Summary

Mycobacterium tuberculosis Ekstracellulær vesikkelberikelse gjennom størrelsesekskluderingskromatografi

Published: May 19, 2022
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver størrelseseksklusjonskromatografi, en lettvint og reproduserbar teknikk for å berike Mycobacterium tuberculosis ekstracellulære vesikler fra dyrkningssupernatanter.

Abstract

Rollen til ekstracellulære vesikler (EV) i sammenheng med bakteriell infeksjon har dukket opp som en ny vei for å forstå mikrobiell fysiologi. Spesielt spiller Mycobacterium tuberculosis (Mtb) EV en rolle i vertspatogeninteraksjonen og responsen på miljøstress. Mtb-elbiler er også svært antigene og viser potensial som vaksinekomponenter. Den vanligste metoden for rensing av MTB-elbiler er tetthetsgradient ultrasentrifugering. Denne prosessen har flere begrensninger, inkludert lav gjennomstrømning, lavt utbytte, avhengighet av dyrt utstyr, tekniske utfordringer, og det kan påvirke den resulterende forberedelsen negativt. Størrelsesekskluderingskromatografi (SEC) er en mildere alternativ metode som bekjemper mange av begrensningene ved ultrasentrifugering. Denne protokollen viser at SEC er effektiv for Mtb EV-anrikning og produserer Mtb EV-preparater av høy kvalitet med økt utbytte på en rask og skalerbar måte. I tillegg demonstrerer en sammenligning med tetthetsgradient ultracentrifugering ved kvantifiserings- og kvalifiseringsprosedyrer fordelene med SEC. Mens evalueringen av EV-mengde (nanopartikkelsporingsanalyse), fenotype (transmisjonselektronmikroskopi) og innhold (Western blotting) er skreddersydd for MTB EV, kan arbeidsflyten som tilbys brukes på andre mykobakterier.

Introduction

Frigjøring av ekstracellulære vesikkel (EV) av patogener kan være nøkkelen til å låse opp ny teknologi for å kontrollere smittsomme sykdommer1. Mycobacterium tuberculosis (Mtb) er et patogen av høy konsekvens, infiserer omtrent en tredjedel av verdens befolkning og krever livet til millioner av mennesker hvert år2. EV-produksjon av Mtb er godt dokumentert, men likevel unnvikende i biogenesen og varierte roller (dvs. immunostimulerende, immunosuppressiv, jern og næringsoppkjøp) av disse EV-ene i forbindelse med infeksjon 3,4,5. Forsøk på å forstå sammensetningen av Mtb EV avslørte 50-150 nm lipidmembranlukkede kuler avledet fra plasmamembranen som inneholder lipider og proteiner av immunologisk betydning 3,6. Undersøkelse av rollen til MTB EV i bakteriell fysiologi har avslørt betydningen av bakteriell EV-modulering som svar på miljøstress for overlevelse5. Host-patogen interaksjonsstudier har vært mer kompliserte å tolke, men bevis indikerer at Mtb EV kan påvirke immunresponsen til verten og potensielt kan tjene som en effektiv vaksinasjonskomponent 3,4,7.

De fleste studier av MTB-elbiler så langt har basert seg på tetthetsgradient ultrasentrifugering for vesikkelberikelse8. Dette har vært effektivt for småskala studier; Denne teknikken har imidlertid flere tekniske og logistiske utfordringer. Alternative arbeidsflyter par multistep sentrifugering, for fjerning av hele celler og store rusk, med en siste ultracentrifugation trinn til pellet EV. Denne metoden kan variere i effektivitet, og resulterer ofte i lavt utbytte og korensing av løselige ikke-vesikkelassosierte biomolekyler samtidig som den påvirker vesikkelategritet9. I tillegg er denne prosessen tidkrevende, manuelt intensiv og svært begrenset i gjennomstrømning på grunn av utstyrsbegrensninger.

Denne protokollen beskriver en alternativ teknikk til tetthetsgradient ultrasentrifugering: størrelseseksklusjonskromatografi (SEC). Denne metoden har blitt demonstrert for miljømykobakterier, og i det nåværende arbeidet har den blitt ekstrapolert til Mtb10. En kommersielt tilgjengelig kolonne- og automatisk fraksjonssamler kan forbedre konsistensen i vesisk forberedelse og redusere behovet for spesifikt, dyrt utstyr. Det er også mulig å fullføre denne protokollen på en brøkdel av tiden sammenlignet med tetthetsgradient ultracentrifugation, noe som øker gjennomstrømningen. Denne teknikken er mindre teknisk utfordrende, noe som gjør det lettere å mestre, og kan øke inter / intra-laboratoriet reproduserbarhet. Endelig har SEC høy separasjonseffektivitet og er mild, og bevarer vesiklernes integritet.

