Summary

Generering af nullmutanter for at belyse rollen som bakterielle glycosyltransferaser i bakteriel motilitet

Published: March 11, 2022
doi:

Summary

Her beskriver vi konstruktionen af nulmutanter af Aeromonas i specifikke glycosyltransferaser eller regioner indeholdende glycosyltransferaser, motilitetsassays og flagellarensning udført for at fastslå involvering og funktion af deres kodede enzymer i biosyntesen af en glycan samt denne glycans rolle i bakteriel patogenese.

Abstract

Undersøgelsen af glykosylering i prokaryoter er et hurtigt voksende område. Bakterier har forskellige glykosylerede strukturer på deres overflade, hvis glycaner udgør en stammespecifik stregkode. De tilknyttede glycaner viser større mangfoldighed i sukkersammensætning og struktur end eukaryoter og er vigtige i bakterie-værtsgenkendelsesprocesser og interaktion med miljøet. I patogene bakterier har glycoproteiner været involveret i forskellige stadier af den infektiøse proces, og glycanmodifikationer kan forstyrre specifikke funktioner af glycoproteiner. På trods af de fremskridt, der er gjort i forståelsen af glycansammensætning, struktur og biosynteseveje, forbliver forståelsen af glycoproteinernes rolle i patogenicitet eller interaktion med miljøet imidlertid meget begrænset. Desuden deles de enzymer, der kræves til proteinglykosylering, i nogle bakterier med andre biosyntetiske veje for polysaccharid, såsom lipopolysaccharid og kapselbiosyntetiske veje. Den funktionelle betydning af glycosylering er blevet belyst i flere bakterier gennem mutation af specifikke gener, der menes at være involveret i glykosyleringsprocessen og undersøgelsen af dens indvirkning på ekspressionen af målglycoproteinet og den modificerende glycan. Mesophilic Aeromonas har et enkelt og O-glycosyleret polært flagellum. Flagellarglycaner viser mangfoldighed i kulhydratsammensætning og kædelængde mellem Aeromonas-stammer . Imidlertid viser alle stammer, der er analyseret til dato, et pseudaminsyrederivat som det bindende sukker, der ændrer serin- eller threoninrester. Pseudaminsyrederivatet er nødvendigt for polær flagellasamling, og dets tab har indflydelse på vedhæftning, biofilmdannelse og kolonisering. Protokollen beskrevet i denne artikel, hvordan konstruktionen af nullmutanter kan bruges til at forstå inddragelsen af gener eller genomregioner, der indeholder formodede glycosyltransferaser i biosyntesen af en flagellar glycan. Dette omfatter potentialet til at forstå funktionen af de involverede glycosyltransferaser og glycanens rolle. Dette opnås ved at sammenligne den glykanmangelfulde mutant med vildtypestammen.

Introduction

Proteinglykosylering er beskrevet i både gram-positive og gram-negative bakterier og består af den kovalente fastgørelse af en glycan til en aminosyresidekæde 1,2. I prokaryoter forekommer denne proces normalt via to store enzymatiske mekanismer: O- og N-glycosylering3. Ved O-glycosylering er glycanen bundet til hydroxylgruppen af en serin (Ser) eller threonin (Thr) rest. Ved N-glycosylering er glycanen bundet til sidekædeamidnitrogenet af en asparagin (Asn) rest inden for tripeptidsekvenserne Asn-X-Ser / Thr, hvor X kunne være enhver aminosyre undtagen prolin.

Glycaner kan vedtage lineære eller forgrenede strukturer og er sammensat af monosaccharider eller polysaccharider kovalent bundet af glycosidbindinger. I prokaryoter viser glycaner normalt mangfoldighed i sukkersammensætning og struktur i forhold til eukaryote glycaner4. Desuden er to forskellige bakterielle glykosyleringsveje, der adskiller sig i, hvordan glycanen samles og overføres til acceptorproteinet, blevet beskrevet: sekventiel og en bloc glycosylering 5,6. Til sekventiel glykosylering opbygges den komplekse glycan direkte på proteinet ved successiv tilsætning af monosaccharider. I en blokglykosylering overføres en færdigmonteret glycan til proteinet fra et lipidbundet oligosaccharcharid ved hjælp af en specialiseret oligosaccharyltransferase (OTase). Begge veje har vist sig at være involveret i N- og O-glycosyleringsprocesser7.

