O protocolo descreve o método de carregar um corante de cálcio fluorescente através do nervo cortado em terminais nervosos motores do rato. Além disso, é apresentado um método único para o registro de transintes rápidos de cálcio nas terminações nervosas periféricas usando microscopia confocal.
A estimativa do nível de cálcio pré-sináptico é uma tarefa fundamental no estudo da transmissão sináptica, uma vez que a entrada de cálcio na célula presináptica desencadeia uma cascata de eventos que levam à liberação de neurotransmissores. Além disso, mudanças nos níveis de cálcio pré-sináptico mediam a atividade de muitas proteínas intracelulares e desempenham um papel importante na plasticidade sináptica. Estudar a sinalização de cálcio também é importante para encontrar maneiras de tratar doenças neurodegenerativas. A junção neuromuscular é um modelo adequado para estudar a plasticidade sináptica, pois possui apenas um tipo de neurotransmissor. Este artigo descreve o método para carregar um corante sensível ao cálcio através do feixe de nervo cortado nas terminações nervosas motoras dos camundongos. Este método permite a estimativa de todos os parâmetros relacionados a alterações intracelulares de cálcio, como nível de cálcio basal e transitório de cálcio. Uma vez que o fluxo de cálcio do exterior celular para os terminais nervosos e sua ligação/desvinculação ao corante sensível ao cálcio ocorrem dentro da faixa de alguns milissegundos, um sistema de imagem rápido é necessário para registrar esses eventos. De fato, câmeras de alta velocidade são comumente usadas para o registro de mudanças rápidas de cálcio, mas têm parâmetros de baixa resolução de imagem. O protocolo aqui apresentado para o registro transitório de cálcio permite uma resolução espacial-temporal extremamente boa fornecida pela microscopia confocal.
O problema da medição de ondas rápidas de cálcio em células excitáveis é um dos aspectos mais importantes e desafiadores do estudo da transmissão de sinais nos sistemas nervosos central e periférico. Os íons de cálcio desempenham um papel importante no desencadeamento da liberação de neurotransmissores, plasticidade sináptica e modulação da atividade de várias proteínas intracelulares 1,2,3,4,5. Estudar a sinalização de cálcio também é importante para encontrar maneiras de tratar doenças neurodegenerativas6. Para medir as alterações nos níveis de cálcio, corantes fluorescentes sensíveis ao cálcio são comumente usados, e alterações no nível de fluorescência são analisadas 7,8,9.
O carregamento de corantes de cálcio nas células pode ser alcançado de diferentes maneiras. Predominantemente, são utilizados corantes permeantes de células10,11. No entanto, nesse caso, não é apenas difícil controlar a concentração de um corante dentro da célula, mas também é difícil selecionar células-alvo para carregamento. Este método não é aplicável para estudar terminações nervosas periféricas, uma vez que o corante entra em células postinásticas. Em vez disso, corantes impermecedulares celulares são mais adequados para tais preparações. Neste caso, os corantes são entregues às células por microinjeção ou através de uma pipeta de remendo 12,13,14. Há também um método de carregar através de um toco nervoso. Este último método é mais adequado para preparações de junção neuromuscular 15,16,17,18,19,20. Permite realizar a coloração apenas para células de interesse. Embora este método não forneça uma avaliação precisa da concentração do corante na célula-alvo, a concentração pode ser estimada aproximadamente comparando o nível de fluorescência das células em repouso em soluções com uma concentração conhecida de cálcio21. Neste estudo, é apresentada uma modificação desse método aplicado às sinapses dos mamíferos.
A entrada de cálcio durante a fase de despolarização do potencial de ação é um processo rápido, especialmente na junção neuromuscular; portanto, para seu registro, é necessário equipamento adequado1. Um estudo recente usando um corante fluorescente sensível à tensão demonstrou que a duração do potencial de ação na sinapse periférica de um rato é de aproximadamente 300 μs22. O cálcio transitório, avaliado com corantes sensíveis ao cálcio nas sinapses periféricas do sapo, tem uma duração maior: o tempo de elevação é de cerca de 2-6 ms e o tempo de decomposição é de cerca de 30-90 ms, dependendo do corante de cálcio usado23,24. Para medir processos rápidos com a ajuda de corantes fluorescentes, as câmeras CCD ou CMOS são geralmente utilizadas, com matrizes CCD rápidas e sensíveis. No entanto, essas câmeras têm a desvantagem da baixa resolução, limitada pelo tamanho dos elementos sensíveis da matriz 25,26,27,28. As câmeras mais rápidas com sensibilidade suficiente para registrar tanto potenciais de ação quanto transitórios de cálcio em resposta à estimulação de baixa frequência das células têm uma frequência de varredura de 2.000 Hz, e uma matriz com uma dimensão de 80 x 8029. Para obter sinais com maior resolução espacial, é utilizada microscopia confocal, especialmente se for necessário avaliar algumas alterações volumosas no sinal 30,31,32. Mas deve-se ter em mente que a microscopia confocal tem uma alta velocidade de digitalização no modo de varredura de linha, mas ainda há limitações significativas na velocidade de gravações de processos rápidos ao construir uma imagem espacial33. Existem microscópios confocal baseados em discos Nipkow rotativos (microscopia de varredura de fenda) e scanners multipoint-array, que têm uma velocidade de varredura mais alta. Ao mesmo tempo, eles são inferiores aos microscópios confocal clássicos na filtragem de imagem confocal (pinholes crosstalk para microscópios com um disco Nipkow)32,34,35. A imagem confocal com ressonância também pode fornecer uma alta resolução espátula-temporal necessária para altas medições temporais36. No entanto, leve-se em conta que o registro de respostas fluorescentes fracas a uma alta velocidade de varredura ao usar scanners de ressonância requer detectores altamente sensíveis, como detectores híbridos36.