Protocol

Colorado State University Institutional Biosafety Committee godkjente denne studien (19-046B). Dyrking av Mycobacterium tuberculosis og høsting av ev-rike kultursupernatanter ble utført av opplært personell i et høyoppsamlingslaboratorium. Materialene ble flyttet ut av høyoppsamlingsområdet etter at en gyldig inaktiveringsmetode ble utført, bekreftet og godkjent av institusjonelle biosikkerhetspolitikker. Selv om det ikke er mulig å replikere protokollen, hvis validert inaktivering eller steril filtrerin…

Representative Results

Kulturfiltratprotein (CFP) fra Mycobacterium tuberculosis (Mtb) ble konsentrert, kvantifisert, og deretter ble 3 mg materiale påført en størrelseseksklusjonskromatografi (SEC) kolonne. Protein- og partikkelkonsentrasjonene ble oppregnet av henholdsvis BCA og NTA. Forventede områder for protein- og partikkelutvinning pluss de nøyaktige verdiene oppnådd for disse resultatene er rapportert i tabell 1. Verdier som er mye høyere enn disse områdene, kan indikere kontaminering eller problemer m…

Discussion

Mycobacterium tuberculosis ekstracellulære vesikler er svært antigene reservoarer, som presenterer dem som en attraktiv vei for å utvikle diagnostiske verktøy og fremtidige vaksiner 4,19,20. Historisk sett har tetthetsgradient ultrasentrifugering blitt brukt til å skille Mtb-elbiler fra andre løselige, utskilte materialer8. Selv om denne prosessen er effektiv, er den også tidkrevende, tekn…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi ønsker å anerkjenne støtte fra College of Veterinary Medicine and Biomedical Sciences Experiential Award og College Research Council Shared Research Program til NKG og finansiering av ATCC (award # 2016-0550-0002) til KMD. Vi ønsker også å anerkjenne Anne Simpson for teknisk støtte og BEI Resources, NIAID, NIH for følgende reagenser: Monoklonal Anti-Mycobacterium tuberculosis LpqH (Gene Rv3763), IT-54 (produsert in vitro), NR-13792, Monoklonal Anti-Mycobacterium tuberculosis GroES (Gene Rv3418c), Clone IT-3 (SA-12) (produsert in vitro), NR-49223 og Monoklonal Anti-Mycobacterium tuberculosis LAM, Clone CS-35 (produsert in vitro), NR-13811.

Materials

20x MES SDS Running Buffer ThermoFisher Scientific NP0002
96 well plate Corning 15705-066
Automatic Fraction Collector IZON Science AFC-V1-USD
BenchMark Pre-stained Protein Ladder Invitrogen 10748010
Benchtop centrifuge Beckman Coulter Allegra 6R
Centricon Plus – 70 Centrifugal filter, 100 kDa cutoff Millipore Sigma UFC710008 Ultrafiltration device used in step 1.1
Electroblotting System ThermoFisher Scientific 09-528-135
EM Grade Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15714-S
Formvar/Carbon 200 mesh Cu Grids Electron Microscopy Sciences FCF200H-Cu-TA
Goat Anti-Mouse IgG H&L (Alkaline Phosphatase), whole molecule, 1 mL AbCam ab6790 Secondary antibody
JEM-1400 Transmission Electron Microscope JOEL
Micro BCA Protein Assay Kit ThermoFisher Scientific 23235
Microplate reader BIOTEK Epoch
Monoclonal Anti-Mycobacterium tuberculosis GroES (Gene Rv3814c) BEI Resources NR-49223 Primary antibody
Monoclonal Anti-Mycobacterium tuberculosis LpqH (Gene Rv3763) BEI Resources NR-13792 Primary antibody
Monocolonal Anti-Mycobacterium tuberculosis LAM, Clone CS-35 BEI Resources NR-13811 Primary antibody
NanoClean 1070 Fischione Instruments For plasma cleaning of the TEM grid
Nanosight equipped with syringe pump and computer with NanoSight NTA software Malvern Panalytical NS300
Nitrocellulose membrane, Roll, 0.2 μm BioRad 1620112
NuPAGE 4-12% Bis-Tris Protein Gels ThermoFisher Scientific NP0323BOX
Phosphate-buffered Saline, 1X without calcium and magnesium Corning 21-040-CV
Pierce BCA Protein Assay Kit ThermoFisher Scientific 23225
PowerPac Basic Power Supply BioRad 1645050
qEV Original 35 nm 5/pk IZON Science SP5-USD SEC column
SDS sample buffer Boster AR1112 In-house recipe used in this procedure, however this product is equivalent
SDS-PAGE gel chamber ThermoFisher Scientific EI0001
Sigmafast BCIP/NBT Millipore Sigma B5655
Silver Stain Plus Kit BioRad 1610449 In-house protocol used in this procedure, however this kit is equivalent
Uranyl Acetate Electron Microscopy Sciences 22400

