Summary

محرك عانى من قطع الأعصاب والوقت الفاصل بين التصوير من السلوكيات الخلايا الغروية في اسماك الزرد لايف

Published: June 20, 2013
doi:

Summary

على الرغم من أن الجهاز العصبي المحيطي (السندات الإذنية) قادرة على إصلاح كبيرة بعد الإصابة، لا يعرف إلا القليل عن الآليات الخلوية والجزيئية التي تحكم هذه الظاهرة. باستخدام الحية، الزرد المعدلة وراثيا واستنساخه العصبية مقايسة عانى من قطع، يمكننا أن دراسة ديناميكية سلوكيات الخلية الدبقية خلال تنكس الأعصاب والتجدد.

Abstract

غالبا ما يوصف الجهاز العصبي كمكون يصعب السلكية من الجسم على الرغم من أنه هو نظام الجهاز السوائل إلى حد كبير أن يتفاعل مع المؤثرات الخارجية بطريقة متسقة وبطريقة نمطية، مع الحفاظ على المرونة لا يصدق واللدونة. وخلافا للنظام العصبي المركزي (CNS)، النظام العصبي الطرفي (المحيطي) قادر على إصلاح كبيرة، ولكننا قد بدأت لتوها لفهم الآليات الخلوية والجزيئية التي تحكم هذه الظاهرة. باستخدام الزرد كنظام نموذج، لدينا فرصة غير مسبوقة لدراسات التجدد زوجين مع التصوير في الجسم الحي والتلاعب الجيني. وتتكون الأعصاب الطرفية من محاور عصبية محاطة بطبقات من الخلايا الدبقية والنسيج الضام. ومغمد محاور عصبية من قبل myelinating أو غير myelinating خلايا شوان، والتي هي بدورها ملفوفة في كراسة من قبل غمد الخلوية تسمى perineurium. اثر اصابة والأعصاب الطرفية الكبار لديها قدرة فائقة على ريمولقد تضررت الحطام المحاور والأهداف إعادة يعصب. للتحقيق في أدوار جميع الدبقية الطرفية في الجهاز العصبي المحيطي التجديد، وصفنا هنا مقايسة عانى من قطع محور عصبي يستخدم ليزر صبغ المتاحة تجاريا النيتروجين ضخها إلى axotomize الأعصاب الحركية في الزرد المعدلة وراثيا حية. نحن تصف مزيد من الطرق لزوجين هذه التجارب إلى الوقت الفاصل بين التصوير من الأعصاب الجرحى والسيطرة. هذا النموذج التجريبي يمكن استخدامها لتقييم ليس فقط بالدور الذي تقوم به الخلايا الدبقية في تجديد العصبية، ولكن يمكن أيضا أن تكون منصة لتوضيح الآليات الجزيئية التي تتحكم في إصلاح الجهاز العصبي.

Introduction

وقد استخدمت على نطاق واسع الزرد لدراسة تطور الجهاز العصبي بسبب الشفافية البصرية الخاصة بهم وسهولة نقل الجينات، التي عندما يقترن، تسمح للتصوير مذهلة من السلوكيات خلية حيوية في جنين المعيشة. بالإضافة إلى ذلك، لأن الزرد والثدييات مشاركة ما يقرب من جميع الجينات اللازمة لتكوين الجهاز العصبي، والمعلومات الخلوية والجزيئية التي تم جمعها في هذا النموذج الحي هو relatable مباشرة على أنواع الفقاريات الأخرى. وعلى الرغم قوية بشكل لا يصدق للدراسات التنموية العصبية، والزرد وسمات فريدة من نوعها لديها القدرة أيضا لتوضيح الآليات التي تحافظ على وإعادة بناء الجهاز العصبي بعد الإصابة. اليرقات الزرد الحفاظ على شفافية بهم إلى مراحل اليرقات في وقت متأخر وتصبغ يمكن أن يكون قد تم حظره بشكل فعال مع إما استخدام مثبطات الدوائية من إنتاج الميلانين أو طفرات الجينية التي تفتقر الخلايا الصبغية. وهكذا، وذلك باستخدام هذا النموذج الحي لدراسة الإصابات وregeneratايون في الحيوانات الأكبر سنا هو ممكن ويوفر فرصة فريدة للتحقيق مباشرة الآليات الخلوية والجزيئية التي إعادة بناء الجهاز العصبي. في هذا المخطوط، ونحن تصف كيفية تجرح بكفاءة وبتكاثر الأعصاب في الجهاز العصبي المحيطي من اليرقات الزرد. هذا النموذج إصابة يفسح المجال لدراسة انحطاط فحسب، بل أيضا ردود الدبقية الطرفية والخلايا المناعية وكذلك التفاعلات بين هؤلاء السكان خلال تجديد.

