Summary

Modello immunocompetente di alveoli su chip per lo studio delle risposte immunitarie della mucosa alveolare

Published: May 31, 2024
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Summary

I modelli Lung-on-chip superano le tradizionali colture 2D imitando l’interfaccia aria-liquido e la perfusione delle cellule endoteliali, simulando il flusso sanguigno e lo scambio di nutrienti cruciali per gli studi di fisiologia polmonare. Ciò migliora la rilevanza della ricerca polmonare, offrendo un ambiente dinamico e fisiologicamente accurato per far progredire la comprensione e il trattamento delle infezioni respiratorie.

Abstract

Introduciamo un modello avanzato immunocompetente lung-on-chip progettato per replicare la struttura e la funzione alveolare umana. Questo modello innovativo impiega un biochip microfluidico-perfuso che supporta un’interfaccia aria-liquido che imita l’ambiente negli alveoli umani. L’ingegneria tissutale viene utilizzata per integrare componenti cellulari chiave, tra cui cellule endoteliali, macrofagi e cellule epiteliali, per creare un modello tissutale rappresentativo dell’alveolo. Il modello facilita esami approfonditi delle risposte immunitarie della mucosa a vari agenti patogeni, tra cui virus, batteri e funghi, migliorando così la nostra comprensione dell’immunità polmonare. L’obiettivo principale di questo protocollo è fornire dettagli per stabilire questo modello di alveolo su chip come una solida piattaforma in vitro per studi sulle infezioni, consentendo ai ricercatori di osservare e analizzare da vicino le complesse interazioni tra i patogeni e il sistema immunitario dell’ospite all’interno dell’ambiente polmonare. Ciò si ottiene attraverso l’applicazione di tecniche basate sulla microfluidica per simulare le condizioni fisiologiche chiave degli alveoli umani, tra cui il flusso sanguigno e la stimolazione biomeccanica delle cellule endoteliali, oltre a mantenere un’interfaccia aria-liquido cruciale per l’esposizione realistica delle cellule epiteliali all’aria. Il sistema modello è compatibile con una serie di test standardizzati, come la colorazione in immunofluorescenza, la profilazione delle citochine e l’analisi delle unità formanti colonie (CFU)/placche, consentendo una visione completa delle dinamiche immunitarie durante l’infezione. L’Alveolus-on-chip è composto da tipi di cellule essenziali, tra cui le cellule epiteliali polmonari distali umane (H441) e le cellule endoteliali della vena ombelicale umana (HUVEC) separate da membrane porose in polietilene tereftalato (PET), con macrofagi primari derivati da monociti posizionati strategicamente tra gli strati epiteliale ed endoteliale. Il modello tissutale migliora la capacità di sezionare e analizzare i fattori sfumati coinvolti nelle risposte immunitarie polmonari in vitro. Come strumento prezioso, dovrebbe contribuire al progresso della ricerca polmonare, fornendo un modello in vitro più accurato e dinamico per studiare la patogenesi delle infezioni respiratorie e testare potenziali interventi terapeutici.

Introduction

Il polmone umano ha un ruolo notevole nella respirazione e nella difesa immunitaria, con complesse interazioni tra le risposte immunitarie della mucosa alveolare1. La capacità degli alveoli di creare una risposta immunitaria efficiente è fondamentale per prevenire le infezioni polmonari e garantire la salute polmonare. Poiché i polmoni sono costantemente esposti a un’ampia gamma di potenziali rischi, tra cui batteri, virus, funghi, allergie e particolato, comprendere la complessità delle risposte immunitarie della mucosa alveolare è fondamentale per scoprire i meccanismi alla base delle infezioni respiratorie, dei disturbi infiammatori e del trattamento delle malattie polmonari1.

