Внеклеточное истощение флуоресцентно меченой глюкозы коррелирует с поглощением глюкозы и может быть использовано для высокопроизводительного скрининга поглощения глюкозы в иссеченных органах и клеточных культурах.
Продолжающаяся во всем мире эпидемия диабета увеличивает спрос на выявление экологических, пищевых, эндокринных, генетических и эпигенетических факторов, влияющих на поглощение глюкозы. Измерение внутриклеточной флуоресценции является широко используемым методом для проверки поглощения флуоресцентно меченой глюкозы (FD-глюкозы) в клетках in vitro или для визуализации тканей, потребляющих глюкозу in vivo. Этот анализ оценивает поглощение глюкозы в выбранный момент времени. Внутриклеточный анализ предполагает, что метаболизм FD-глюкозы медленнее, чем метаболизм эндогенной глюкозы, которая участвует в катаболических и анаболических реакциях и передаче сигналов. Однако динамический метаболизм глюкозы также изменяет механизмы поглощения, что потребует кинетических измерений поглощения глюкозы в ответ на различные факторы. В данной статье описан метод измерения внеклеточного истощения FD-глюкозы и подтверждена его корреляция с внутриклеточным поглощением FD-глюкозы в клетках и тканях ex vivo. Внеклеточное истощение глюкозы может быть потенциально применимо для высокопроизводительных кинетических и дозозависимых исследований, а также для выявления соединений с гликемической активностью и их тканеспецифическими эффектами.
Спрос на измерение поглощения глюкозы растет вместе с острой необходимостью борьбы с эпидемическим ростом множества заболеваний, зависящих от метаболизма глюкозы. Основные механизмы дегенеративных метаболических заболеваний, неврологических и когнитивных расстройств1, воспалительных2 и инфекционных заболеваний3, рака 4,5, а также старения6 зависят от метаболизма глюкозы для получения энергии и ее хранения, анаболических процессов, модификации белка и генов, передачи сигналов, регуляции генов и синтеза и репликации нуклеиновых кислот 7,8,9 . Сахарный диабет (СД) напрямую связан с нарушением регуляции поглощения глюкозы. СД представляет собой спектр хронических заболеваний, таких как сахарный диабет 1 типа, -2 и -3, гестационный диабет, диабет зрелости молодых людей и другие типы этого заболевания, вызванные экологическими и / или генетическими факторами. В 2016 году первый Глобальный доклад ВОЗ о диабете продемонстрировал, что число взрослых, живущих с наиболее распространенным СД, увеличилось почти в четыре раза с 1980 года до 422 миллионов взрослых10, и это число пациентов с СД растет экспоненциально в течение последних нескольких десятилетий. Только в 2019 году, по оценкам, 1,5 миллиона смертей были непосредственно вызваны СД10. Этот резкий всплеск связан с ростом СД 2 типа и условиями, приводящими к нему, включая избыточный вес и ожирение10. Пандемия COVID-19 выявила двукратное увеличение смертности у пациентов с СД по сравнению с населением в целом, что свидетельствует о глубокой, но плохо изученной роли метаболизма глюкозы в иммуннойзащите 3. Профилактика, ранняя диагностика и лечение СД, ожирения и других заболеваний требуют оптимизации измерений поглощения глюкозы различными тканями и выявления факторов окружающей среды11, питания12, эндокриннойсистемы 13, генетической14 и эпигенетической15 факторов, влияющих на поглощение глюкозы.
В исследованиях внутриклеточное и/или тканевое поглощение глюкозы обычно измеряется флуоресцентно меченой глюкозой (FD-глюкоза) in vitro 16,17,18 и in vivo19. FD-глюкоза стала предпочтительным методом по сравнению с более точными методами с использованием радиоактивно меченой глюкозы20, аналитического масс-спектроскопического анализа21, метаболомики22, методов ядерного магнитного резонанса23 и позитронно-эмиссионной томографии / компьютерной томографии (ПЭТ / КТ) 5,24. В отличие от поглощения глюкозы FD, аналитические методы, требующие большего количества биологического материала, могут включать многоступенчатую подготовку образцов, дорогостоящие инструменты и сложный анализ данных. Эффективные и недорогие измерения поглощения FD-глюкозы в клеточных культурах использовались в экспериментах по доказательству концепции и могут потребовать подтверждения другими методами.
