Summary

Isolierung von Präadipozyten aus Masthähnchen-Kieferembryonen

Published: August 04, 2022
doi:

Summary

Das vorliegende Protokoll beschreibt eine einfache Methode zur Isolierung von Präadipozyten aus Fettgewebe in Masthähnchenembryonen. Diese Methode ermöglicht die Isolierung mit hoher Ausbeute, Primärkultur und adipogener Differenzierung von Präadipozyten. Öl-Rot-O-Färbung und Lipid-/DNA-Färbung maßen die adipogene Fähigkeit isolierter Zellen, die mit Differenzierungsmedien induziert wurden.

Abstract

Primäre Präadipozyten sind ein wertvolles experimentelles System zum Verständnis der molekularen Signalwege, die die Differenzierung und den Stoffwechsel von Adipozyten steuern. Hühnerembryonen bieten die Möglichkeit, Präadipozyten vom frühesten Stadium der Fettentwicklung an zu isolieren. Diese Primärzelle kann verwendet werden, um Faktoren zu identifizieren, die die Präadipozytenproliferation und die adipogene Differenzierung beeinflussen, was sie zu einem wertvollen Modell für Studien im Zusammenhang mit Fettleibigkeit bei Kindern und der Kontrolle der überschüssigen Fettablagerung bei Geflügel macht. Das schnelle Wachstum von postnatalem Fettgewebe verschwendet effektiv Futter, indem es vom Muskelwachstum bei Masthühnern wegverteilt wird. Daher können Methoden zum Verständnis der frühesten Stadien der Fettgewebeentwicklung Hinweise geben, um diese Tendenz zu regulieren und Wege zu finden, die Fettausdehnung früh im Leben zu begrenzen. Die vorliegende Studie wurde entwickelt, um eine effiziente Methode zur Isolierung, Primärkultur und adipogenen Differenzierung von Präadipozyten zu entwickeln, die aus sich entwickelndem Fettgewebe kommerzieller Masthähnchen-Kükenembryonen (Fleischtyp) isoliert wurden. Das Verfahren wurde optimiert, um Zellen mit hoher Lebensfähigkeit (~ 98%) und erhöhter Fähigkeit zur Differenzierung in reife Adipozyten zu erhalten. Diese einfache Methode der embryonalen Präadipozytenisolierung, -kultur und -differenzierung unterstützt funktionelle Analysen des Fettwachstums und der Entwicklung im frühen Leben.

Introduction

Fettleibigkeit ist eine globale Gesundheitsbedrohung für Erwachsene und Kinder. Kinder, die übergewichtig oder fettleibig sind, sind etwa fünfmal häufiger fettleibig als Erwachsene, was sie einem signifikant erhöhten Risiko für Herz-Kreislauf-Erkrankungen, Diabetes und viele andere Komorbiditäten aussetzt. Etwa 13,4% der US-Kinder im Alter von 2-5 Jahren haben Fettleibigkeit1, was zeigt, dass die Tendenz, überschüssiges Körperfett anzusammeln, sehr früh im Leben in Gang gesetzt werden kann. Aus sehr unterschiedlichen Gründen ist die Ansammlung von überschüssigem Fettgewebe ein Problem für Masthühner (Fleisch). Moderne Masthähnchen sind unglaublich effizient, akkumulieren aber immer noch mehr Lipid als physiologisch notwendigist 2,3. Diese Tendenz beginnt kurz nach dem Schlüpfen und verschwendet effektiv Futter, die teuerste Produktionskomponente, indem sie es vom Muskelwachstum weg verteilt. Daher besteht sowohl für Kinder als auch für Masthühner, wenn auch aus sehr unterschiedlichen Gründen, die Notwendigkeit, Faktoren zu verstehen, die die Entwicklung des Fettgewebes beeinflussen, und Wege zu finden, die Fettexpansion früh im Leben zu begrenzen.

