduction

Les gliomes sont une classe de cancers du cerveau résultant de la glie neuro-épithéliales transformées dans le système nerveux central (SNC). De tous les gliomes, Organisation mondiale de la Santé (OMS) de grade IV gliome, ou le glioblastome (GBM), est la plus fréquente et mortelle 1. GBM est hautement réfractaire au traitement standard-de-courant qui se compose de résection de la tumeur dans la mesure du possible, plus suivie d'une radiothérapie chimiothérapie concomitante et adjuvante avec 2 témozolomide. Ces cancers mortels portent un pronostic sombre de seulement 15-18 mois de survie à partir du moment du diagnostic initial avec seulement 5% des patients survivent à la maladie après 5 ans 3.

La présence de la barrière hémato-encéphalique (BHE), le manque de cellules présentatrices d'antigène professionnelles (APC), et l'existence non identifiés auparavant des structures lymphatiques de bonne foi dans le cerveau 4 ont conduit à la notion de GBM comme immunitaire privilégié. Cependant, de nombreuses études sho maintenantw que ces cancers du cerveau engendrent en effet le recrutement de cellules immunitaires périphériques qui sont principalement à l'origine myéloïde incluant les monocytes, les macrophages et les cellules myéloïdes suppressives (MDSC dérivés 5). GBM influe également sur ​​l'activité de cerveau-résident microglie à devenir pro-tumorigènes 6,7. Les cellules lymphoïdes telles que les cellules T CD8 + 8 et cellules CD56 + tueuses naturelles 9 sont également présents dans le microenvironnement de la tumeur, mais en beaucoup moins grand nombre, un fait semble être due à la fonction immunosuppressive incité par des facteurs de gliome dérivés sur les macrophages associés aux tumeurs ( TAM) 10. Lymphocytes T CD4 + sont également présents dans GBM, mais une grande partie de cette population exprime également CD25 et FoxP3, les responsables de immunosuppresseur T régulatrices (T reg) cellules 11. L'état immunosuppresseur globale de GBM culmine dans la promotion de l'évasion immunologique et la progression de la tumeur 12.

<p class= "jove_content"> Une meilleure compréhension des mécanismes de la GBM immunosuppression est essentielle à l'élaboration de stratégies immunothérapeutiques efficaces conçus pour stimuler le système immunitaire contre la tumeur. Au cours des 15 dernières années, notre laboratoire a travaillé à surmonter les mécanismes de immunosuppresson de tumeur au cerveau afin de développer de nouveaux produits immunothérapeutiques efficaces anti-GBM 13-19. Le point culminant de ce travail a conduit à un essai clinique visant à évaluer un cytotoxique combinée et thérapeutique immuno-stimulation pour les patients nouvellement diagnostiqués (identificateur ClinicalTrials.gov: NCT01811992) GBM.

Notre travail le plus récent montre que GL26 de la souris et de rat SNC-1 des cellules de glioblastome bloquent anti-tumorale des cellules NK surveillance immunitaire en produisant de grandes quantités de la β-galactoside lectine liant la galectine-1 (gal-1) 20. Cela a été démontré par la suppression de l'expression de gal-1 dans les cellules de gliome utilisant knockdown de gènes shRNA médiation. In vitro expérits ont montré que les cellules de gliome Gal-1 déficient prolifèrent normalement dans la culture, mais ont subi un rejet rapide, peu après la prise de greffe intracrânienne dans des souris C57BL / 6J ou RAG1 souris – / -, établissant ainsi l'indépendance de T ou cellules B sur cette forme de rejet de la tumeur. NK immunodéplétion de la cellule avec un anticorps anti-asialo GM1 anti-sérum ou des anticorps NK1.1 monoclonaux dirigés à la restauration complète de l'évolution de gliome gal-1-deficient intracrânienne, en établissant le rôle des cellules NK en gal-1-deficient rejet de gliome. Nous montrons maintenant que immunodéplétion des cellules myéloïdes Gr-1 + / CD11b + est suffisante pour prévenir le rejet d'un gliome gal-1 déficiente en dépit de la présence de cellules NK, révélant ainsi un rôle d'auxiliaire indispensable pour les cellules myéloïdes dans l'aide apportée à l'gal NK médiée lyse tumorale -1 déficiente (données non publiées). Ce résultat inattendu nous a conduit à développer un protocole détaillé pour l'isolement et l'analyse des cellules mononucléaires du sang périphérique (PBMC) quiinfiltrer le microenvironnement d'une tumeur cérébrale, peu après la prise de greffe intracrânienne afin que nous puissions mieux caractériser les événements d'infiltration immunitaires qui prédicat rejet de gliome gal-1 déficient.