Proteinglykosylering har en rolle i moduleringen af proteiners fysisk-kemiske og biologiske egenskaber. Tilstedeværelsen af en glycan kan påvirke, hvordan proteinet interagerer med dets ligand, hvilket påvirker proteinets biologiske aktivitet, men kan også påvirke proteinstabilitet, opløselighed, modtagelighed for proteolyse, immunogenicitet og mikrobe-værtsinteraktioner 8,9. Imidlertid kan flere glykosyleringsparametre, såsom antallet af glycaner, glycansammensætning, position og fastgørelsesmekanisme, også påvirke proteinfunktion og struktur.

Glycosyltransferaser (GT’er) er de vigtigste enzymer i biosyntesen af komplekse glycaner og glycokonjugater. Disse enzymer katalyserer den glykosidiske bindingsdannelse mellem en sukkermoiety fra et aktiveret donormolekyle og en specifik substratacceptor. GT’er kan anvende både nukleotider og ikke-nukleotider som donormolekyler og målrette mod forskellige substratacceptorer, såsom proteiner, saccharider, nukleinsyrer og lipider10. Derfor er det vigtigt at forstå GT’er på molekylært niveau for at identificere deres virkningsmekanismer og specificitet og muliggør også forståelse af, hvordan sukkersammensætningen af glycaner, der ændrer relevante molekyler, er relateret til patogenicitet. Carbohydrate Active Enzyme Database (CAZy)11 klassificerer GT’er i henhold til deres sekvenshomologi, hvilket giver et prædiktivt værktøj, da den strukturelle fold og virkningsmekanismer i de fleste GT-familier er invariante. Fire grunde gør det imidlertid vanskeligt at forudsige substratspecikaliteten for mange GT’er: 1) der er ikke bestemt noget klart sekvensmotiv, der bestemmer substratspecikaliteten i prokaryoter12, 2) mange GT’er og OTaser viser substratpromiskuitet 13,14, 3) funktionelle GT’er er vanskelige at producere i højt udbytte i rekombinant form, og 4) identifikationen af både donor- og acceptorsubstrater er kompleks. På trods af dette har nylige mutageneseundersøgelser gjort det muligt at opnå betydelige fremskridt i forståelsen af katalytiske mekanismer og trække binding af GT’er.

I bakterier synes O-glycosylering at være mere udbredt end N-glycosylering. O-glycosyleringsstederne viser ikke en konsensussekvens, og mange af de O-glycosylerede proteiner udskilles eller celleoverfladeproteiner, såsom flagelliner, pili eller autotransportører1. Flagellinglykosylering viser variation i antallet af acceptorsteder, glykansammensætning og struktur. For eksempel har Burkholderia spp flagelliner kun et acceptorsted, mens flagelliner i Campylobacter jejuni har så mange som 19 acceptorsteder15,16. Desuden er glycan for nogle bakterier et enkelt monosaccharid, mens andre bakterier besidder heterogene glycaner kompromitteret af forskellige monosaccharider for at danne oligosaccharider. Denne heterogenicitet forekommer selv blandt stammer af samme art. Helicobacter flagelliner er kun modificeret af pseudaminsyre (PseAc)17, og Campylobacter flagelliner kan modificeres af PseAc, acetamidinoformen af pseudaminsyre (PseAm) eller legionaminsyre (LegAm) og glycaner afledt af disse sukkerarter med acetyl, N-acetylglucosamin eller propioniske substitutioner18,19. I Aeromonas modificeres flagelliner af glycaner, hvis sammensætning spænder fra et enkelt PseAc-syrederivat til et heteropolysaccharid20, og fastgørelsen af glycaner til flagellinmonomererne sker altid via et PseAc-derivat.

Generelt er glykosylering af flagelliner afgørende for flagellar filamentsamling, bevægelighed, virulens og værtssotientitet. Men mens flagelliner af C. jejuni16, H. pylori17 og Aeromonas sp. 21 kan ikke samles i filament, medmindre proteinmonomererne er glykosylerede, Pseudomonas spp. og Burkholderia spp. 15 kræver ikke glykosylering til samling af flageller. Desuden påvirker ændringer i flagellaglycanens sukkersammensætning i nogle C. jejuni-stammer bakterie-værtsinteraktion og kan spille en rolle i at undgå visse immunresponser16. Autoagglutination er en anden fænotypisk egenskab påvirket af ændringer i sammensætningen af glycaner forbundet med flagelliner. En lavere autoagglutination fører til en reduktion i evnen til at danne mikrokolonier og biofilm22. I nogle bakterier var flagellas evne til at udløse et proinflammatorisk respons forbundet med flagellinglykosylering. I P. aeruginosa inducerer glycosyleret flagellin således et højere proinflammatorisk respons end unglycosyleret23.