Este artigo apresenta um método para aumentar a resolução temporal dos sinais registrados com a Microscopia Confocal de Varredura a Laser (LSCM) mantendo a resolução espacial37. O método atual é um desenvolvimento adicional dos métodos descritos anteriormente e transferidos para a plataforma LSCM 38,39,40. Esta abordagem não requer alterações no hardware do microscópio e é baseada na aplicação de um algoritmo para gravação periodicamente de sinais fluorescentes evocados com uma mudança de tempo em relação ao momento de estimulação.
O método de carregamento de corante ca2+sensível em terminações nervosas do rato através do toco nervoso e para registro de um transitório rápido de cálcio usando um microscópio confocal é apresentado neste artigo. Como resultado da implementação deste método de carregamento, a maioria das sinapses localizadas perto do toco nervoso tinha um nível suficiente de fluorescência para permitir o registro da entrada de cálcio nas terminações nervosas em resposta à estimulação de baixa frequência…
The authors have nothing to disclose.
Os estudos de fluorescência deste trabalho foram realizados com o apoio financeiro do Subsídio da Fundação De ciência russa (projeto nº 19-15-00329). O método foi desenvolvido sob financiamento da atribuição governamental para o FRC Kazan Scientific Center of RAS ААААА-А18-118022790083-9. A pesquisa foi desenvolvida com o uso dos equipamentos do Centro Federal de Pesquisa “Centro Científico Kazan do RAS”. Os autores gostariam de agradecer ao Dr. Victor I. Ilyin pela leitura crítica deste manuscrito.
Capillary Glass | Clark Electromedical instruments, UK | GC150-10 | |
Confocal and multiphoton microscope system Leica TCS SP5 MP | Leica Microsystems , Heidelberg, Germany | ||
Flaming/Brown Micropipette Puller P 97 | Sutter Instrument, USA | P-97 | |
Flow regulator | KD Medical GmbH Hospital Products, Germany | KD REG | Disposable infusion set with Flow regulator |
HEPES | Sigma-Aldrich, USA | H0887 | 100mL |
Illumination system Leica CLS 150X | Leica Microsystems, Germany | ||
ImageJ | National Institutes of Health, USA | http://rsb.info.nih.gov/ij/download.html | |
Las AF software | Leica Microsystems, Heidelberg, Germany | ||
Las X software | Leica Microsystems, Heidelberg, Germany | https://www.leica-microsystems.com/products/microscope-software/p/leica-las-x-ls/ | |
Magnetic Holder with Suction Tubing | BIOSCIENCE TOOLS, USA | MTH-S | |
Microspin FV 2400 | Biosan, Latvia | BS-010201-AAA | |
Minutien Pins | Fine science tools, Canada | 26002-20 | |
Multi-spin MSC 3000 | Biosan, Latvia | BS-010205-AAN | |
Oregon Green 488 BAPTA-1 pentapotassium salt | Molecular Probes, USA | O6806 | 500 μg |
Pipette | Biohit, Russia | 720210 | 0.5-10 µL |
Pipette tip | Biohit, Russia | 781349 | 10 µL |
Plasticine | local producer | ||
Single-use hypodermic needles | Bbraun | 100 Sterican | 0.4×40 mm |
Spreadsheet program | Microsoft, USA | Microsoft Office Excel | |
Stereomicroscope, Leica M80 | Leica Microsystems , Germany | ||
Suction electrode | Kazakov A. SIMPLE SUCTION ELECTRODE FOR ELECTRIC STIMULATION OF BIOLOGICAL OBJECTS / A. Kazakov, M. Alexandrov, N. V. Zhilyakov et al. // International research journal. - 2015. – No. 9 (40) Part 3. – P. 13-16. | http://research-journal.org/biology/prostoj-vsasyvayushhij-elektrod-dlya-elektricheskoj-stimulyacii-biologicheskix-obektov/ | |
Sylgard 184 elastomer | Dow Corning, USA | ||
Syringe | local producer | 0.5 mL | |
Syringe | local producer | 60 mL |