Summary

Induction de la parodontite par une combinaison de ligature et d’injection de lipopolysaccharide dans un modèle de rat

Published: February 17, 2023
doi:

Summary

Dans cette étude, un modèle de rat d’induction de la parodontite est présenté via une combinaison de ligature rétentive et d’injections répétitives de lipopolysaccharide dérivé de Porphyromonas gingivalis, sur 14 jours autour des premières molaires maxillaires. Les techniques de ligature et d’injection de LPS se sont avérées efficaces pour induire une péridontitis, entraînant une perte osseuse alvéolaire et une inflammation.

Abstract

La parodontite (MP) est une maladie immuno-inflammatoire chronique très répandue du parodonte, qui entraîne une perte des tissus mous gingivaux, du ligament parodontal, du cément et de l’os alvéolaire. Dans cette étude, une méthode simple d’induction de la MP chez le rat est décrite. Nous fournissons des instructions détaillées pour le placement du modèle de ligature autour des premières molaires maxillaires (M1) et une combinaison d’injections de lipopolysaccharide (LPS), dérivées de Porphyromonas gingivalis à la face mésio-palatine du M1. L’induction de la parodontite a été maintenue pendant 14 jours, favorisant l’accumulation de biofilm bactérien et l’inflammation. Pour valider le modèle animal, l’IL-1β, un médiateur inflammatoire clé, a été déterminée par un dosage immunologique dans le liquide gingival creviculaire (GCF), et la perte osseuse alvéolaire a été calculée à l’aide de la tomodensitométrie à faisceau conique (CBCT). Cette technique s’est avérée efficace pour favoriser la récession gingivale, la perte osseuse alvéolaire et une augmentation des niveaux d’IL-1β dans le FCGC à la fin de la procédure expérimentale après 14 jours. Cette méthode s’est avérée efficace pour induire la MP, pouvant ainsi être utilisée dans des études sur les mécanismes de progression de la maladie et les futurs traitements possibles.

Introduction

La parodontite (MP) est le sixième problème de santé publique le plus répandu dans le monde, touchant environ 11% de la population totale, étant une forme avancée, irréversible et destructrice de maladie parodontale 1,2. La MP est un processus inflammatoire qui affecte les tissus gingivaux et parodontaux, ce qui entraîne une récession gingivale, une migration apicale de l’épithélium jonctionnel avec le développement de la poche et la perte de l’os alvéolaire3. De plus, la MP est associée à plusieurs maladies systémiques, notamment les maladies cardiovasculaires, l’obésité, le diabète et la polyarthrite rhumatoïde, pour lesquelles des facteurs environnementaux et spécifiques à l’hôte jouent un rôle important 4,5.

Par conséquent, la MP est une maladie multifactorielle principalement initiée par l’accumulation de plaque microbienne – résultant de la dysbiose des communautés microbiennes – et par une réponse immunitaire exagérée de l’hôte aux agents pathogènes parodontaux, ce qui conduit à la dégradation du tissu parodontal 4,6. Parmi plusieurs bactéries parodontales, la bactérie anaérobie à Gram négatif Porphyromonas gingivalis est l’un des principaux agents pathogènes de4. P. gingivalis contient un lipopolysaccharide complexe (LPS) dans ses parois, une molécule connue pour induire l’infiltration de leucocytes polymorphonucléaires et la dilatation vasculaire dans les tissus parodontaux enflammés7. Il en résulte la production de médiateurs inflammatoires, tels que l’interleukine 1 (IL-1), l’IL-6 et l’IL-8, le facteur de nécrose tumorale (TNF) ou les prostaglandines, avec une activation ultérieure des ostéoclastes et une résorption osseuse, entraînant la destruction des tissus et la perte ultimedes dents 3.

Parmi les différents avantages des modèles animaux, citons la capacité d’imiter les complexités cellulaires comme chez l’homme, ou d’être plus précis que les études in vitro , qui sont réalisées sur des surfaces plastiques avec des types cellulaires limités8. Pour modéliser expérimentalement la MP in vivo, différentes espèces animales ont été utilisées, comme les primates non humains, les chiens, les porcs, les furets, les lapins, les souris et les rats9. Cependant, les rats sont le modèle animal le plus étudié pour la pathogenèse de la MP parce qu’ils sont peu coûteux et faciles à manipuler10. Leur tissu gingival dentaire a des caractéristiques structurelles similaires au tissu gingival humain, avec un sillon gingival peu profond et un épithélium jonctionnel attaché à la surface de la dent. De plus, comme chez l’homme, l’épithélium jonctionnel facilite le passage des matières bactériennes, étrangères et des exsudats des cellules inflammatoires 9.

L’un des modèles expérimentaux les plus rapportés d’induction de la MP chez le rat est le placement de ligatures autour des dents, ce qui est techniquement difficile mais fiable10. La mise en place de la ligature facilite l’accumulation de plaque dentaire et de bactéries, générant une dysbiose dans les sillons gingivaux, qui provoque une inflammation et une destruction du tissu parodontal11. La perte de l’attachement parodontal et la résorption de l’os alvéolaire pourraient survenir en 7 jours dans ce modèle8 de rat.

Un autre modèle animal pour la MP consiste en l’injection de LPS dans le tissu gingival. En conséquence, l’ostéoclastogenèse et la perte osseuse sont stimulées. Les caractéristiques histopathologiques de ce modèle sont similaires à la MP établie par l’homme, caractérisées par des niveaux plus élevés de cytokines pro-inflammatoires, de dégradation du collagène et de résorption osseuse alvéolaire 6,8.