Aeromonas er gramnegative bakterier, der er allestedsnærværende i miljøet, hvilket gør det muligt for dem at være ved grænsefladen mellem alle One Health-komponenter 24. Mesophilic Aeromonas har et enkelt polært flagellum, som er konstitutivt produceret. Mere end halvdelen af kliniske isolater udtrykker også lateral flagellin, der kan induceres i medier eller plader med høj viskositet. Forskellige undersøgelser har relateret begge flagellatyper med de tidlige stadier af bakteriel patogenese25. Mens polære flagelliner, der er rapporteret til dato, er O-glycosyleret ved 5-8 Ser- eller Thr-rester af dets centrale immunogene domæner, er laterale flagelliner ikke O-glycosyleret i alle stammerne. Selvom polære flagellaglycaner fra forskellige stammer viser mangfoldighed i deres kulhydratsammensætning og kædelængde20, har det bindende sukker vist sig at være et pseudaminsyrederivat.

Målet med dette manuskript er at beskrive en metode til opnåelse af nulmutanter i specifikke GT’er eller kromosomale regioner indeholdende GT’er for at analysere deres involvering i biosyntesen af relevante polysaccharider og i bakteriel patogenicitet samt selve glycanens rolle. Som et eksempel identificerer og sletter vi en kromosomal region, der indeholder GT’er af Aeromonas for at fastslå dets involvering i polær flagellinglykosylering og analysere flagellinglycanens rolle. Vi viser, hvordan man sletter en bestemt GT for at etablere dens funktion i biosyntesen af denne glycan og rollen som modificeret glycan. Selvom man bruger Aeromonas som et eksempel, kan princippet bruges til at identificere og studere flagellaglykosyleringsøer af andre gramnegative bakterier og analysere funktionen af GT’er involveret i biosyntesen af andre glycaner såsom O-antigen lipopolysaccharid.

Protocol

Den skematiske gengivelse af proceduren er vist i figur 1. 1. Bioinformatisk identifikation af flagellaglykosyleringsøen (FGIs) i Aeromonas For at identificere pseAc biosyntetiske klynger i Aeromonas-genomerne skal du bruge tblastnværktøjet fra NCBI-databasen26. Først skal du hente ortologe proteiner til PseC og PseI af A. piscicola AH-3 (identifikationskoder er OCA61126.1 o…

Representative Results

Denne metode giver et effektivt system til at generere nulmutanter i gener eller kromosomale regioner i Aeromonas , der kan påvirke flagellaglykosylering og flagellafilamentets rolle (figur 1). Protokollen starter med bioinformatisk identifikation af formodede FFI’er og de gener, der koder for GT’er, der er til stede i denne region. I Aeromonas er den kromosomale placering af FGIs baseret på påvisning af tre typer gener: gener involveret i bio…

Discussion

Det kritiske tidlige trin i denne metode er identifikationen af regioner, der er involveret i glykosylering af flageller og formodede GT’er, fordi disse enzymer viser høj homologi og er involveret i mange processer. Bioinformatisk analyse af Aeromonas-genomer i offentlige databaser viser, at denne region støder op til den polære flagellaregion 2, som indeholder flagellingenerne i mange stammer og indeholder gener, der er involveret i biosyntesen af pseudaminsyre27. Dette har gjort det …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af National Research Council Canada, for Plan Nacional de I + D (Ministerio de Economía y Competitividad, Spanien) og for Generalitat de Catalunya (Centre de Referència en Biotecnologia).