La méthode est démontré ici en utilisant des cellules de gliome de GL26 de souris qui expriment constitutivement mCitrine protéine fluorescente, appelée GL26-Cit, qui autorisent la visualisation de la cellule tumorale directe par microscopie à fluorescence 21. Ces cellules sont greffées stéréotactique dans le cerveau de souris C57BL / 6J et syngéniques sont laissées se développer pendant 24, 48 ou 72 heures avant l'euthanasie des souris. PBMC de gliome infiltrant sont ensuite isolés et immunomarquées utilisant des anticorps anti -CD45, -GR-1, et -CD11b -NK1.1 anticorps de surface cellulaire conjointement avec immunomarquage intracellulaire de granzyme B (GZMB). Cette combinaison permet d'anticorps spécifique pour l'identification des Gr-1 + / + CD11b cellules myéloïdes infiltrant les tumeurs et NK1.1 +, les cellules NK, les types de cellules, nous avons been impliqué dans le rejet de la tumeur gal-1 déficient. Le profil d'infiltration immunitaire de Gal-1-deficient GL26-Cit gliome, appelé ici GL26-Cit-gal1i, est ensuite comparée à celle des gliomes exprimant des taux normaux de Gal-1 appelé GL26-Cit-NT qui contiennent une non- ciblant le contrôle shRNA épingle à cheveux. Le protocole commence par une description sur la façon de la culture des cellules GL26-Cit gliome in vitro, qui est suivie d'une explication sur la façon de greffer orthotopiquement ces cellules dans le striatum de souris C57BL / 6J syngéniques. Il procède ensuite à énumérer les étapes impliquées dans l'isolement et l'immunomarquage des PBMC de gliome infiltrant pour l'analyse par cytométrie en flux. Le protocole se termine par une explication de l'analyse de données standard et de représentation graphique.

La démonstration révèle que les deux Gr-1 + / + CD11b cellules myéloïdes et les cellules NK NK1.1 + accumuler de préférence dans le microenvironnement tumeur cérébrale gal-1 déficient dans les 48h d'implantation de la tumeur, un résultat qui contribue à expliquer pourquoi ces tumeurs subissent rapidement lyse tumorale complète d'environ 1 semaine de prise de greffe tumorale post-20. Le procédé est facilement adaptable à un certain nombre de différents modèles expérimentaux in vivo dans lequel des données temporelles sur infiltration immunitaire dans le cerveau est nécessaire. Un seul expérimentateur peut effectuer le protocole de récolte cerveau analyse cytométrique de flux de PBMC de gliome infiltrant en environ 4-6 heures en fonction du nombre d'échantillons à analyser. Le procédé peut également être combiné avec des expériences visant à caractériser le profil de circulation des PBMC chez les souris porteuses de tumeur pour la comparaison avec ceux qui infiltrent le cerveau afin d'identifier les phénotypes d'immunosuppression spécifiquement induites par le micro-environnement de la tumeur. Application de la présente et des méthodes similaires devrait faciliter une meilleure compréhension des facteurs impliqués dans le trafic de cellules immunitaires périphériques dans le microenvironnement de la tumeur du cerveau.

Protocol

Note: S'il vous plaît examiner l'ensemble du protocole avant d'effectuer des expériences. Approbation de l'utilisation des animaux vertébrés du comité institutionnel approprié sur l'utilisation et le bien-être des animaux doit être obtenu avant de procéder. 1. Préparation des cellules tumorales pour intracrânienne prise de greffe Travailler dans une enceinte de sécurité biologique de classe II, commencez par préparer GL26-Cit-NT / gal1i milieux de…

Representative Results

La stratégie de déclenchement suivant est utilisé pour une expérience typique: FSC-A vs SSC-A → SSC-H vs SSC-W → FSC-H vs FSC-W → CD45 vs. comptage → Gr-1 contre CD11b → NK1.1 contre comptage. Gates a mis sur Gr-1 + / + CD11b cellules myéloïdes et les cellules NK NK1.1 + sont ensuite stratifié basé sur l'expression GZMB (figure 5A). Backgating ces cellules identifiées comme des cellules NK et NK1.1 + Gr-1 + / + CD11…