الجهاز العصبي المحيطي هو عبارة عن شبكة معقدة من الأعصاب الحسية الحركية وما هو ضروري لتمرير المعلومات بين الجهاز العصبي المركزي (CNS) والجلد والأجهزة والعضلات من الجسم، مما يسمح للكائن الحي للتفاعل مع بيئته والبقاء على قيد الحياة. على طول هذه الأعصاب، الدبقية المحيطية، بما في ذلك myelinating وغير myelinating خلايا شوان والدبقية ظهارة الحزمة العصبية، وكذلك النسيج الضام، يغلف محاور عصبية وتشكل في نهاية المطاف العصب ناضجة. إصابة هذه الأعصاب يبدأ عملية Known كما ولري تنكس 10. هذه الآلية من تجزئة محور عصبي، والتوظيف المناعة، وإزالة الحطام والتجديد هو نمطي جدا ومنظم وراثيا 1. وقد وصفت دراسات السابقة في نظم الثدييات أدوار خلايا شوان خلال تنكس الأعصاب وتجديد 1، 2، 6، 8. في هذه الدراسات من الأنسجة الثابتة أو زراعة الخلايا، وخلايا شوان تجنيدهم ليس فقط الضامة إلى موقع الإصابة للمساعدة في إزالة الحطام، ولكن ساعد أيضا في المايلين البلعمة أنفسهم. في حين كانت هذه الدراسات لا يصدق مفيدة، لدينا أبدا من قبل الاستجابات الدبقية تصور للإصابة محوار الطرفية في الجسم الحي في الوقت الحقيقي، وحققت توجد دراسات أخرى العلاقة بين فئات مختلفة من الخلايا الدبقية الطرفية خلال هذه الأحداث.

في الآونة الأخيرة، حققت عدة مختبرات wallerian انحطاط باستخدام الزرد وإصابة اكسون الليزر بوساطة مماثلة إلى ما وصفنا هنا <sup> 4، 5، 7، 9. في بعض من هذه الدراسات، تم axotomized محاور عصبية حسية سطحية في اليرقات الشباب باستخدام بنيت العرف، واثنين من الفوتون المجهر متحد البؤر 4، 5، 9. في دراسة أخرى، والتي هي مشابهة جدا لمنطقتنا، ومقطوع محاور عصبية حادة داخل العصب المحرك بطني في اليرقات البالغة من العمر 5 أيام باستخدام نظام التذرية الليزر المتاحة تجاريا 7. في كل من هذه التجارب مجموعة عمليات، كان التركيز على wallerian انحطاط وكلا محاور عصبية وخلايا مناعية تم تصوير. التوسع في هذه الدراسات، ونحن تصف إصابة المحاور الحركية في اليرقات الأكبر سنا مع أكثر نضجا والأعصاب العصبي وفحص مدى استجابة كل الدبقية الأعصاب الطرفية المرتبطة خلال انحطاط والتجدد.

للقيام بذلك، ونحن القطع الأعصاب الحركية في 6 و 7 أيام الإخصاب آخر (DPF) يرقات وتصور استجابات السكان الدبقية الفردية، وكذلك التحقيق في التفاعلات بين هؤلاء السكان على طول محاور عصبية المصاب. باستخدام هيئة تنظيم الاتصالات المزدوجة والثلاثيةخطوط nsgenic أن تسمية الخلايا الدبقية المحيطية، بما في ذلك خلايا شوان والدبقية ظهارة الحزمة العصبية، فضلا عن علامة للحصول على محاور عصبية، ونحن نستخدم نظام التذرية الليزر المتاحة تجاريا يتكون من النيتروجين ضخ صبغة الليزر (الطول الموجي 435 نانومتر) تعلق على نظام القرص الغزل مبائر لإنشاء transections محور عصبي. هذا التجريبية انشاء يتيح لنا أن تصور الحية، الزرد اليرقات، تجرح الطرفية مساحات محوار موتور محددة والصورة الوقت الفاصل بين استجابات السكان الدبقية متميزة للإصابة محور عصبي وعلاقتها مع بعضها البعض. هذا البروتوكول يمكن تكييفها لخلق مزيد من الإصابات العصبية في الزرد من مختلف الأعمار، مع خطوط المعدلة وراثيا مختلفة أو طفرات وراثية لمعالجة المسائل العلمية المختلفة.

