تتيح مؤشرات الكالسيوم المشفرة وراثيا (GECI) إجراء تحليل قوي على مستوى السكان لإشارات الخلايا العصبية الحسية. هنا ، قمنا بتطوير نهج جديد يسمح بتصور GECI في الجسم الحي لنشاط الخلايا العصبية للعقد مثلثة التوائم في الفئران.
تمكن مؤشرات الكالسيوم المشفرة وراثيا (GECIs) تقنيات التصوير من مراقبة التغيرات في الكالسيوم داخل الخلايا في مجموعات الخلايا المستهدفة. نسبة الإشارة إلى الضوضاء الكبيرة تجعل GECIs أداة قوية للكشف عن النشاط المستحث في الخلايا العصبية الحسية. تسهل GECIs التحليل على مستوى السكان لتشفير التحفيز مع عدد الخلايا العصبية التي يمكن دراستها في وقت واحد. يتم ترميز السكان هذا بشكل مناسب في الجسم الحي. تستخدم العقد الجذرية الظهرية (DRG) ، التي تضم سوما الخلايا العصبية الحسية التي تعصب الهياكل الجسدية والحشوية أسفل الرقبة ، على نطاق واسع للتصوير في الجسم الحي لأن هذه الهياكل يمكن الوصول إليها بسهولة نسبية. في الآونة الأخيرة ، تم استخدام هذه التقنية في الفئران لدراسة الخلايا العصبية الحسية في العقدة الثلاثية التوائم (TG) التي تعصب الهياكل الفموية والقحفية الوجهية. هناك العديد من الأسباب لدراسة TG بالإضافة إلى DRG ، بما في ذلك القائمة الطويلة من متلازمات الألم الخاصة بالهياكل الفموية والقحفية الوجهية التي يبدو أنها تعكس التغيرات في نشاط الخلايا العصبية الحسية ، مثل ألم العصب الثلاثي التوائم. تستخدم الفئران على نطاق واسع في دراسة الخلايا العصبية DRG و TG بسبب توفر الأدوات الوراثية. ومع ذلك ، مع وجود اختلافات في الحجم ، وسهولة التعامل ، والاختلافات المحتملة في الأنواع المهمة ، هناك أسباب لدراسة الخلايا العصبية TG للفئران بدلا من الفأر. وهكذا ، قمنا بتطوير نهج لتصوير الخلايا العصبية TG الفئران في الجسم الحي. قمنا بحقن الجراء حديثي الولادة (p2) داخل الصفاق بترميز AAV GCaMP6s ، مما أدى إلى إصابة >90٪ من كل من الخلايا العصبية TG و DRG. تم تصوير TG في البالغين بعد حج القحف والتقشير ، وتم رصد التغيرات في مضان GCaMP6s في الخلايا العصبية TG بعد تحفيز مناطق الفك السفلي والفك العلوي من الوجه. أكدنا أن الزيادات في التألق كانت محفزة مع إحصار الأعصاب المحيطية. في حين أن هذا النهج له العديد من الاستخدامات المحتملة ، فإننا نستخدمه لتوصيف السكان (السكان) الفرعية للخلايا العصبية TG التي تغيرت بعد إصابة الأعصاب الطرفية.
يبدأ الإحساس الجسدي ، وهو الترميز العصبي للمحفزات الميكانيكية والحرارية والكيميائية التي تصطدم بالجلد أو الهياكل الجسدية الأخرى ، بما في ذلك العضلات والعظام والأحشاء ، بالنشاط في الخلايا العصبية الواردة الأولية التي تعصب هذه الهياكل1. قدمت الأساليب الفيزيولوجية الكهربية القائمة على وحدة واحدة ثروة من المعلومات حول الأنواع الفرعية الواردة المشاركة في هذه العملية وكذلك كيف يمكن أن تتغير خصائص استجابات التحفيز بمرور الوقت1،2،3. ومع ذلك ، في حين لا تزال هناك أدلة قوية تدعم نظرية الخط المسمى ، والتي تشير إلى أن طرائق حسية محددة يتم نقلها بواسطة مجموعة (مجموعات) فرعية محددة من الخلايا العصبية ، فإن قدرة العديد من المجموعات السكانية الفرعية للخلايا العصبية على الاستجابة لنفس الأنواع من المحفزات الميكانيكية والحرارية والكيميائية تشير إلى أن غالبية المحفزات الحسية الجسدية يتم ترميزها بواسطة مجموعات فرعية متعددة من الخلايا العصبية4 ، 5. وبالتالي ، فإن الفهم الأفضل للإحساس الجسدي لن يأتي إلا مع القدرة على دراسة نشاط 10 ، إن لم يكن المئات ، من الخلايا العصبية في وقت واحد.
