Summary

Регулирование роста шванновских клеток с помощью наносекундного импульсного электрического поля для регенерации периферических нервов in vitro

Published: May 03, 2024
doi:

Summary

В данной статье мы представляем протокол применения наносекундного импульсного электрического поля (nsPEF) для стимуляции шванновских клеток in vitro. Способность к синтезу и секреции соответствующих факторов и изменения в поведении клеток подтвердили успешную стимуляцию с использованием nsPEF. Исследование дает положительное представление о методе регенерации периферических нервов.

Abstract

Шванновские клетки (СК) являются миелинизирующими клетками периферической нервной системы, играющими решающую роль в регенерации периферических нервов. Наносекундное импульсное электрическое поле (nsPEF) — это новый метод, применимый в электростимуляции нервов, который продемонстрировал свою эффективность в стимулировании пролиферации клеток и других биологических процессов. С целью оценки того, претерпевают ли СК значимые изменения при нПЭФ и помогают изучить потенциал новых методов регенерации периферических нервов, культивируемые клетки RSC96 подвергали стимуляции нПЭФ при 5 кВ и 10 кВ с последующим продолжением культивирования в течение 3-4 дней. Впоследствии были оценены некоторые релевантные факторы, экспрессируемые СК, чтобы продемонстрировать успешную стимуляцию, включая специфический маркерный белок, нейротрофический фактор, фактор транскрипции и регулятор миелинизации. Репрезентативные результаты показали, что nsPEF значительно усиливает пролиферацию и миграцию СК и способность синтезировать соответствующие факторы, которые положительно влияют на регенерацию периферических нервов. В то же время, более низкая экспрессия GFAP указывала на благоприятный прогноз повреждения периферических нервов. Все эти результаты показывают, что нПСЭФ обладает большим потенциалом в качестве эффективного метода лечения повреждений периферических нервов путем стимуляции СК.

Introduction

Каждый год миллионы людей страдают от повреждения нервов, затрагивающих как периферическую нервную систему (ПНС), так и центральную нервную систему (ЦНС)1. Исследования показали, что аксональная восстановительная способность ЦНС после повреждения нерва достаточно ограничена, в то время как ПНС демонстрирует повышенную способность благодаря значительной пластичности СК2. Тем не менее, достижение полной регенерации после травм периферических нервов остается трудной задачей и продолжает представлять серьезную проблему для здоровья человека 3,4. В настоящее время аутотрансплантаты остаются распространенным методом лечения, несмотря на недостатки заболеваемости донорских участков и ограниченную доступность5. Эта ситуация побудила исследователей изучить альтернативные методы лечения, включая материалы6,молекулярные факторы 7 и электрическую стимуляцию (ЭС). В качестве фактора, способствующего росту аксонов и регенерации нервов8, выбор подходящего метода ЭС и изучение взаимосвязи между ЭС и СК становятся важными.

СК являются основными глиальными клетками ПНС, играющими решающую роль в регенерации ПНС 9,10. После повреждения периферических нервов СК претерпевают быструю активацию, обширноеперепрограммирование 2 и переход из миелинообразующего состояния в морфологию, поддерживающую рост, для проведения регенерации нерва2. Значительная пролиферация СК происходит на дистальном конце поврежденного нерва, в то время как СК дистальной культи подвергаются пролиферации и удлинению, образуя полосу Бангнера, которая необходима для направления аксонов к органу-мишени11. Кроме того, СК из проксимального и дистального отделов культи нерва мигрируют в нервный мостик, образуя СК, способствующие регенерации аксонов12. Кроме того, предыдущие исследования показали, что синтез и секреция соответствующих факторов, связанных с СК, изменяются в случаях регенерации периферических нервов, включая транскрипционные факторы13, нейротрофические факторы14 и регуляторы миелинизации13. Это также дает индикаторы для оценки активности СК. Основываясь на них, было широко исследовано содействие пролиферации, миграции, синтезу и секреции соответствующих факторов СК дляулучшения регенерации периферических нервов.