Ainsi, le but de cette étude était de décrire un modèle simple de DP expérimentale chez le rat basé sur les techniques d’injections de P. gingivalis-LPS (Pg-LPS), combinées à la mise en place de ligatures autour des premières molaires maxillaires (M1). Il s’agit d’un modèle ayant des caractéristiques similaires à celles observées dans la maladie MP humaine, qui pourrait être utilisé dans l’étude des mécanismes de progression de la maladie et des futurs traitements possibles.

Protocol

NOTE: Le protocole expérimental de l’étude a été approuvé par le Comité d’éthique de l’expérimentation animale de l’Institut de recherche en santé des îles Baléares (CEEA-UIB; numéro de référence 163/03/21). 1. Anesthésie animale et préparation de la procédure Stériliser tous les instruments chirurgicaux (bâillons buccaux en aluminium, explorateur dentaire, lance diamantée, ciseaux chirurgicaux, pinces microchirurgicales, porte-aiguilles, …

Representative Results

Une chronologie des étapes expérimentales est présentée à la figure 1. La figure 2A montre une image de la mandibule après intervention chirurgicale, avec le placement de la ligature autour du sillon du M1 au temps 0 de l’expérience. La figure 2B montre comment, après 14 jours d’intervention, la ligature autour du M1 pénètre dans le sillon gingival, provoquant une inflammation de la gencive et une accumulation d’infi…

Discussion

Cette méthode décrit l’induction de la MP chez le rat à la suite d’une technique combinée d’injections de Pg-LPS et de placement de ligatures autour du M1, révélant que des changements significatifs dans les tissus parodontaux et l’os alvéolaire pourraient être induits dans les 14 jours suivant cette méthode.

Au cours de cette procédure, une attention particulière doit être accordée aux différentes étapes critiques. Pendant l’anesthésie animale et la prépara…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par la Fundació Universitat-Empresa de les Illes Balears (appel de preuve de concept 2020), par l’Instituto de Salud Carlos III, Ministerio de Economía y Competividad, cofinancé par le FSE Fonds social européen et le Fonds européen de développement régional FEDER (contrat avec M.M.B; FI18/00104) et par la Direcció General d’Investigació, Conselleria d’Investigació, Govern Balear (contrat avec M.M.F.C; FPI/040/2020). Les auteurs remercient le Dr Anna Tomás et Maria Tortosa pour leur aide à la chirurgie expérimentale et à la plateforme d’IdISBa. Enfin, merci à l’École de médecine dentaire ADEMA pour l’accès au scanner CBCT.

Materials

Adsorbent paper point nº30  Proclinc 8187
Aprotinin Sigma-Aldrich A1153
Atipamezole Dechra 573751.5 Revanzol 5 mg/mL
Braided silk ligature (5/0)  Laboratorio Arago Sl 613112
Buprenorphine  Richter pharma 578816.6 Bupaq 0.3 mg/mL
Cone-beam computed tomography (CBCT) Scanner  MyRay hyperion X9 Model Hyperion X9
CTAn software SkyScan Version 1.13.4.0
Dental explorer  Proclinc 99743
Diamond lance-shaped bur  Dentaltix IT21517
Food maintenance diet Sodispain research ROD14 
Heated surgical platform PetSavers
Hollenback carver Hu-FRIEDY  HF45234
Hypodermic needle   BD  300600 25G X 5/8” – 0,5 X 16 MM
Isoflurane  Karizoo Isoflutek 1000mg/g
Ketamine   Dechra 581140.6 Anesketin 100 mg/mL
Lipopolysaccharide  derived from P.Gingivalis  InvivoGen TLRL-PGLPS
Methanol Fisher Scientific M/4000/PB08
Micro needle holter Fehling Surgical Instruments KOT-6
Microsurgical pliers KLS Martin 12-384-06-07
microsurgical scissors  S&T microsurgical instruments SDC-15 RV
Monitor iMEC 8 Vet Mindray 
Multiplex bead immunoassay Procartaplex, Thermo fisher Scientific PPX-05
Paraformaldehyde (PFA)  Sigma-Aldrich 8187151000
Periosteal microsurgical elevator  Dentaltix CU19112468
Phenylmethylsulfonylfluoride (PMSF)  Roche 10837091001
Phosphate Buffer Solution (PBS) Capricorn Scientific PBS-1A
PhosSTOP  Roche 4906845001 Commercial phosphatase inhibitor tablet 
Plastic vial SPL Lifesciencies 60015 1.5mL
Saline Cinfa 204024.3
Stereo Microscope  Zeiss Model SteREO Discovery.V12
Surgical loupes led light Zeiss
Surgical scissors  Zepf Surgical 08-1701-17
Syringe  BD plastipak 303172 1mL
Veterinary dental micromotor Eickemeyer 174028
Xylazine Calier 20102-003 Xilagesic 20 mg/mL

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Munar-Bestard, M., Villa, O., Ferrà-Cañellas, M. d. M., Ramis, J. M., Monjo, M. Induction of Periodontitis via a Combination of Ligature and Lipopolysaccharide Injection in a Rat Model. J. Vis. Exp. (192), e64842, doi:10.3791/64842 (2023).

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