Per studiare in vitro i processi correlati all’infezione e all’infiammazione delle vie respiratorie, sono necessari modelli in grado di imitare fedelmente l’ambiente alveolare e le risposte immunitarie. Le colture cellulari 2D e i moduli animali sono stati utilizzati per decenni come strumenti essenziali per la ricerca biomedica sulla risposta immunitaria polmonare. Tuttavia, spesso hanno limitazioni nel loro potenziale traslazionale per le situazioni umane. I modelli Lung-on-chip possono contribuire a colmare il divario tra i tradizionali modelli in vitro e in vivo e fornire un nuovo approccio allo studio delle risposte immunitarie specifiche per l’uomo 2,3. I modelli lung-on-chip possono imitare l’interfaccia aria-liquido, necessaria alle cellule polmonari per ricapitolare le condizioni fisiologiche del tratto respiratorio e per sviluppare un modello tissutale più accurato e robusto. Questa tecnica di coltura consente un esame preciso della differenziazione cellulare, del funzionamento e delle risposte ai farmaci o agli stimoli correlati alla malattia in vitro2.

In questo studio, presentiamo un modello basato sulla microfluidica dell’alveolo umano come strumento efficace per ricapitolare l’ambiente alveolare umano applicando la perfusione per imitare il flusso sanguigno e la stimolazione biomeccanica delle cellule endoteliali e incorporando un’interfaccia aria-liquido con cellule epiteliali esposte verso una fase aerea4. Abbiamo sviluppato un alveolo microfluidico perfuso su chip che imita la struttura fisica e le interazioni biologiche dell’alveolo umano, con particolare attenzione all’interfaccia aria-liquido. Questa interfaccia svolge un ruolo cruciale nella differenziazione delle cellule epiteliali respiratorie, essenziale per modellare accuratamente l’ambiente polmonare. Il modello utilizza cellule epiteliali polmonari distali umane (H441) e cellule endoteliali della vena ombelicale umana (HUVECs), separate da membrane porose in polietilene tereftalato (PET), con macrofagi primari derivati da monociti posizionati tra gli strati cellulari. Questa configurazione replica l’intricata disposizione cellulare dell’alveolo ed è fondamentale per simulare accuratamente l’interfaccia aria-liquido, che è un fattore significativo nella funzione fisiologica del tessuto polmonare.

Il razionale alla base dello sviluppo del modello si estende all’integrazione delle cellule immunitarie circolanti e residenti nei tessuti. Questo approccio è progettato per imitare accuratamente la risposta infiammatoria dell’ospite alle infezioni respiratorie umane, fornendo un ambiente dinamico per studiare le interazioni patogeno-ospite. La presenza di macrofagi consente l’esame delle risposte immunitarie immediate e della loro interazione con i patogeni, riflettendo la prima linea di difesa contro le infezioni respiratorie. Inoltre, il design della piattaforma di biochip facilita la manipolazione comoda e precisa di segnali biofisici e biochimici, che è fondamentale per replicare la funzione degli alveoli in vitro. Questa flessibilità è fondamentale per sezionare i fattori che contribuiscono alle infezioni umane, consentendo ai ricercatori di regolare le condizioni per riflettere vari stati patologici o di testare potenziali interventi terapeutici. La compatibilità della piattaforma con diverse tecnologie di lettura, tra cui la microscopia avanzata, le analisi microbiologiche e l’analisi biochimica degli effluenti, ne migliora l’utilità. Queste capacità consentono una valutazione completa della risposta tissutale alle infezioni, compresa la valutazione del comportamento cellulare, della proliferazione dei patogeni e dell’efficacia delle risposte immunitarie.

Presentiamo un protocollo dettagliato e tecniche per creare e utilizzare un modello di alveolo umano su chip incentrato sulla replicazione dell’interfaccia aria-liquido e sull’integrazione delle cellule immunitarie per studiare le infezioni umane in vitro.

Protocol

Le cellule HUVEC sono isolate dal cordone ombelicale e utilizzate fino al passaggio 4. I monociti primari sono isolati da donatori sani da sangue intero. Lo studio è stato approvato dal comitato etico dell’Ospedale universitario di Jena, Jena, Germania (3939-12/13). Secondo la Dichiarazione di Helsinki, tutti gli individui che hanno donato cellule per lo studio hanno dato il loro consenso informato. 1. Giorno 1: Preparazione del biochip I biochip sono disponibili in…