سهلت التطورات في الأساليب البصرية مع ظهور تقنيات التصوير البؤري والمتعدد الفوتونات والرقمي ، وبالتالي تقنيات التصوير الرقمي ، القدرة على إجراء تحليلات غير جراحية نسبيا على مستوى السكان للنشاط العصبي 6,7. كانت إحدى العقبات الأخيرة في تطبيق هذه التكنولوجيا هي تطوير أدوات لتمكين التقييم البصري للنشاط العصبي. بالنظر إلى سرعة جهد الفعل الذي يمكن أن يبدأ وينتهي في أقل من ميلي ثانية ، فإن الصبغة الحساسة للجهد مع القدرة على متابعة التغيرات في جهد الغشاء بسرعة جهد الفعل ستكون الأداة المثالية لهذا الغرض. ولكن في حين كان هناك تقدم هائل في هذا المجال7،8،9،10 ، فإن نسبة الإشارة إلى الضوضاء للعديد من هذه الأصباغ لا تزال غير عالية بما يكفي لتمكين تحليل السكان لمئات الخلايا العصبية على مستوى الخلية الواحدة. كنهج بديل ، تحول الباحثون إلى مراقبة التغيرات في تركيز Ca2+ داخل الخلايا ([Ca2+] i). كانت القيود المفروضة على هذه الاستراتيجية واضحة منذ البداية وتشمل حقيقة أن الزيادة في [Ca2+] i هي مقياس غير مباشر للنشاط العصبي11 ؛ أن زيادة في [Ca2+]i قد تحدث بشكل مستقل عن تدفق Ca2+ المرتبط بتنشيط قنوات Ca2+ ذات الجهد الكهربائي (VGCCs)12,13؛ أن حجم ومدة عابر Ca2+ يمكن التحكم فيهما من خلال عمليات مستقلة عن نشاط VGCC11،12،14؛ وأن المسار الزمني لعابري Ca2+ يتجاوز بكثير مسار جهدالفعل 15. ومع ذلك ، هناك عدد من المزايا المهمة المرتبطة باستخدام Ca2+ كمقياس غير مباشر للنشاط العصبي. ليس أقلها نسبة الإشارة إلى الضوضاء المرتبطة بمعظم مؤشرات Ca2+ ، مما يعكس حجم التغيير في Ca2+ داخل الخلايا وحقيقة أن الإشارة تنشأ من الفضاء ثلاثي الأبعاد للسيتوسول بدلا من الفضاء ثنائي الأبعاد لغشاء الخلية. علاوة على ذلك ، مع تطوير مؤشرات Ca2+ المشفرة وراثيا (GECI’s) ، من الممكن الاستفادة من الاستراتيجيات الجينية لدفع التعبير عن مؤشرات Ca2+ في مجموعات فرعية محددة من الخلايا ، وتسهيل التحليلات على مستوى السكان في الاستعدادات السليمة (على سبيل المثال ، انظر16).