Adipozyten bilden sich aus Präadipozyten, aus Fettgewebe gewonnenen Stammzellen, die einer Differenzierung unterzogen werden, um reife, lipidspeichernde Fettzellen zu entwickeln. Dementsprechend sind Präadipozyten in vitro ein wertvolles experimentelles Modell für Adipositasstudien. Diese Zellen, die aus der stromalen vaskulären Fraktion der Fettdepots isoliert sind, können ein grundlegendes Verständnis der molekularen Signalwege liefern, die die Differenzierung und den Stoffwechsel der Adipozyten steuern 4,5. Kükenembryonen sind ein günstiges experimentelles Modell in Entwicklungsstudien, da die Kultivierung von Eiern nach dem gewünschten Zeitplan die experimentelle Manipulation erleichtert, da sie es ermöglicht, Embryonen ohne das Opfer der Mutter zu erhalten, um eine Reihe von Entwicklungsstadien von Embryonen zu beobachten. Darüber hinaus sind komplizierte chirurgische Eingriffe und längere Zeiträume nicht erforderlich, um Embryonen im Vergleich zu größeren Tiermodellen zu erhalten. Daher bietet der Kükenembryo die Möglichkeit, Präadipozyten aus den frühesten Stadien der Fettgewebeentwicklung zu erhalten. Unterhautfettgewebe wird im Küken um den 12. Embryonaltag (E12) als klar definiertes Depot um den Oberschenkel herum sichtbar. Dieses Depot ist mit hochproliferativen Präadipozyten angereichert, die unter Entwicklungshinweisen aktiv differenziert werden, um reife Adipozytenzu bilden 6,7. Der Prozess der adipogenen Differenzierung ist zwischen Hühnern und Menschen vergleichbar. Daher können Präadipozyten, die aus Kükenembryonen isoliert wurden, als Zweizweckmodell für Studien verwendet werden, die für Menschen und Geflügel relevant sind. Die Ausbeute an Präadipozyten nimmt jedoch mit zunehmendem Alter ab, da die Zellen zu reifen Adipozyten heranwachsen5.

Das vorliegende Protokoll optimiert die Isolierung von Präadipozyten aus Fettgewebe während des Stadiums (E16-E18), in dem adipogene Differenzierung und Adipozytenhypertrophie in Masthähnchenkükenembryonen ihren Höhepunkt erreichen8. Dieses Verfahren kann die Auswirkungen von Faktoren, denen der sich entwickelnde Embryo in Ovo ausgesetzt ist, wie z. B. die Ernährung von Hühnern, auf die Adipozytenentwicklung und das adipogene Potenzial ex vivo bewerten. Es kann auch den Einfluss verschiedener Manipulationen (z. B. Hypoxie, Nährstoffzusätze, pharmakologische Agonisten und Antagonisten) auf die Adipogenese oder die verschiedenen Ome (z. B. Transkriptom, Metabolom, Methylom) von Adipozytenvorläufern testen. Als Darstellung des frühesten Stadiums der Fettbildung sind die mit diesem Protokoll erhaltenen Zellen wertvolle Modelle für Studien, die für Geflügel und Menschen relevant sind.

Protocol

Alle Tierverfahren wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee der University of Tennessee genehmigt. Frisch befruchtete kommerzielle Masthähncheneier (Cobb 500) wurden aus einer lokalen Brüterei gewonnen. Die Eier wurden bei 38 °C mit 60% relativer Luftfeuchtigkeit bis zur Dissektion an den Embryonaltagen 16-18 (E16-E18) bebrütet. Fettgewebe wurde aus dem subkutanen (femoralen) Depot entnommen. 1. Vorbereitung auf Isolation und Kultur Bereiten Sie die…

Representative Results

Primäre Präadipozyten sind morphologisch ähnlich wie Fibroblasten, mit unregelmäßigen, sternförmigen Formen und einem zentralen Kern (Abbildung 2A-C). Die Zellen haften leicht an Gewebekulturplastik und beginnen sich bald nach der Anheftung zu vermehren. Sie differenzieren und akkumulieren schnell Lipidtröpfchen (Abbildung 3D), wenn sie mit Fettsäuren in den Medien versorgt werden. Die Lebensfähigkeit (98%, basierend au…

Discussion

Obwohl mehrere gut beschriebene Protokolle über die Isolierung von Präadipozyten14,15,16,17 berichtet haben, wurde die Isolierung für embryonale Präadipozyten optimiert, die für funktionelle Analysen des Fettwachstums und der Entwicklung im frühen Leben bei Masthähnchenküken verwendet werden kann. Dieses Protokoll liefert embryonale Adipozyten-Vorläufer mit hoher Lebensfähigkeit und h…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Die Autoren danken UT AgResearch und dem Department of Animal Science für die Unterstützung und Optimierung dieses Protokolls. Diese Arbeit wurde durch USDA-Zuschuss finanziert.