Materials

ABI PRISM Big Dye Terminator v. 3.1 Cycle Sequencing Ready Reaction Kit Applied Biosystems 4337455 Used for sequencing
AccuPrime Taq DNA Polymerase, high fidelity Invitrogen 12346-086 Used for amplification of AB, CD and AD fragments
Agarose Conda-Pronadise 8008 Used for DNA electrophoresis
Alkaline phosphatase, calf intestinal (CIAP) Promega M1821 Used to remove phosphate at the 5’ end
Bacto agar Becton Dickinson 214010 Use for motility analysis
BamHI Promega R6021 Used for endonuclease restriction
BglII Promega R6081 Used for endonuclease restriction
BioDoc-It Imagin System UVP Bio-imaging station used for DNA visualization
Biotaq polymerase Bioline BIO-21040 Used for colony screening
Cesium chloride Applichem A1126,0100 Used for flagella purification
Chloramphenicol Applichem A1806,0025 Used for triparental mating
Cytiva illustra GFX PCR DNA and Gel Band Purification Kit Cytivia 28-9034-71 Used for purification of PCR amplicons and DNA fragments.
EDTA Applichem 131026.1211 Used for DNA electrophoresis
Electroporation cuvettes 2 mm gap VWR 732-1133 Used for transformation
Ethidium bromide Applichem A1152,0025 Use for DNA visualization
HyperLadder 1 Kb marker Bioline BIO-33053 DNA marker
Invitrogen Easy-DNA gDNA Purification Kit Invitrogen 10750204 Used for bacterial chromosomal DNA purification
Luria-Bertani (LB) Miller agar Condalab 996 Used for Escherichia coli culture
Luria-Bertani (LB) Miller broth Condalab 1551 Used for Escherichia coli culture
Nanodrop ND-1000 NanoDrop Techonologies Inc Spectrophotometer used for DNA quantification
Rifampicin Applichem A2220,0005 Used for triparental mating
SOC Medium Invitrogen 15544034 Used for electroporation recovery
Spectinomycin Applichem A3834,0005 Used for triparental mating
SW 41 Ti Swinging-Bucket Rotor Beckman 331362 Used for flagella purification
T4 DNA ligase Invitrogen 15224017 Used for ligation reaction
Trypticasein soy agar Condalab 1068 Used for Aeromonas grown
Trypticasein soy broth Condalab 1224 Used for Aeromonas grown
Tryptone Condalab 1612 Use for motility analysis
Tris Applichem A2264,0500 Used for DNA electrophoresis and flagella purification
Triton X-100 Applichem A4975,0100 Used for bacterial lysis
Ultra Clear tubes (14 mm x 89 mm) Beckman 344059 Used for flagella purification
Veriti 96 well Thermal Cycler Applied Biosystems Used for PCR reactions
Zyppy Plasmid Miniprep II Kit Zymmo research D4020 Used for isolation of plasmid DNA