بالنظر إلى عدد الأدوات الوراثية المتاحة الآن في الفئران ، فلا ينبغي أن يكون مفاجئا أن GECI قد تم استخدامه على نطاق واسع في هذا النوع. تم تطوير خطوط الماوس مع تعبير GECI التأسيسي في مجموعات فرعية من الخلايا العصبية الحسية7،16،17. مع تطور خطوط الماوس التي تعبر عن عمليات إعادة التركيب في أنواع معينة من الخلايا ، من الممكن استخدام استراتيجيات أكثر تعقيدا للتحكم في تعبير GECI15. ومع ذلك ، في حين أن هذه الأدوات أقوى من أي وقت مضى ، إلا أن هناك عددا من الأسباب التي تجعل الأنواع الأخرى ، مثل الفئران ، أكثر ملاءمة لبعض الأسئلة التجريبية. وتشمل هذه الحجم الأكبر ، مما يسهل عددا من عمليات التلاعب التجريبية التي يصعب ، إن لم يكن مستحيلا ، في الماوس الأصغر ؛ سهولة تدريب الفئران في المهام السلوكية المعقدة نسبيا ؛ وعلى الأقل بعض الأدلة على أن الخصائص الفيزيائية الحيوية وأنماط التعبير للعديد من القنوات الأيونية في الخلايا العصبية الحسية للفئران قد تكون أكثر تشابها مع تلك التي لوحظت في الخلايا العصبية الحسية البشرية من نفس القنوات في الفئران بالنسبة إلىالإنسان 18.
في حين أن نقل المنبهات الحسية الجسدية يحدث بشكل عام في المحطات الطرفية للوارد الأولي ، يجب أن يمر جهد الفعل الذي يبدأ في المحيط عبر الهيكل الذي يضم سوماتا واردة أولية ، يشار إليها باسم الجذر الظهري (DRG) أو العقد ثلاثية التوائم (TG) قبل الوصول إلى الجهاز العصبي المركزي19. في حين أن هناك أدلة على أنه ليس كل جهد فعل ينتشر على طول محور وارد أولي سيغزو جسم الخلية20 ، نتيجة لحقيقة أن سوماتا الواردة الأولية متصلة بالمحور العصبي الوارد الرئيسي عبر تقاطع T19 ، يبدو أن غالبية جهود الفعل التي بدأت في المحيط تغزو سوما21. وهذا يمنح ثلاث مزايا تجريبية عند استخدام GECIs لتقييم الترميز السكاني في الواردات الأولية: الحجم الكبير لجسم الخلية بالنسبة إلى المحاور يزيد من الإشارة إلى الضوضاء عند استخدام [Ca2+] i كمقياس غير مباشر للنشاط الوارد. من السهل الوصول إلى DRG بشكل عام ؛ وتقييم النشاط في موقع بعيد مكانيا عن المحطات الواردة يقلل من التأثير المحتمل للجراحة اللازمة لكشف العقد على خصائص استجابة التحفيز للمحطات الواردة. ومع ذلك ، نظرا لأن TG تقع أسفل الدماغ (أو فوق اللوحة) ، فإن الوصول إليها أصعب بكثير من DRG. علاوة على ذلك ، في حين أن هناك العديد من أوجه التشابه بين الخلايا العصبية DRG و TG ، إلا أن هناك قائمة متزايدة من الاختلافات أيضا. وهذا يشمل التنظيم الجسدي تقريبا للخلايا العصبية في TG22 ، والهياكل الفريدة المعصبة ، وأنماط الإنهاء الطرفية المركزية المختلفة23،24،25،26 ، والآن قائمة متزايدة من الاختلافات في كل من التعبير الجيني27،28 وتعبير المستقبلات الوظيفية29. بالإضافة إلى ذلك ، نظرا لأننا مهتمون بتحديد الآليات المحيطية للألم ، فإن العدد الكبير نسبيا من متلازمات الألم التي تبدو فريدة من نوعها في النظام الثلاثي التوائم (على سبيل المثال ، الصداع النصفي ، ألم العصب الثلاثي التوائم ، متلازمة الفم الحارق) التي يبدو أنها تنطوي على نشاط شاذ في الحالات الأولية30،31،32 ، يشير إلى أن TG يحتاج إلى دراسة مباشرة.
