Summary

Die Verwendung von SC1 (Pluripotin) zu MESC Self-Erneuerung in der Abwesenheit von LIF-Support

Published: November 18, 2009
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Summary

SC1 Funktionen durch duale Hemmung des Ras-GAP und ERK1. Wir testeten die Funktion von SC1 in Unterstützung von Maus ES-Zell-Selbst-Erneuerung in der Abwesenheit von LIF und zeigte, dass SC1 in der Lage, sich selbst zu erneuern von Maus-ES-Zellkulturen zu halten ist.

Abstract

Maus embryonale Stammzellen (ES-Zellen) sind konventionell mit Leukämie Inhibitory Factor (LIF), um sich selbst zu erneuern pflegen kultiviert.<sup> 1</sup> Allerdings ist LIF teuer und Aktivierung der LIF/JAK/STAT3 Weg ist nicht unbedingt erforderlich, um die Selbst-Erneuerung Zustand zu halten.<sup> 2</sup> Die SC1 kleine Molekül kann eine kostengünstige Alternative zu LIF werden. SC1 Funktionen durch duale Hemmung des Ras-GAP und ERK1.<sup> 3</sup> Illustration seines Wirkmechanismus macht ihn zu einem nützlichen Werkzeug, um die grundlegenden molekularen Mechanismen der Selbst-Erneuerung zu studieren. Hier zeigen wir das Verfahren zur Kultivierung von Maus-ES-Zellen in Anwesenheit von SC1 und zeigen, dass sie in der Lage, sich selbst zu erneuern in der Abwesenheit von LIF zu halten sind. Zellen, die mit SC1 kultivierten zeigten ähnliche Morphologie im Vergleich zu Zellen mit LIF erhalten. Beide zeigten typische Maus-ES-Morphologie nach fünf Durchgängen. Expression von typischen Pluripotenz-Marker (Oct4, Sox2, Nanog und SSEA1) wurde nach fünf Durchgängen in Gegenwart von SC1 beobachtet. Darüber hinaus verursacht SC1 keine offenkundige Toxizität bei Maus-ES-Zellen.

Protocol

1. Vorbereitung der MEF Feeder-Platten Einen Tag vor Kultivierung ES-Zellen, Tauwetter ein Fläschchen von bestrahlten E14.5 CF-1 MEF Feeder-Zellen (siehe unsere Vorgehensweise zum ES-Zellen auftauen). Platte der MEF Feeder-Zellen bei einer Dichte von 10.000 Zellen / Well in einer 12-Well-Platte. Inkubieren Sie die Zellen über Nacht bei 37 ° C und 5% CO 2. MEF Zellen Medien: DMEM mit 10% ES-PBS, 1X Glutamin und 1X nicht-essentiellen Aminosäuren ergänzt. 2. Wartung von Self-Erneuerung der Maus ES-Zellen Lösen Sie die ES-Zellen unter Verwendung von Trypsin. Seed die Zellen bei einer Dichte von 50.000 Zellen / well auf die zuvor vorbereiteten MEF Feeder-Platten in Nährmedien (Knockout MEM mit 15% KSR, 4 mM L-Glutamin, 0,1 mM nicht-essentiellen Aminosäuren und 1X BME ergänzt) mit SC1 ergänzt in der gewünschten Konzentration (wir haben 100 nM, 300 nM und 1 pM). Außerdem haben wir eine positive Kontrolle gut, dass mit 1000 μ / ml LIF ergänzt wurde. Inkubieren Sie die Zellen über Nacht bei 37 ° C und 5% CO 2. Kultur der Zellen bei 37 ° C und 5% CO 2 für 3-4 Tage in jedem Durchgang. Refresh Medien alle 48 Stunden. Passage-Zellen von 1.10 bis 01.15 Uhr mit Trypsin ein ähnlicher Dichte wie die erste Aussaatdichte aufrecht zu erhalten. Nach 5 Passagen, können die Zellen auf die Expression von typischen Pluripotenz Marker mit Immunzytochemie untersucht werden. 3. Immunzytochemische Untersuchung der Pluripotenz Markers Waschen Sie die Zellen vorsichtig dreimal mit PBS. Fix die Zellen mit 500 ul Fixativ für 20 Minuten bei Raumtemperatur. Waschen Sie die Zellen vorsichtig dreimal mit PBS. Block unspezifische Bindung mit 500 ul Blockierungspuffer für eine Stunde bei Raumtemperatur. Inkubieren Sie die Zellen mit 250 ul des spezifischen primären Antikörper (wir Nanog, Sox2, SSEA1 und Oct4 bei den folgenden Verdünnungen: 1:500, 1:2000, 1:500 und 1:500) Waschen Sie die Zellen vorsichtig dreimal mit PBS. Inkubieren Sie die Zellen mit 250 ul des sekundären Antikörper für 2 Stunden bei Raumtemperatur, hielten sich fern von Licht (wir haben Esel anti-Maus konjugiert mit Alexa Fluor ® 555 bei 1:2000 und Esel-anti-Kaninchen konjugiert mit Alexa Fluor ® 488 bei 1 : 2000). Waschen Sie die Zellen vorsichtig dreimal mit PBS. Add DAPI (Endkonzentration 1 pg / ml) auf dem letzten Waschen und Inkubation 5 Minuten, um Kerne zu visualisieren. Analysieren Sie die Zellen unter einem Fluoreszenzmikroskop. 4. Repräsentative Ergebnisse: 1. Morphologie Ergebnisse: Maus ES-Zellen (ESC R1) wurden am MEF Feeder-Zellen in Anwesenheit von entweder LIF oder SC1 gewachsen zu Selbst-Erneuerung in einem undifferenzierten Zustand halten. Nach dem zweiten Durchgang konnte die Differenzierung in Zellen ohne LIF oder SC1 (negative Kontrolle) beobachtet werden und nach 5 Passagen im Wesentlichen keine undifferenzierte Kolonien beobachtet wurden. LIF (positive Kontrolle) behandelt Kolonien blieb in einem undifferenzierten Zustand in den 5 Zellpassagen. Zellen, die mit SC1 in Konzentrationen von 300 nM oder 100 nM behandelt blieb auch nach 5 Passagen undifferenziert, aber die Zellen mit 1 uM SC1 erfahrenen Zelltod nach dem vierten Durchgang behandelt. (Bild 2 von app beachten) Tabelle 1 fasst die morphologische Beobachtungen. 2. Expression der Pluripotenz Markers Maus ES-Zellen für 5 Passagen beibehalten wurden fixiert und untersucht durch Immunzytochemie für SSEA1, Oct4, Nanog und Sox2. Marker-Expression wurde ähnlich wie Zellen in LIF erhalten. (Abb. 3 und 4 des app beachten) Abbildung 1: Morphologie Vergleich von Zellen in LIF oder SC1 gepflegt. Kein Unterschied in der Morphologie beobachtet. Abbildung 2 und Abbildung 3: Nanog, SSEA1, Sox2 und Oct4 Färbung von ES-Zellen mit SC1 oder LIF (Abb. 4 von ca. beachten) gepflegt. Cells in SC1 gepflegt zeigen ähnliche Pluripotenz-Marker zum Ausdruck Zellen in LIF erhalten. Tabelle 1 Negative Control LIF Positive Control SC1 1um SC1 300 nM SC1 100 nM 1. Besuch Normale ES Zellmorphologie Normale ES Zellmorphologie Normale ES Zellmorphologie Normale ES Zellmorphologie Normale ES Zellmorphologie 2. Passage Einige differenzierte Morphologie Normale ES Zellmorphologie Normale ES Zellmorphologie Normale ES Zellmorphologie Normale ES Zellmorphologie 3. Passage Mehrzahl der Zellen differenziert Normale ES Zellmorphologie Normale ES Zellmorphologie Normale ES Zellmorphologie Normale ES Zellmorphologie 4. Passage Kein ESC Kolonien Normale ES Zellmorphologie Der Zelltod beobachtet Normale ES Zellmorphologie Normale ES Zellmorphologie 5th Passage differenziert Normale ES Zellmorphologie Der Zelltod beobachtet Normale ES Zellmorphologie Normale ES Zellmorphologie