Discussion

Ce protocole décrit un procédé robuste et reproductible pour l'isolement et l'analyse cytométrique en flux de cellules PBMC qui ont infiltré le micro-environnement de la tumeur du cerveau de la souris au début. Des suspensions de cellules de gliome sont générées à une concentration spécifiée par l'expérimentateur qui sont greffées stéréotaxique dans le striatum du cerveau de la souris. Les souris sont ensuite euthanasiés à des points de temps prédéterminés spécifiés par le protocole ex…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par les Instituts nationaux de la Santé / Institut national des troubles neurologiques et des maladies (NIH / NINDS) accorde R01-NS074387, R01-R21 et NS057711-NS091555 à MGC; NIH / NINDS accorde R01-NS061107, R01-NS076991, R01-R21 et NS082311-NS084275 à PRL; subventions de Happy Hearts de Léa, Université du Michigan Comprehensive Cancer Center attribué à MGC et PRL; du département de neurochirurgie de l'Université du Michigan School of Medicine; l'Institut du Michigan pour clinique et de recherche en santé, soutenu par NIH subvention 2UL1-TR000433; la Subvention de formation de biologie Université du Michigan Cancer soutenu par NIH / NCI (National Cancer Institute) subvention T32-CA009676; l'Université du Michigan de formation en neurosciences cliniques et fondamentales soutenu par NIH / NINDS accorder T32-NS007222; et l'Université de Programme de formation scientifique médicale Michigan soutenu par NIH / NIGMS (Institut national de médecine générale Sciences) accorder T32-GM007863. Les auteurs d'unre reconnaissants pour le leadership universitaire et le soutien reçu du Dr Karin Muraszko et le Département de neurochirurgie; M. Dahlgren, D. Tomford, et S. napolitaine pour le soutien administratif superbe; M. Dzaman pour l'assistance technique exceptionnelle; et Phil F. Jenkins pour le soutien généreux envers l'achat d'un microscope électronique à balayage Zeiss 3D. Nous reconnaissons également le laboratoire Kuchroo à la Harvard Medical School à partir de laquelle une version modifiée de la stratégie de médiation de médias centrifugation de densité pour l'isolement de cellules mononucléaires du cerveau a été prélevé.

