Псевдотипированные вирусы (ЛВ) представляют собой вирионы с дефектами репликации, которые используются для изучения взаимодействий между хозяином и вирусом в более безопасных условиях, чем при работе с подлинными вирусами. Здесь представлен подробный протокол, показывающий, как ПВ SARS-CoV-2 можно использовать для проверки нейтрализующей способности сыворотки крови пациентов после вакцинации против COVID-19.
Псевдотипированные вирусы (ЛВ) представляют собой молекулярные инструменты, которые могут быть использованы для изучения взаимодействий между вирусом хозяина и для проверки нейтрализующей способности образцов сыворотки, в дополнение к их более известному использованию в генной терапии для доставки интересующего гена. ФВ являются дефектными для репликации, потому что вирусный геном разделен на различные плазмиды, которые не включены в ФВ. Эта безопасная и универсальная система позволяет использовать фотоэлектрические элементы в лабораториях 2-го уровня биобезопасности. Здесь мы представляем общую методологию получения лентивирусных ВП на основе трех плазмид, упомянутых здесь: (1) основная плазмида, несущая репортерный ген, необходимый для мониторинга инфекции; (2) упаковочная плазмида, несущая гены всех структурных белков, необходимых для генерации PV; (3) плазмида экспрессии гликопротеина на поверхности оболочки, которая определяет тропизм вируса и опосредует проникновение вируса в клетку-хозяина. В этой работе SARS-CoV-2 Spike представляет собой гликопротеин оболочки, используемый для производства нерепликативных псевдотипированных лентивирусов SARS-CoV-2.
Вкратце, упаковочные клетки (HEK293T) были котрансфицированы тремя различными плазмидами с использованием стандартных методов. Через 48 ч надосадочную жидкость, содержащую PV, собирали, фильтровали и хранили при -80 °C. Инфекционность ВВ SARS-CoV-2 проверяли путем изучения экспрессии репортерного гена (люциферазы) в клеточной линии-мишени через 48 ч после заражения. Чем выше значение единиц относительной люминесценции (RLU), тем выше частота заражения/трансдукции. Кроме того, к последовательно разбавленным образцам сыворотки крови добавляли инфекционные ФВ для изучения процесса нейтрализации проникновения псевдовирусов в клетки-мишени, измеряемого как снижение интенсивности РЛУ: более низкие значения, соответствующие высокой нейтрализующей активности.
Псевдотипированные вирусы (ФВ) — это молекулярные инструменты, используемые в микробиологии для изучения взаимодействий вируса-хозяина и патоген-патоген 1,2,3,4. PV состоят из внутренней части, вирусного ядра, которое защищает вирусный геном, и внешней части, гликопротеинов оболочки на поверхности вируса, которые определяюттропизм. Псевдовирус неспособен к репликации в клетке-мишени, потому что он не содержит всей генетической информации для генерации новых вирусных частиц. Такое сочетание специфических особенностей делает PV безопасной альтернативой вирусу дикого типа. Вирусы дикого типа, с другой стороны, высокопатогенны и не могут быть использованы в лабораториях BSL 2 для анализа6.
Инфекционность ФВ может контролироваться репортерным геном, обычно кодирующим флуоресцентный белок (GFP, RFP, YFP) или фермент, продуцирующий хемилюминесцентные продукты (люциферазу). Он содержится в одной из плазмид, используемых для производства ФВ, и включен в геном псевдовируса7.
В настоящее время существует несколько типов фотоэлектрических ядер, в том числе лентивиральные частицы, основанные на геноме ВИЧ-1. Большим преимуществом ПВ на основе ВИЧ-1 перед другими платформами является их внутренний процесс интеграции в геном клетки-мишени8. Несмотря на то, что ВИЧ-1 является высококонтагиозным вирусом и возбудителем СПИДа, эти лентивирусные векторы безопасны для использования благодаря обширным этапам оптимизации, которые были предприняты на протяжении многих лет. Оптимальные условия безопасности были достигнуты при введении 2-х лентивирусных векторовnd-го поколения, в которых вирусные гены истощались без влияния на трансдукционные возможности9. 3-е и4-е поколения способствовали повышению безопасности работы с лентивирусным вектором с дальнейшим расщеплением вирусного генома на отдельные плазмиды10,11. Последние поколения ФВ, как правило, используются для производства лентивирусных векторов для генной терапии.