Основой применения FD-глюкозы для исследований поглощения глюкозы является сниженный метаболизм FD-глюкозы по сравнению с эндогенной глюкозой25. Тем не менее, как эндогенная глюкоза, так и FD-глюкоза динамически распределяются между всеми клеточными компартментами для использования в анаболических, катаболических и сигнальных процессах. Компартментализация и зависящая от времени обработка25 FD-глюкозы вмешиваются в измерения флуоресценции и представляют собой основные ограничивающие факторы для использования этого анализа в высокопроизводительных скрининговых экспериментах, кинетическом анализе, 3D-культуре клеток, ко-культурах и экспериментах с тканевым эксплантом. Здесь мы приводим данные, демонстрирующие высокую корреляцию между внеклеточным истощением FD-глюкозы и ее внутриклеточным поглощением, предполагая внеклеточное истощение FD-глюкозы в качестве суррогатного измерения внутриклеточного поглощения глюкозы. Измерение внеклеточного истощения глюкозы было применено для подтверждения тканеспецифических различий в поглощении глюкозы у мышей, получавших инсулин и экспериментальный препарат18 , чтобы обеспечить доказательство принципа этого метода.
Текущий протокол описывает внутриклеточные и внеклеточные (рисунок 1) измерения поглощения глюкозы FD в клетках 3T3-L1. Разделы протокола 1-7 объясняют культуру и рост клеток в течение 48 ч; клеточное голодание, стимуляция и базовые внеклеточные измерения; и постстимуляционные измерения внеклеточной FD-глюкозы и внутриклеточные измерения FD-глюкозы и белка. Раздел 8 протокола описывает измерение ex vivo внеклеточного поглощения FD-глюкозы в тканях, рассеченных у мышей ob/ob в присутствии и отсутствии инсулина и аминокислотного соединения 2 (AAC2), описанного в другом месте18.
Прямое сравнение внеклеточного истощения FD-глюкозы с нормализованным внутриклеточным поглощением глюкозы в культуре клеток показало высокую корреляцию, предполагая, что внеклеточное истощение глюкозы может быть суррогатным измерением для оценки поглощения глюкозы. Измерение внекл…
The authors have nothing to disclose.
Проект был поддержан Ralph and Marian Falk Medical Research Catalyst Award и Kathleen Kelly Award. Другие виды поддержки включали Национальный центр исследовательских ресурсов UL1RR025755 и NCI P30CA16058 (OSUCCC), Дорожную карту NIH для медицинских исследований. Содержание является исключительной ответственностью авторов и не отражает официальную точку зрения Национального центра исследовательских ресурсов или NIH.
3T3-L1 mouse fibroblasts | ATCC | CL-173 | Cell line |
96-well plates | Falcon | 353227 | Plastic ware |
B6.V-Lepob/J male mice | Jackson Laboratory | stock number 000632 | Mice |
BioTek Synergy H1 modular multimode microplate reader (Fisher Scientific, US) | Fisher Scientific, US | B-SHT | Device |
Bovine serum | Gibco/ThermoFisher | 161790-060 | Cell culture |
Calf serum | Gibco/ThermoFisher | 26010-066 | Cell culture |
Cell incubator | Forma | Series II Water Jacket | Device |
Diet (mouse/rat diet, irradiated) | Envigo | Teklad LM-485 | Diet |
Dimethylsulfoxide (DMSO) | Sigma LifeScience | D2650-100mL | Reagent |
Dulbecco's Modified Eagle Medium | Gibco/ThermoFisher | 11965-092 | Cell culture |
Ethanol | Sigma Aldrich | E7023-500mL | Reagent |
Fluorescent 2-deoxy-2-[(7-nitro-2,1,3-benzoxadiazol-4-yl) amino]-D-glucose) | Sigma | 72987-1MG | Assay |
Glucose-free and phenol red-free DMEM | Gibco/ThermoFisher | A14430-01 | Cell culture |
Human insulin 10 mg/mL | MilliporeSigma, Cat N 91077C | Cat N 91077C | Reagent |
Isoflurane, 5% | Henry Schein | NDC 11695-6776-2 | Anestaetic |
Penicillin/streptomycin (P/S) | Gibco/ThermoFisher | 15140-122 | Cell culture |
Phosphate buffered solution | Sigma-Aldrich | DA537-500 mL | Cell culture |
Pierce bicinchoninic acid (BCA) protein assay | ThermoFisher | Cat N23225 | Assay |
Radioimmunoprecipitation assay lysis buffer | Santa Cruz Biotechnology | sc-24948 | Assay |
Trypsin-EDTA (0.05%) | Gibco/ThermoFisher | 25300-054 | Cell culture |