Representative Results

Un esame delle alterazioni morfologiche e dell’espressione di proteine marcatrici potrebbe essere eseguito utilizzando la colorazione in immunofluorescenza. Dopo la co-coltura per 14 giorni, i lati vascolare ed epiteliale vengono analizzati per l’espressione dei rispettivi marcatori cellulari. Questo metodo è utile per studiare le interazioni e l’integrità delle componenti vascolari ed epiteliali, che è essenziale per la modellazione della malattia come lettura biologica funzionale correlata all’infezione. La colorazi…

Discussion

Il modello alveolo-on-chip rappresenta un modello tissutale multistrato dell’alveolo umano, che integra tipi cellulari essenziali del tratto respiratorio inferiore, comprese le cellule epiteliali polmonari, le cellule endoteliali e i macrofagi, coltivate in una disposizione organotipica in un ALI con media perfusione del rivestimento endoteliale. Cellule di diversi strati esprimono specifiche proteine marcatrici cellulari come la E-caderina, una molecola di adesione calcio-dipendente delle cellule epiteliali polmonari, c…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

H.K. e A.S.M. riconoscono il finanziamento del Leibniz Science-Campus InfectoOptics Jena, finanziato dalla linea di finanziamento Strategic Networking dell’Associazione Leibniz. M.A. e A.S.M. sono stati sostenuti dal progetto IGF IMPROVE finanziato dal Ministero Federale per gli Affari Economici e l’Energia sulla base di una risoluzione del Bundestag tedesco. A.S.M riconosce inoltre il sostegno finanziario del Cluster of Excellence Balance of the Microverse nell’ambito della Strategia di Eccellenza della Germania – EXC 2051 – Project-ID 690 390713860.