Предыдущие исследования продемонстрировали возможность использования ЭС для регенерации нервов1. Широко распространенное объяснение состоит в том, что ЭС может индуцировать деполяризацию клеточных мембран, изменять мембранный потенциал и влиять на функции мембранных белков, изменяя распределение зарядов на этихбиомолекулах. Тем не менее, широко применяемый интенсивный ПСЭФ может вызвать сильную боль, непроизвольные сокращения мышц и фибрилляцию сердца8. Он также повышает активность креатинкиназы (КФК), снижает мышечную силу и вызывает развитие отсроченной мышечной болезненности (СОМБ)16. nsPEF – это новый метод, который стимулирует испытуемых высоковольтными электрическими полями в течение наносекундного импульса, и постепенно используетсяв исследованиях на клеточном уровне. В предыдущих исследованиях сообщалось, что возможным обоснованием nsPEF, способствующего пролиферации клеток и активности органелл, является образование мембранных нанопор и активация ионных каналов, что приводит к увеличению концентрации цитоплазматическогоCa2+ 19. nsPEF использует технологию импульсной мощности для зарядки клеточной мембраны, производя импульсы, характеризующиеся короткой продолжительностью, быстрым временем нарастания, высокой мощностью и низкой плотностью энергии20. Эти характеристики позволяют предположить, что nsPEF может быть предпочтительным режимом с минимальными побочными эффектами стимуляции8. Кроме того, nsPEF обладает такими преимуществами, как минимально инвазивные процедуры, обратимость, регулируемость и неразрушаемость нервных тканей по сравнению с хирургическими вмешательствами. Одним из основных направлений исследований nsPEF в биомедицинской области является его применение для абляции опухолевой ткани с использованием высокоэнергетической стимуляции электрическим полем 21,22,23. Некоторые результаты исследований указывают на то, что 12-nsPEF может стимулировать периферические нервы, не вызывая повреждения24. Тем не менее, в настоящее время существуют ограниченные данные относительно применения nsPEF в области регенерации нервов. Кроме того, стимуляция СК с помощью nsPEF является новаторской попыткой, способствующей дальнейшим исследованиям in vivo и клиническим исследованиям. В этом исследовании изучается, может ли стимуляция СК nsPEF способствовать регенерации нервов и обеспечить надежную основу для последующих углубленных и систематических исследований.

Protocol

1. Размораживание криоконсервированных клеток RSC96 Разморозьте криовиал, содержащий 1 мл клеточной суспензии, быстро встряхнув его на водяной бане при температуре 37 °С, а затем добавьте его в центрифужную пробирку, содержащую 4-6 мл готовой питательной среды, и хорошо переме…

Representative Results

Импульсные электрические поля низкой интенсивности стимулируют пролиферацию клетокПо данным анализа CCK-8, скорость пролиферации RSC96 в группе 5 кВ/см была значительно выше, чем в клетках контрольной группы. Однако по мере увеличения параметров (20 кВ/см и 40 кВ/см) скорость проли?…

Discussion

Согласно сообщениям, в последние годы наблюдается быстрый рост применения nsPEF. nsPEF оказывает высоконаправленное воздействие только на желаемую область, обеспечивая достаточное количество энергии для лечения, не вызывая дополнительных термических повреждений, что делает его более без…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа финансировалась в рамках Национального проекта по разработке ключевых научных приборов и оборудования (NO.82027803).