Materials

Dulbecco’s Modification of Eagles Medium Gibco 12430-054 with 4.5g/L D-glucose, L-glutamine, 25mM HEPES and phenol red 
Dulbecco’s Phosphate-buffered Saline  Gibco 14190-144  without calcium chloride or Magnesium chloride
Fetal bovine serum Omega Scientific Inc. FB-11
Penicillin Streptomycin  Gibco 15140-122 10,000U/ml Penicillin; 10,000μg/ml Streptomycin 
L-glutamine Gibco 25030-081 200mM
G418 sulfate  Omega Scientific Inc. GN-04
Puromycin dihydrochloride   Sigma-Aldrich P8833 from Streptomyces alboniger
HyClone HyQTase non-mammalian trypsin alternative  Thermo Scientific SV30030.01 in DPBS with EDTA 
Phase contrast hemocytometer Sigma-Aldrich Z359629 0.1mm deep
Trypan blue stain Gibco 15250-061
Sterile 0.9% NaCl injection, USP Hospira NDC: 0409-4888 10ml vials
0.6ml conical polypropylenemi microtubes Genesee Scientific 22-272
Atipamezole hydrochloride injection Orion Pharma NDC: 52483-6298 5mg/ml solution
Ketamine hydrochloride injection Fort Dodge NDC: 0409-2051 100mg/ml solution
Dexmedetomidine hydrochloride injection Zoetis NDC: 54771-2805 0.5mg/ml solution
Xylazine hydrochloride injection Lloyd NDC: 61311-481 100mg/ml solution
Carprofen injection Pfizer NDC: 61106-8501 50mg/ml solution
Buprenorphine hydrochloride injection Reckitt Benckiser NDC: 12496-0757 0.3mg/ml ampuls
1ml tuberculin syringes  Covidien 8881501400
26G x ½ (0.45mm x 13mm) syringe needles  BD 305111
Surgical clippers 3M 9661
Providone-iodine solution Aplicare 82-217 NDC: 52380-1905
Sterile petrolatum ophthalmic ointment  Dechra NDC: 17033-211
70% isopropyl alcohol prep pads Kendall 6818
Sterile gauze Covidien 8044 non-woven, 4" x 4", 4-ply 
1.7ml conical polypropylene microtubes Genesee Scientific 22-281
Mouse stereotactic frame Stoelting 51730
Surgical lamp Philips Burton CS316W Coolspot II Variable Spotlight
Curved dissecting forceps Ted Pella Inc. 5431
Colibri retractors  FST 17000-03
Cordless precision power drill Dremel  1100-01 Stylus model; 7.2-Volt Lithium-Ion with Docking Station
Engraving Cutter Dremel 105 1/32" or 0.8 mm bit diameter
Microliter syringe Hamilton 75 Hamilton Microliter® Syringes 700 series; 5μl volume
Microliter syringe needles Hamilton 7762-06 33G, small hub RN NDL, 1.5 in, point style 3, 6/PK
Ethilon 3-0 black monofilament nylon sutures  Ethicon 1663
Magnetic stir bar VWR 74950-296 7.9mm diameter x 50mm length (5/16" diameter x 2" length)
1L glass screw-cap storage bottle Corning 1395 Type 1, Class A borosilicate glass
Heparin sodium  Sagent NDC: 25021-400 1,000U/ml solution
Peristaltic pump Cole Parmer Instruments Group 77200-60 Master Flex Easy Load II console drive
compressed carbogen (95% O2 / 5% CO2) available from local vendor N/A A-type, large cylinder 
20G x 1 ½" aluminum hub blunt needles Kendall 8881202363 0.9mm x 38.1mm
Polyurethane ice bucket Fisherbrand 02-591-45 Capacity: 0.152 oz. (4.5L)
Collagenase (Type I-S) Sigma Aldrich C1639 from Clostridium histolyticum 
Deoxyribonuclease I Worthington Biochemical Corp. LS002007 >2,000 Kunitz units per mg dry weight
Antistatic polystyrene hexagonal weighing dishes Ted Pella Inc. 20157-3 top I.D. 115mm, base I.D. 85mm, 203ml volume 
Stainless steel single edged razor blades  Garvey 40475
Bone rongeurs FST 16001-15
Hemostat FST 13014-14
Large dissection scissors Ted Pella Inc. 1316
Small dissection scissors FST 14094-11
Blunt end forceps Ted Pella Inc. 13250
7ml glass Dounce tissue grinder Kontes KT885300-0007
Percoll Density Centrifugation Media  GE Healthcare GE17-0891-01
10 mL serological pipettes Genesee Scientific 12-104 single use; sterile
70μm sterile nylon mesh cell strainers  Fisherbrand 22363548
Alexa Fluor 700-conjugated rat anti-mouse CD45 (clone: 30-F11) Biolegend 103128
APC-conjugated mouse anti-mouse NK1.1 (clone: PK136) eBiosciences  17-5941-82
PE-conjugated rat anti-mouse Gr-1 (clone:RB6-8C5) BD Pharmigen 553128
PerCP/Cy5.5-conjugated rat anti-mouse CD11b (clone: M1/70)  Biolegend 101228
Alexa Fluor 700-conjugated rat IgG2b, κ (clone: RTK4530) isotype control  Biolegend 400628
APC-conjugated mouse IgG2a, κ (clone: eBM2a) isotype control  eBioscience 17-4724
PE-conjugated rat IgG2b, κ (clone: eB149/10H5) isotype control  eBioscience 12-4031-82
PerCP/Cy5.5-conjugated rat IgG2b, κ (clone: RTK4530) isotype control Biolegend 400632
Pacific Blue-conjugated mouse anti-mouse granzyme B (Clone: GB11)  Biolegend 515403
Pacific Blue-conjugated mouse IgG1, κ (Clone: MOPC-21) isotype control  Biolegend 400151
Cytofix/Cytoperm BD 554714
15ml polypropylene centrifuge tubes Genesee Scientific 21-103 conical bottom 
50ml polypropylene centrifuge tubes Genesee Scientific 21-108 conical bottom
12x75mm round-bottom polypropylene FACS tubes  Fisherbrand 14-956-1B
FACSAria Special Order Research Product flow cytometer/cell sorter BD  650033
Class II Biological Safety Cabinet The Baker Company SG603 model: SterilGARD III Advance

Referências

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Citar este artigo
Baker, G. J., Castro, M. G., Lowenstein, P. R. Isolation and Flow Cytometric Analysis of Glioma-infiltrating Peripheral Blood Mononuclear Cells. J. Vis. Exp. (105), e53676, doi:10.3791/53676 (2015).

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