References

  1. Schäffer, C., Messner, P. Emerging facets of prokaryotic glycosylation. FEMS Microbiology Review. 41 (1), 49-91 (2017).
  2. De Maayer, P., Cowan, D. A. Flashy flagella: flagellin modification is relatively common and highly versatile among the Enterobacteriaceae. BMC Genomics. 17, 377 (2016).
  3. Nothaft, H., Szymanski, C. M. Protein glycosylation in bacteria: sweeter than ever. Nature Review Microbiology. 8 (11), 765-778 (2010).
  4. Benz, I., Schmidt, M. A. Never say never again: protein glycosylation in pathogenic bacteria. Molecular Microbiology. 45 (2), 267-276 (2002).
  5. Guerry, P., Szymanski, C. M. Campylobacter sugars sticking out. Trends in Microbiology. 16 (9), 428-435 (2008).
  6. Hug, I., Feldman, M. F. Analogies and homologies in lipopolysaccharide and glycoprotein biosynthesis in bacteria. Glycobiology. 21 (2), 138-151 (2011).
  7. Iwashkiw, J. A., Vozza, N. F., Kinsella, R. L., Feldman, M. F. Pour some sugar on it: the expanding world of bacterial protein O-linked glycosylation. Molecular Microbiology. 89 (1), 14-28 (2013).
  8. Szymanski, C. M., Wren, B. W. Protein glycosylation in bacterial mucosal pathogens. Nature Review Microbiology. 3, 225-237 (2005).
  9. Tan, F. Y. Y., Tang, C. M., Exley, R. M. Sugar coating: bacterial protein glycosylation and host-microbe interactions. Trends Biochemistry Sciences. 40 (7), 342-350 (2015).
  10. Lairson, L. L., Henrissat, B., Davies, G. J., Withers, S. G. Glycosyltransferases: structures, functions, and mechanisms. Annual Review Biochemistry. 77, 521-555 (2008).
  11. Lombard, V., Golaconda Ramulu, H., Drula, E., Coutinho, P. M., Henrissat, B. The carbohydrate-active enzymes database (CAZy) in 2013. Nucleic Acids Research. 42, 490-495 (2014).
  12. Weerapana, E., Imperiali, B. Asparagine-linked protein glycosylation: from eukaryotic to prokaryotic systems. Glycobiology. 16 (6), 91 (2006).
  13. Faridmoayer, A., et al. Extreme substrate promiscuity of the Neisseria oligosaccharyl transferase involved in protein O-glycosylation. Journal of Biological Chemistry. 283 (50), 34596-34604 (2008).
  14. Wacker, M., et al. Substrate specificity of bacterial oligosaccharyltransferase suggests a common transfer mechanism for the bacterial and eukaryotic systems. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (18), 7088-7093 (2006).
  15. Scott, A. E., et al. Flagellar glycosylation in Burkholderia pseudomallei and Burkholderia thailandensis. Journal of Bacteriology. 193 (14), 3577-3587 (2011).
  16. Thibault, P., et al. Identification of the carbohydrate moieties and glycosylation motifs in Campylobacter jejuni flagellin. Journal of Biological Chemistry. 276 (37), 34862-34870 (2001).
  17. Schirm, M., et al. Structural, genetic and functional characterization of the flagellin glycosylation process in Helicobacter pylori. Molecular Microbiology. 48 (6), 1579-1592 (2003).
  18. McNally, D. J., et al. Targeted metabolomics analysis of Campylobacter coli VC167 reveals legionaminic acid derivatives as novel flagellar glycans. Journal of Biological Chemistry. 282 (19), 14463-14475 (2007).
  19. Logan, S. M., et al. Identification of novel carbohydrate modifications on Campylobacter jejuni 11168 flagellin using metabolomics-based approaches. FEBS Journal. 276 (4), 1014-1023 (2009).
  20. Wilhelms, M., Fulton, K. M., Twine, S. M., Tomás, J. M., Merino, S. Differential glycosylation of polar and lateral flagellins in Aeromonas hydrophila AH-3. Journal of Biological Chemistry. 287 (33), 27851-27862 (2012).
  21. Canals, R., et al. Non-structural flagella genes affecting both polar and lateral flagella-mediated motility in Aeromonas hydrophila. Microbiology. 153, 1165-1175 (2007).
  22. Howard, S. L., et al. Campylobacter jejuni glycosylation island important in cell charge, legionaminic acid biosynthesis, and colonization of chickens. Infection and Immunity. 77 (6), 2544-2556 (2009).
  23. Verma, A., Arora, S. K., Kuravi, S. K., Ramphal, R. Roles of specific amino acids in the N-terminus of Pseudomonas aeruginosa flagellin and of flagellin glycosylation in the innate immune response. Infection and Immunity. 73 (12), 8237-8246 (2005).
  24. Lamy, B., Baron, S., Barraud, O. Aeromonas: the multifaceted middleman in the One Health world. Current Opinion in Microbiology. 65, 24-32 (2022).
  25. Gavín, R., et al. Lateral flagella of Aeromonas species are essential for epithelial cell adherence and biofilm formation. Molecular Microbiology. 43 (2), 383-397 (2002).
  26. Altschul, F. S., et al. Gapped BLAST and PSI-BLAST: a new generation of protein database search programs. Nucleic Acids Research. 25 (17), 3389-3402 (1997).
  27. Forn-Cuní, G., et al. Polar flagella glycosylation in Aeromonas: Genomic characterization and Involvement of a specific glycosyltransferase (Fgi-1) in heterogeneous flagella glycosylation. Frontiers in Microbiology. 11, 595697 (2021).
  28. Milton, D. L., O’Toole, R., Horstedt, P., Wolf-Watz, H. Flagellin A is essential for the virulence of Vibrio anguillarum. Journal of Bacteriol.ogy. 178 (5), 1310-1319 (1996).
  29. Kovács, N. Identification of Pseudomonas pyocyanea by the oxidase reaction. Nature. 178 (4535), 703 (1956).
  30. Fulton, K. M., Mendoza-Barberá, E., Twine, S. M., Tomás, J. M., Merino, S. Polar glycosylated and lateral non-glycosylated flagella from Aeromonas hydrophila strain AH-1 (Serotype O11). International Journal of Molecular Sciences. 16 (12), 28255-28269 (2015).
  31. Khider, M., Willassen, N. P., Hansen, H. The alternative sigma factor RpoQ regulates colony morphology, biofilm formation and motility in the fish pathogen Aliivibrio salmonicida. BMC Microbiology. 18 (1), 116 (2018).
  32. Pawar, S. V., et al. Novel genetic tools to tackle c-di-GMP-dependent signalling in Pseudomonas aeruginosa. Journal of Applied Microbiology. 120 (1), 205-217 (2016).
  33. Vander Broek, W., Chalmers, K. J., Stevens, M. P., Stevens, J. M. Quantitative proteomic analysis of Burkholderia pseuomallei Bsa Type III secretion system effectors using hypersecreting mutants. The American Society for Biochemistry and Molecular Biology. 14 (4), 905-916 (2015).

Play Video

Cite This Article
Tomás, J. M., Fulton, K. M., Twine, S. M., Merino, S. Generation of Null Mutants to Elucidate the Role of Bacterial Glycosyltransferases in Bacterial Motility. J. Vis. Exp. (181), e63231, doi:10.3791/63231 (2022).

View Video