Materials

Antifade mounting medium Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G1401
Anti-GFAP Mouse mAb Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GB12100-100
Anti-Neurofilament heavy polypeptide Mouse mAb Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GB12144-100
Anti-S100 beta Mouse mAb Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GB14146-100
BSA Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GC305010
Coverslip Jiangsu Shitai experimental equipment Co., LTD 10212432C
CY3-labeled goat anti-mouse IgG Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GB21302
DAPI Staining Reagent Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G1012
Decolorizing shaker Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD DS-2S100
High Voltage Power Supply for nsPEF Matsusada Precision Inc. AU-60P1.6-L
Histochemical pen Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G6100
Membrane breaking liquid Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G1204
Microscope slide Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G6012
Palm centrifuge Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD MS6000
PBS powdered Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G0002
Pipette Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD
Positive fluorescence microscope Nikon, Japan NIKON ECLIPSE C1
Rabbit Anti-SOX10/AF488 Conjugated antibody Beijing Bioss Biotechnology Co., LTD BS-20563R-AF488
RSC96 Schwann cells Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD STCC30007G-1
scanister 3DHISTECH Pannoramic MIDI
Special cable for nsPEF Times Microwave Systems M17/78-RG217
Turbine mixer Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD MV-100

References

  1. Jing, W., et al. Study of electrical stimulation with different electric-field intensities in the regulation of the differentiation of PC12 cells. ACS Chem Neurosci. 10 (1), 348-357 (2018).
  2. Nocera, G., Jacob, C. Mechanisms of Schwann cell plasticity involved in peripheral nerve repair after injury. Cell Mol Life Sci. 77, 3977-3989 (2020).
  3. Aguilar, Z. . Nanomaterials for Medical Applications. , (2012).
  4. Xie, S., et al. Efficient generation of functional Schwann cells from adipose-derived stem cells in defined conditions. Cell Cycle. 16 (9), 841-851 (2017).
  5. Rosenbalm, T. N., Levi, N. H., Morykwas, M. J., Wagner, W. D. Electrical stimulation via repeated biphasic conducting materials for peripheral nerve regeneration. J Mater Sci Mater Med. 34 (11), 1-18 (2023).
  6. Daly, W. T., et al. Comparison and characterization of multiple biomaterial conduits for peripheral nerve repair. Biomaterials. 34 (34), 8630-8639 (2013).
  7. Lee, B. -. K., et al. End-to-side neurorrhaphy using an electrospun PCL/collagen nerve conduit for complex peripheral motor nerve regeneration. Biomaterials. 33 (35), 9027-9036 (2012).
  8. Kim, V., Gudvangen, E., Kondratiev, O., Redondo, L., Xiao, S., Pakhomov, A. G. Peculiarities of neurostimulation by intense nanosecond pulsed electric fields: how to avoid firing in peripheral nerve fibers. Int J Mol Sci. 22 (13), 7051 (2021).
  9. Assinck, P., Duncan, G. J., Hilton, B. J., Plemel, J. R., Tetzlaff, W. Cell transplantation therapy for spinal cord injury. Nat Neurosci. 20 (5), 637-647 (2017).
  10. Chen, Y. Y., McDonald, D., Cheng, C., Magnowski, B., Durand, J., Zochodne, D. W. Axon and Schwann cell partnership during nerve regrowth. J Neuropathol Exp Neurol. 64 (7), 613-622 (2005).
  11. Yi, S., et al. Tau modulates Schwann cell proliferation, migration and differentiation following peripheral nerve injury. J Cell Sci. 132 (6), (2019).
  12. Min, Q., Parkinson, D. B., Dun, X. Migrating Schwann cells direct axon regeneration within the peripheral nerve bridge. Glia. 69 (2), 235-254 (2021).