وهكذا ، في حين تمت دراسة خصائص استجابة التحفيز للخلايا العصبية TG مع GECIs في الفأر16 ، لأن الأسباب المذكورة أعلاه تشير إلى أن الفئران قد تكون نوعا أكثر ملاءمة لمعالجة مجموعة متنوعة من الأسئلة التجريبية ، كان الغرض من الدراسة الحالية هو تطوير نهج لاستخدام GECIs لدراسة الخلايا العصبية TG في الفئران. لتحقيق ذلك ، استخدمنا نهجا فيروسيا لدفع التعبير عن GECI GCaMP6s في الجهاز العصبي المحيطي. ثم أزلنا الدماغ الأمامي للسماح بالوصول إلى TG. أخيرا ، تم تطبيق المحفزات الميكانيكية والحرارية على الوجه بينما تم تقييم الاستجابات العصبية تحت المجهر الفلوري. تدعم هذه البيانات معا دورا لاستخدام الفئران للتحقيق في التغييرات في TG في العديد من الولايات ، وتوسيع مجموعة الأدوات للمحققين المهتمين بالترميز الحسي في نظام مثلث التوائم.
هنا ، نوضح طريقة سريعة وغير جراحية لتوليد فأر GECI لتصوير TG. اخترنا محفز CAG لدفع والحفاظ على مستويات عالية من التعبير الجيني. بينما تشير الدراسات السابقة إلى أن الأنماط المصلية الأخرى AAV قد تدفع بكفاءة التعبير الجيني في الخلايا العصبية DRG39 ، فإن نتائجنا تتفق مع دراسة حديثة تتضمن ?…
The authors have nothing to disclose.
نود أن نشكر الدكتورة كاثي ألبرز وبريان ديفيس على استخدام برنامج Leica Microscope and Metamorph ، وتشارلز وارويك للمساعدة في بناء جهاز بلتيير الحراري الخاص بنا ، والدكتور ريموند سيكولا للمساعدة في استكشاف أخطاء التحضير الجراحي وإصلاحها. تم دعم هذا العمل بمنح من المعاهد الوطنية للصحة: F31NS125993 (JYG) و T32NS073548 (JYG) و R01NS122784 (MSG و RS).
AAV9-CAG-WPRE-GCaMP6s-SV40 | Addgene | 100844-AAV9 | AAV9-GCaMP6s virus |
ACEpromazine maleate | Covetrus | 11695-0095-5 | 10 mg/mL |
AnaSed (Xylazine) injection | AKORN Animal Health | 23076-35-9 | 20 mg/mL |
CTR5500 Electronics box | Leica | 11 888 820 | Power Supply |
Cutwell burr drill bit | Ransom & Randolph | ¼ round | |
DM 6000 FS | Leica | 11 888 928 | Base Stand |
EL6000 | Leica | EL6000 | Light source with 120 W mercury bulb |
Forceps | FST | 11252-00 | Dumont No. 05 |
Friedman rongeurs | FST | 16000-14 | 2.5 mm cup size |
Friedman-Pearson rongeurs | FST | 16021-14 | 1 mm cup size |
Heating pad (Temperature therapy pad) | STRYKER | 8002-062-022 | |
Ketamine hydrochloride | Covetrus | 1695-0703-1 | 100 mg/mL |
Plan Fluor 20x/0.40 | Leica | MRH00105 | 20x objective, 0.4 NA10.8 mm WD |
Power handle high-temp cautery pen | Bovie | HIT1 | handheld Change-A-Tip cautery pen |
Prime 95B | Photometrics | Prime 95B | CMOS Camera |
Saline | Fisher Scientific | NC0291799 | 0.9% Sterile Saline |
Scalpel blade | Fisher Scientific | 22-079-701 | size 15 disposable blade |
Spatula | BRI | 48-1460 | brain spatula |
Spring scissors | FST | 91500-09 | Student Vannas, 5 mm cutting edge |
Spring scissors | FST | 15012-12 | Noyes, 14 mm cutting edge |
STP6000 Smart touch panel | Leica | 11 501 255 | Control Panel |
Syringe | Hamilton | 80201 | 25 μL Model 1702 Luer Tip syringe |
Water heater | Adroit | HTP-1500 |