Materials

1 mL Pipette Eppendorf Z683825 Single Channel Pipette, 100 – 1000 µL
1 mL Pipette Tip Fisher Scientific 02-707-402
100% Isopropanol Fisher Scientific A426P4
1x PBS Gibco 10010023
25 mL Flask Pyrex 4980-25
37% Formaldehyde Fisher Scientific F75P-1GAL
6-Well Plate Falcon 353046 Tissue Culture-treated
96-Well Assay Plate Costar 3632
96-Well Plate, Black Bottom Costar 3603 Tissue Culture-treated
AdipoRed Lonza PT-7009
Amphotericin B Gibco 15290026
Bench Top Wiper (Kimtechwiper) Kimberly-Clark 34155
Betadine Up & Up NDC 1167300334 20% Working Solution
Cell Counter Corning 6749
Cell Strainer, 40 µm SPL 93040
Centrifugaton Eppendorf 5702
Chicken Serum Gibco 16110082
Conical Centrifuge Tubes, 15 mL VWR 10025-690
Conical Centrifuge Tubes, 50 mL Falcon 352098
Cryovial Nunc 343958
Curved Forceps, 100 mm Roboz Surgical RS-5137
Curved Surgical Scissors, 115 mm Roboz Surgical RS-6839
Distilled Water Millipore SYNSV0000 Despensed as needed
DMEM/F12 HyClone SH30023.01
DMSO Sigma D2650
Ethanol Decon Labs 2701 70% Working Solution
Fetal Bovine Serum (FBS) Gibco 10437028
Fluorescent Microscope Evos M7000
Fluorescent Plate Reader Biotek Synergy H1
Foil Reynolds Reynolds Wrap Heavy Duty Aluminum Foil, 125 SQ. FT.
Freezing Container Thermo Scientific 5100-0001
Gelatin Millipore 4055 2% Working Solution
Hematocytometer (Counting Chamber) Corning 480200 0.1 mm deep
Incubator Fisher Scientific 6845
Instrument Sterilizer VWR B1205
Linoleic Acid-Oleic Acid-Albumin Sigma L9655 1x Working Solution
Microscope Evos AMEX1000
Multi-Channel Pipette Thermo Scientific 4661070 12-Channel Pipetters, 30 – 300 µL
Na2HPO4 Sigma S-7907
NaH2PO4 Sigma S-3139
NucBlue Invitrogen R37605
Oil Red O Sigma O-0625
Orbital Shaker IKA KS130BS1
Paper Towel Tork RK8002
Parafilm Parafilm M PM996
Penicillin/Steptomycin (P/S) Gibco 15140122 1x Working Solution
Petri dishes, 100 mm Falcon 351029
Petri dishes, 60 mm Falcon 351007
Plate Shaker VWR 200
RBC Lysis Buffer Roche 11814389001
Reagent Reservior VWR 89094-680
Small Beaker, 100 mL Pyrex 1000-100
Spectrophotometer Plate Reader Biotek Synergy H1
Sterile Gauze McKesson 762703
Straight Forceps, 120 mm Roboz Surgical RS-4960
Straight Scissors, 140 mm Roboz Surgical RS-6762
T-25 Flask Corning 430639 Tissue Culture-treated
Tissue Culture Incubator Thermo Scientific 50144906
Tissue Strainer, 250 µm Pierce 87791
Trypan Blue Stain Gibco 15250061
Trypsin Gibco 15400054 0.1% Working Solution
Tweezers, 110 mm Roboz Surgical RS-5035
Type 1 Collagenase Gibco 17100017
Water Bath Fisher Scientific 15-462-10
Whatman Grade 1 Filter Paper Whatman 1001-110

References

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Cite This Article
Kim, M., Jung, U., Shepherd, E., Mihelic, R., Voy, B. H. Isolation of Preadipocytes from Broiler Chick Embryos. J. Vis. Exp. (186), e63861, doi:10.3791/63861 (2022).

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