  13. Zhang, Y., Zhao, Q., Chen, Q., Xu, L., Yi, S. Transcriptional control of peripheral nerve regeneration. Mol Neurobiol. 60 (1), 329-341 (2023).
  14. Nishi, M., Kawata, M., Azmitia, E. C. Trophic interactions between brain-derived neurotrophic factor and S100β on cultured serotonergic neurons. Brain Res. 868 (1), 113-118 (2000).
  15. Gu, Y., et al. miR-sc8 inhibits Schwann cell proliferation and migration by targeting EGFR. PLoS One. 10 (12), e0145185 (2015).
  16. Dong, H. -. L., et al. AMPK regulates mitochondrial oxidative stress in C2C12 myotubes induced by electrical stimulations of different intensities. Nan Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao. 38 (6), 742-747 (2018).
  17. Beebe, S. J., Blackmore, P. F., White, J., Joshi, R. P., Schoenbach, K. H. Nanosecond pulsed electric fields modulate cell function through intracellular signal transduction mechanisms. Physiol Meas. 25 (4), 1077 (2004).
  18. Haberkorn, I., Siegenthaler, L., Buchmann, L., Neutsch, L., Mathys, A. Enhancing single-cell bioconversion efficiency by harnessing nanosecond pulsed electric field processing. Biotechnol Adv. 53, 107780 (2021).
  19. Ruiz-Fernández, A. R., Campos, L., Gutierrez-Maldonado, S. E., Núñez, G., Villanelo, F., Perez-Acle, T. Nanosecond pulsed electric field (nsPEF): Opening the biotechnological Pandora’s box. Int J Mol Sci. 23 (11), 6158 (2022).
  20. Nuccitelli, R., et al. First-in-human trial of nanoelectroablation therapy for basal cell carcinoma: proof of method. Exp Dermatol. 23 (2), 135-137 (2014).
  21. Nuccitelli, R., et al. Non-thermal nanoelectroablation of UV-induced murine melanomas stimulates an immune response. Pigment Cell Melanoma Res. 25 (5), 618-629 (2012).
  22. Carr, L., et al. A nanosecond pulsed electric field (nsPEF) can affect membrane permeabilization and cellular viability in a 3D spheroids tumor model. Bioelectrochemistry. 141, 107839 (2021).
  23. Hornef, J., Edelblute, C. M., Schoenbach, K. H., Heller, R., Guo, S., Jiang, C. Thermal analysis of infrared irradiation-assisted nanosecond-pulsed tumor ablation. Sci Rep. 10 (1), 5122 (2020).
  24. Zuo, K. J., Gordon, T., Chan, K. M., Borschel, G. H. Electrical stimulation to enhance peripheral nerve regeneration: Update in molecular investigations and clinical translation. Exp Neurol. 332, 113397 (2020).
  25. Juckett, L., Saffari, T. M., Ormseth, B., Senger, J. -. L., Moore, A. M. The effect of electrical stimulation on nerve regeneration following peripheral nerve injury. Biomolecules. 12 (12), 1856 (2022).
  26. Jessen, K. R., Mirsky, R. Negative regulation of myelination: relevance for development, injury, and demyelinating disease. Glia. 56 (14), 1552-1565 (2008).
  27. Chen, Z. -. L., Yu, W. -. M., Strickland, S. Peripheral regeneration. Annu Rev Neurosci. 30, 209-233 (2007).
  28. Yin, D., et al. Cutaneous papilloma and squamous cell carcinoma therapy utilizing nanosecond pulsed electric fields (nsPEF). PloS One. 7 (8), e43891 (2012).
  29. Qi, F., et al. Photoexcited wireless electrical stimulation elevates nerve cell growth. Colloids Surf B Biointerfaces. 220, 112890 (2022).
  30. Mi, Y., Liu, Q., Li, P., Xu, J., Yang, Q., Tang, J. Targeted gold nanorods combined with low-intensity nsPEFs enhance antimelanoma efficacy in vitro. Nanotechnology. 31 (35), 355102 (2020).
  31. Ho, T. -. C., et al. Hydrogels: Properties and applications in biomedicine. Molecules. 27 (9), 2902 (2022).

Play Video

Cite This Article
Han, J., Wang, Z., Dong, Y., Zou, X., Wang, H., Chen, Y., Abdalbary, S. A., Tu, T., Lu, H. Regulating Schwann Cell Growth by Nanosecond Pulsed Electric Field for Peripheral Nerve Regeneration In Vitro. J. Vis. Exp. (207), e66097, doi:10.3791/66097 (2024).

View Video