References

  1. Gill, S., Catchpole, R., Forterre, P. Extracellular membrane vesicles in the three domains of life and beyond. FEMS Microbiology Reviews. 43 (3), 273-303 (2019).
  2. World Health Organization. GLOBAL TUBERCULOSIS REPORT 2021. World Health Organization. , (2021).
  3. Prados-Rosales, R., et al. Mycobacteria release active membrane vesicles that modulate immune responses in a TLR2-dependent manner in mice. Journal of Clinical Investigation. 121 (4), 1471-1483 (2011).
  4. Prados-Rosales, R., et al. Mycobacterial membrane vesicles administered systemically in mice induce a protective immune response to surface compartments of mycobacterium tuberculosis. mBio. 5 (5), 01921 (2014).
  5. Prados-Rosales, R., et al. Role for mycobacterium tuberculosis membrane vesicles in iron acquisition. Journal of Bacteriology. 196 (6), 1250-1256 (2014).
  6. Lee, J., et al. Proteomic analysis of extracellular vesicles derived from Mycobacterium tuberculosis. Proteomics. 15 (19), 3331-3337 (2015).
  7. Athman, J. J., et al. Mycobacterium tuberculosis Membrane Vesicles Inhibit T Cell Activation. The Journal of Immunology. 198 (5), 2028-2037 (2017).
  8. Prados-Rosales, R., Brown, L., Casadevall, A., Montalvo-Quirós, S., Luque-Garcia, J. L. Isolation and identification of membrane vesicle-associated proteins in Gram-positive bacteria and mycobacteria. MethodsX. 1, 124-129 (2014).
  9. Cvjetkovic, A., Lötvall, J., Lässer, C. The influence of rotor type and centrifugation time on the yield and purity of extracellular vesicles. Journal of Extracellular Vesicles. 3 (1), 23111 (2014).
  10. Dauros Singorenko, P., et al. Isolation of membrane vesicles from prokaryotes: a technical and biological comparison reveals heterogeneity. Journal of Extracellular Vesicles. 6 (1), 1324731 (2017).
  11. Wallace, E., et al. Culturing mycobacteria. Methods in Molecular Biology. 2314, 1-58 (2021).
  12. Lucas, M., et al. Extraction and separation of mycobacterial proteins. Methods in Molecular Biology. 2314, 77-107 (2021).
  13. Walker, S. A., Kennedy, M. T., Zasadzinski, J. A. Encapsulation of bilayer vesicles by self-assembly. Nature. 387 (6628), 61-64 (1997).
  14. Edwards, D. A., et al. Spontaneous vesicle formation at lipid bilayer membranes. Biophysical Journal. 71 (3), 1208 (1996).
  15. . Production Manuals & SOPs. SP007: Running of polyacrylamide gels, SP011: Western blot, and SP0012: Silver staining protocols Available from: https://labs.vetmebiosci.colostate.edu/dobos/bei-resources/ (2022)
  16. Engers, H. D., et al. Results of a World Health Organization-sponsored workshop to characterize antigens recognized by mycobacterium-specific monoclonal antibodies. Infection and Immunity. 51 (2), 718-720 (1986).
  17. Chatterjee, D., Lowell, K., Rivoire, B., McNeil, M. R., Brennan, P. J. Lipoarabinomannan of Mycobacterium tuberculosis. Capping with mannosyl residues in some strains. Journal of Biological Chemistry. 267 (9), 6234-6239 (1992).
  18. Théry, C., et al. Minimal information for studies of extracellular vesicles 2018 (MISEV2018): a position statement of the International Society for Extracellular Vesicles and update of the MISEV2014 guidelines. Journal of Extracellular Vesicles. 7 (1), 1535750 (2018).
  19. Palacios, A., et al. Mycobacterium tuberculosis extracellular vesicle-associated lipoprotein LpqH as a potential biomarker to distinguish paratuberculosis infection or vaccination from tuberculosis infection. BMC Veterinary Research. 15 (1), 1-9 (2019).
  20. Ziegenbalg, A., et al. Immunogenicity of mycobacterial vesicles in humans: Identification of a new tuberculosis antibody biomarker. Tuberculosis. 93 (4), 448-455 (2013).
  21. Chiplunkar, S. S., Silva, C. A., Bermudez, L. E., Danelishvili, L. Characterization of membrane vesicles released by Mycobacterium avium in response to environment mimicking the macrophage phagosome. Future Microbiology. 14 (4), 293-313 (2019).

Play Video

Cite This Article
Ryan, J. M., Dobos, K. M., Kruh-Garcia, N. A. Mycobacterium tuberculosis Extracellular Vesicle Enrichment through Size Exclusion Chromatography. J. Vis. Exp. (183), e63895, doi:10.3791/63895 (2022).

View Video