Materials

Consumables
Cellcounting chamber slides (Countess) Invitrogen C10283
Cell culture Multiwell Plates, 24 Well, steril Greiner Bio-One 662 160
Cell culture Multiwell Plates, 6 Well, steril Greiner Bio-One 657 160
Coverslips (24x40mm; #1.5) Menzel-Gläser 15747592
Eco wipes Dr. Schuhmacher 00-915-REW10003-01
Eppies 2.0 Sarstedt 72.691
Eppis 0.5 Sarstedt 72.699
Eppis 1.5 Sarstedt 72.690.001
Falcons 15mL Greiner Bio-One 188 271-TRI
Falcons 50mL Greiner Bio-One 227 261-TRI
Gauze swab Noba PZN 2417767
Gloves Nitril 3000 Meditrade 1280
Microscope slides Menzel-Gläser AAAA000001##12E
Multiwell Plates 24 Well, sterile Greiner Bio-One 662 160
Pasteur pipettes (glass) 150mm Assistent 40567001
Pasteur pipettes (glass) 230mm Assistent 40567002
Round-bottom tubes (PS, 5mL) Falcon 352052
Safety-Multifly-Set, 20G, 200mm Sarstedt 85.1637.235
Scalpels Dahlhausen 11.000.00.715
Serological pipettes 10mL Greiner Bio-One 607 160-TRI
Serological pipettes 25mL Greiner Bio-One 760 160-TRI
Serological pipettes 2mL Greiner Bio-One 710 160-TRI
Serological pipettes 50mL Greiner Bio-One 768 160-TRI
Serological pipettes 5mL Greiner Bio-One 606 160-TRI
S-Monovette, 7,5ml Z-Gel Sarstedt 1.1602
S-Monovette, 9,0ml K3E Sarstedt 02.1066.001
Softasept N Braun 3887138
T25 flask Greiner Bio-One 690 960
Tips sterile 10µL Greiner Bio-One 771 261
Tips sterile 1250µL Greiner Bio-One 750 261
Tips sterile 300µL Greiner Bio-One 738 261
Tips unsterile 10µL Greiner Bio-One 765 290
Tips unsterile 1000µL Greiner Bio-One 739 291
Tips unsterile 200µL Greiner Bio-One 686 290
Tweezers (Präzisionspinzette DUMONT abgewinkelt Inox08, 5/45, 0,06 mm) Roth K343.1
Chemicals
Descosept AF Dr. Schuhmacher N-20338
Ethanol 96% Nordbrand-Nordhausen 410
Fluorescein isothiocyanate (FITC)-dextran (3-5kDa) Sigma Aldrich FD4-100MG
Fluorescent Mounting Medium Dako S3023
Methanol VWR 20847.295
Saponin Fluka 47036
Tergazyme Alconox 1304-1
Cell culture
Collagen IV Sigma-Aldrich C5533-5MG
Dexametason Sigma-Aldrich D4902
DPBS (-/-) Lonza BE17-516F
DPBS (+/+) Lonza BE17-513F
EDTA solution Sigma-Aldrich E788S
Endothelial Cell Growth Medium Promocell C-22020
Endothelial Cell Growth Medium supplement mix Promocell C-39225
Fetal bovine Serum Sigma-Aldrich E2129-10g
H441 ATCC
Human recombinant GM-CSF Peprotech 300-30
Lidocain Sigma-Aldrich L5647-15G
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Gibco 15140-122 /-163
RPMI Gibco 72400047
Trypane blue stain 0.4% Invitrogen T10282
Trypsin Gibco 15090-046
Primary antibodies
Cadherin-5 / VE-Cadherin (goat) BD 610252
CD68 (rabbit) CellSignaling 76437
E-Cadherin (goat) R&D AF748
SP-A (mouse) Abcam ab51891
Secondary antibodies
AF488 (donkey anti mouse) Invitrogen R37114
AF647 (donkey anti mouse) invitrogen A31571
AF647 (donkey anti rabbit) Invitrogen A31573
Cy3 (donkey anti goat) jackson research 705-165-147
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dilactate) Invitrogen D3571
Microfluidic
Chip Dynamic 42 BC002
Male Luer Lock (small) ChipShop 09-0503-0270-09
Male mini luer plugs, row of four,PP, green Microfluidic chipshop 09-0558-0336-11
Male mini luer plugs, row of four,PP, opaque Microfluidic chipshop 09-0556-0336-09
Male mini luer plugs, row of four,PP, red Microfluidic chipshop 09-0557-0336-10
Plugs Cole Parmer GZ-45555-56
Reservoir 4.5mL ChipShop 16-0613-0233-09
Tubing Dynamic 42 ST001
Equipment
Autoclave Tuttnauer 5075 ELV
Centrifuge Eppendorf 5424
CO2 Incubator Heracell 150i
Countess automated cell counter Invitrogen C10227
Flowcytometer BD FACS Canto II
Freezer (-20 °C) Liebherr LCexv 4010
Freezer (-80 °C) Heraeus Herafreeze HFU 686
Fridge Liebherr LCexv 4010
Heraeus Multifuge Thermo Scientific X3R
Microscope Leica DM IL LED
Orbital shaker Heidolph Reax2000
Peristaltic pump REGLO Digital MS-4/12 ISM597D
Pipettes 10µL Eppendorf Research plus 3123000020
Pipettes 100µL Eppendorf Research plus 3123000047
Pipettes 1000µL Eppendorf Research plus 3123000063
Pipettes 2.5µL Eppendorf Research plus 3123000012
Pipettes 20µL Eppendorf Research plus 3123000039
Pipettes 200µL Eppendorf Research plus 3123000055
Scale Sartorius 6101
Scale Sartorius TE1245
Sterile bench Kojair Biowizard SL-130
Waterbath Julabo SW-20C
Fluorescence Microscope Setup
Apotome.2 Zeiss
Illumination device Zeiss HXP 120 C
Microscope Zeiss Axio Observer 5
Optical Sectioning Zeiss ApoTome
Power Supply Microscope Zeiss Eplax Vp232
Software
ZEN Blue Edition Zeiss

References

  1. Mettelman, R. C., Allen, E. K., Thomas, P. G. Mucosal immune responses to infection and vaccination in the respiratory tract. Immunity. 55 (5), 749-780 (2022).
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Cite This Article
Koceva, H., Amiratashani, M., Rennert, K., Mosig, A. S. Immunocompetent Alveolus-on-Chip Model for Studying Alveolar Mucosal Immune Responses. J. Vis. Exp. (207), e66602, doi:10.3791/66602 (2024).

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