Discussion

Das kleine Molekül SC1 kann zur Selbst-Erneuerung mit einem undifferenzierten Zustand in Maus-ES-Zellen zu erhalten. Vor dem Einsatz auf einer ungeprüften Zelllinie, jedoch sollte es titriert auf die optimale Konzentration zu bestimmen. Zum Beispiel, testeten wir drei Konzentrationen auf der Maus-ES-Zelllinie ESC R1. 100 nM und 300 nM Konzentrationen konnten Maus-ES-Zellen zu erhalten, war jedoch ein 1 pM Konzentration giftig.

SC1 kann auch unter Feeder-freien Bedingungen verwendet werden.

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Die Autoren möchten Dr. Sheng Ding vom Scripps Research Institute und Dr. Hongkui Deng von der Peking-Universität für ihre Unterstützung und die Richtung zu danken.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
SC1   Stemgent 04-0011  
LIF   Millipore ESG1107  
SSEA-1 antibody   Santa Cruz 21702  
Nanog antibody   Abcam ab21603  
Sox2 antibody   Chemicon Ab5603  
Oct4 antibody   Santa Cruz SC-5279  

Referências

  1. Williams, R. L., Hilton, D. J., Pease, S., Willson, T. A., Stewart, C. L., Gearing, D. P., Wagner, E. F., Metcalf, D., Nicola, N. A., Gough, N. M. Myeloid leukaemia inhibitory factor maintains the developmental potential of embryonic stem cells. Nature. 336, 684-687 (1988).
  2. Ying, Q. L., Wray, J., Nichols, J., Batlle-Morera, L., Doble, B., Woodgett, J., Cohen, P., Smith, A. The ground state of embryonic stem cell self-renewal. Nature. 453, 519-523 (2008).
  3. Chen, S., Do, J. T., Zhang, Q., Yao, S., Yan, F., Peters, E. C., Scholer, H. R., Schultz, P. G., Ding, S. Self-renewal of embryonic stem cells by a small molecule. Proc. Natl. Acat. Sci. USA. 103, 17266-17271 (2006).

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Xiong, W., Gao, Y., Cheng, X., Martin, C., Wu, D., Yao, S., Kim, M., Liu, Y. The use of SC1 (Pluripotin) to Support mESC Self-renewal in the Absence of LIF. J. Vis. Exp. (33), e1550, doi:10.3791/1550 (2009).

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