PV могут быть использованы для изучения взаимодействия между вирусами и клетками хозяина, как на этапе производства, так и на этапе заражения. ФВ особенно используются в анализах на нейтрализацию псевдовирусов (ПВНК). ПВНК широко валидированы для оценки потенциала нейтрализации сыворотки или плазмы путем воздействия на вирусный гликопротеин на оболочке ЛП12,13. Нейтрализационная активность, выраженная как ингибирующая концентрация 50 (IC50), определяется как разбавление сыворотки/плазмы, которое блокирует 50% проникновения вирусных частиц14. В этом протоколе мы описали настройку ПВНА для проверки активности антител против тяжелого острого респираторного синдрома – коронавируса 2 (SARS-CoV-2) в сыворотках, собранных до и после получения бустерной дозы вакцины.
Несмотря на то, что использование вируса дикого типа имитирует реальную инфекцию, лентивирусные ФВ являются более безопасным вариантом для изучения механизмов, связанных с проникновением вируса и инфекцией, без строгих требований безопасности, необходимых для работы с патогенными ви…
The authors have nothing to disclose.
Мы выражаем признательность волонтерам из числа медицинских работников. Этот проект был поддержан Департаментом передового опыта 2023/2027, MUR, Италия. AR и DZ были поддержаны PRIN2022 (финансирование ЕС; NextGenerationEU)
0.45 μm filter | SARSTEDT | 83 1826 | |
6-well plate | SARSTEDT | 83 3920 | |
96-well plate | SARSTEDT | 8,33,924 | |
Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Units | Merck | 10403892 | |
Black Opaque 96-well Microplate | Perkin Elmer | 60005270 | |
Dulbecco's Modified Eagle Medium | SIGMA-ALDRICH | D6546 – 500ML | |
Dulbecco's phosphate buffered saline (PBS 1x) | AUROGENE | AU-L0615-500 | |
Foetal Bovine Serum | AUROGENE | AU-S1810-500 | |
Graphpad Prism version 7 | graphpad dotmatics | NA | In the manuscript, we replace the commercial name with 'data analysis program' |
HEK293T cells | ATCC | CRL-3216 | |
HEK293T/ACE2 cells | ATCC | CRL-3216 | HEK293T has been transduced to overexpress ACE2 with a lentiviral vector. |
L-glutamine | AUROGENE | AU-X0550-100 | |
Luminometer – Victor3 | Perkin Elmer | HH35000500 | In the manuscript, we replace the commercial name with 'luminometer' |
Opti-MEM | Thermo Fisher Scientific | 11058021 | In the manuscript, we replace the commercial name with 'reduced serum medium' |
p8.91 packaging plasmid | Di Genova et al., 2021 | A kind gift from Prof. Nigel Temperton (ref 16.) | |
pCSFLW reporter plasmid | Di Genova et al., 2021 | A kind gift from Prof. Nigel Temperton (ref 16.) | |
Penicillin/streptomycin | AUROGENE | AU-L0022-100 | |
Polyethylenimine, branched (PEI) (25 kDa) | SIGMA-ALDRICH | 408727 | |
RRL.sin.cPPT.SFFV/Ace2.IRES-puro.WPRE (MT126) | Addgene | 145839 | This plasmid was used to generate HEK293Tcells/ACE2 |
SARS-CoV-2 Spike expressing plasmid | Addgene | pGBW-m4137382 | |
steadylite plus Reporter Gene Assay System | Perkin Elmer | 6066759 | In the manuscript, we replaced the commercial name with 'luciferase reading reagent' |
Trypsin EDTA 1x | AUROGENE | AU-L0949-100 |