Protocol

1. إعداد وتركيب الأجنة الزرد لتذرية وتصوير لايف إعداد مخزون من 0.8٪ منخفضة ذوبان الاغاروز في الماء البيض. قسامة إلى 13X 100 ملم أنابيب القابل للتصرف ثقافة وتخزينها في 4 درجة مئوية لحين الحاجة إليها. <li style=";text-align:right;direction:r…

Representative Results

مقايسة الموصوفة هنا يمكن استخدامها لتقييم مدى استجابة الخلايا الدبقية وغيرهم من السكان الخلايا العصبية المرتبطة إلى إصابة محور عصبي في الجسم الحي. الفيلم 1 يبين مثالا لإصابة العصب التي تم إنشاؤها باستخدام هذه الطريقة واستجابة الخلايا الدبقية المحيطة….

Discussion

الخطوات الأكثر أهمية من هذا التصميم التجريبي هي: 1) بشكل صحيح اليرقات المتزايدة للإصابة واللاحقة في الجسم الحي التصوير و2) معايرة الليزر واختيار إعدادات الطاقة الصحيح من أجل خلق الذي عانى من قطع العصب نظيفة ينتج عنه أضرار طفيفة خارج الأنسجة . للمساعدة في ضمان axotomy…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

فإن الكتاب أود أن أشكر مختبر Kucenas لإجراء مناقشات قيمة وتقنيات النصاب القانوني، وشركة للحصول على الدعم الفني رائع. وأيد هذا العمل من قبل صندوق أوفا للتميز في العلوم والتكنولوجيا (فيست) (SK).

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number
Phenylthiourea Sigma P7629-100G
Finquel Tricaine Methanesulfonate MS-222 Argent Chemical C-FINQ-UE-100G
Low melting point agarose Sigma A9414-10G
Quad CELLview Cell Culture Dishes, Glass Bottom, Sterile, Greiner Bio One VWR/Greiner 89125-444
Single well glass bottom Petri dishes 35 x 10 mm, 12 mm thick Willco Wells GWSt-3512
MicroPoint Laser System with all components Andor Technology – purchased through Quorum Technologies, Inc. 2203-SYS
MicroPoint Laser Courmarin dye (435 nm) Andor Technology MP-27-435-DYE

Referências

  1. Geuna, S., et al. Chapter 3: Histology of the peripheral nerve and changes occurring during nerve regeneration. Int. Rev. Neurobiol. 87, 27-46 (2009).
  2. Hirata, K., Kawabuchi, M. Myelin phagocytosis by macrophages and nonmacrophages during Wallerian degeneration. Microsc. Res. Tech. 57, 541-547 (2002).
  3. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of Embryonic Development of the Zebrafish. Developmental Dynamics. 203, 253-310 (1995).
  4. Martin, S. M., O’Brien, G. S., Portera-Cailliau, C., Sagasti, A. Wallerian degeneration of zebrafish trigeminal axons in the skin is required for regeneration and developmental pruning. Development. 137, 3985-3994 (2010).
  5. O’Brien, G. S., Rieger, S., Martin, S. M., Cavanaugh, A. M., Portera-Cailliau, C., Sagasti, A. Two-photon axotomy and time-lapse confocal imaging in live zebrafish embryos. J. Vis. Exp. (24), e1129 (2009).
  6. Parrinello, S., et al. EphB signaling directs peripheral nerve regeneration through Sox2-dependent Schwann cell sorting. Cell. 143, 145-155 (2010).
  7. Rosenberg, A. F., Wolman, M. A., Franzini-Armstrong, C., Granato, M. In vivo nerve-macrophage interactions following peripheral nerve injury. J. Neurosci. 32, 3898-3909 (2012).
  8. Stoll, G., Muller, H. W. Nerve injury, axonal degeneration and neural regeneration: basic insights. Brain Pathol. 9, 313-325 (1999).
  9. Villegas, R., Martin, S. M., O’Donnell, K., Carrillo, S., Sagasti, A., Allende, M. L. Dynamics of degeneration and regeneration in developing zebrafish peripheral axons reveals a requirement for extrinsic cell types. Neural Development. 7, 19 (2012).
  10. Waller, A. Experiments on the section of the glossopharyngeal and hypoglossal nerves of the frog, and observations of the alterations pro- duced thereby in the structure of their primitive fibres. Philos. Trans. R. Soc. Lond. , 423-429 (1849).

Play Video

Citar este artigo
Lewis, G. M., Kucenas, S. Motor Nerve Transection and Time-lapse Imaging of Glial Cell Behaviors in Live Zebrafish. J. Vis. Exp. (76), e50621, doi:10.3791/50621 (2013).

View Video