Islatılmış boncuk testi, hücre farklılaşmasının ve morfogenezinin düzenlenmesini incelemek için herhangi bir gelişimsel zaman noktasında test reaktifinin hedeflenmiş olarak verilmesini içerir. Üç farklı tipte ıslatılmış boncuk hazırlamak ve bunları bir tavuk embriyosunun ara rakamlarına implante etmek için herhangi bir deneysel hayvan modeline uygulanabilir ayrıntılı bir protokol sunulmaktadır.
Embriyonik gelişim sırasında, şaşırtıcı bir somatik hücre, doku ve organ çeşitliliği oluşturmak için hücre farklılaşmasını düzenleyen çok sayıda genetik program aktive edilir. Bu genetik programların kesin aktivasyonu, hücre kaderini farklı eşiklerde yönlendiren difüzyon molekülleri olan morfojenler tarafından düzenlenir. Genetik aktivasyonun morfogenezi nasıl koordine ettiğini anlamak, gelişim sırasında morfojenler tarafından tetiklenen yerel etkileşimlerin incelenmesini gerektirir. Proteinlere batırılmış boncukların veya embriyonun farklı bölgelerine implante edilmiş ilaçların kullanılması, belirli moleküllerin rakamların ve diğer gelişimsel süreçlerin oluşturulmasındaki rolünün incelenmesini sağlar. Bu deneysel teknik, hücre indüksiyonunun kontrolü, hücre kaderi ve desen oluşumu hakkında bilgi sağlar. Bu nedenle, bu ıslatılmış boncuk testi, diğer embriyonik modellere uygulanabilir son derece güçlü ve değerli bir deneysel araçtır.
Embriyonik gelişim sırasında gen ekspresyonunu kontrol eden moleküler mekanizmalardaki atılımlar, hücre kaderinin nasıl belirlendiğini anlamamızı sağlamıştır. Farklı hücre soylarına bağlılık, hücreler transkripsiyon faktörlerinin moleküler ekspresyonuna başladığında ortaya çıkar1. Bu ifade paterni uzay ve zamanda oldukça koordine edilir ve böylece hücrelerin, dokuların ve organların şekillendirilmesini, konumlandırılmasını ve modellenmesini yönlendirir 1,2,3,4,5. Embriyonik indüksiyon, hücrelerin potansiyelini kısıtlayan hiyerarşiler oluşturarak hücrelerin belirli soylara bağlandığı süreçtir, hatta Spemann organizatörü 6,7’de olduğu gibi temel vücut planının oluşturulmasını bile içerir. Blastopore dorsal dudak, konakçı embriyo 8,9’da ikinci bir embriyonik ekseni indükler. Günümüzde, moleküler yaklaşımlarla birleştirilen aşılama ve diğer klasik deneylerin yardımıyla, farklı transkripsiyon faktörlerinin ve büyüme faktörlerinin Spemann organizatörü10’da embriyonik indüksiyonu yönlendirmek için işlev gördüğü bilinmektedir. Bu nedenle, deneysel manipülasyon, embriyogenez sırasında hücre farklılaşmasını, morfogenezi ve modelleme süreçlerini anlamak için önemli bir araçtır.
İlginçtir ki, doku naklinin zor olduğu embriyonik sistemlerde veya indükleyiciler zaten iyi biliniyorsa, taşıyıcılar, hücre farklılaşmasını, morfogenezi ve hatta modellemeyi düzenlemek için molekülleri (örneğin proteinler, kimyasallar, toksinler vb.) Böyle bir taşıyıcı sistem, söz konusu reaktifin etkisini belirlemek veya söz konusu modelin farklılaşmasını yönlendirmek için herhangi bir gelişimsel zaman noktasında herhangi bir deneysel model organizmada belirli bir moleküle batırılmış boncukların implante edilmesini içerir. Örneğin, retinoik asit (RA) ile ıslatılmış boncukları tavuk kanadı uzuv tomurcuğuna implante ederek, Cheryl Tickle ve ark. (1985), RA’nın polarize edici aktivite (ZPA) bölgesinde sonik kirpi ekspresyonunu indüklediğini göstermiştir 11,12. Aynı deneysel strateji, RA’nın basamak gelişimi sırasında ekstremite tomurcuğundaki somitlerin asimetrisini ve hücre ölümünü kontrol ettiğini ve diğer embriyonik uzuv bölgelerinde13,14,15 olduğunu keşfetmek için kullanıldı. Diğer faktörler, esas olarak proteinler (örneğin, fibroblast büyüme faktörleri [FGF], dönüştürücü büyüme faktörü-beta [TGF-ß]), erken embriyoların yanlarında uzuvları ve interdigital bölgede yeni basamakları indüklemek için kullanılmıştır, sırasıyla 16,17,18,19,20,21 . Bu deneyler, moleküllere maruz kalan dokuların veya hücre gruplarının bağlılık veya yeterlilik aşamasını belirlemek için bu tekniğin gücünü ve faydasını kanıtlamaktadır.
Bu protokolde, basamak oluşumu aşamasındaki civciv uzuv, ıslatılmış boncukların nasıl hazırlanacağını ve implante edileceğini adım adım sunmak için deneysel model olarak hizmet etti. Bununla birlikte, bu deneysel araç bu uygulama ile sınırlı değildir, ancak herhangi bir deneysel hayvan modelinde ve indüksiyon, farklılaşma, hücre ölümü ve modellemeyi incelemek için in vitro ve in vivo herhangi bir zaman noktasında kullanılabilir.
Bu protokolde ayrıntılı olarak açıklanan deneysel aracın temel avantajı, belirli bir deneysel moleküle batırılmış boncuklara maruz kalma süresini ve yerini kontrol edebilmektir. Doğru konumlandırmayı hassas gelişimsel zamanlama ile birleştirmek, hücre farklılaşma süreçlerini incelemek için muazzam olanaklar sağlar. Bu deneylerin farklılaşmamış dokuda yapılması, hücresel soydaki ilk önemli olayların araştırılmasını sağlar. Örneğin, embriyonik uzuvların interdigital dokusuna TGFß…
The authors have nothing to disclose.
Bu çalışma, JC-M’ye verilen Dirección General de Asuntos del Personal Académico (DGAPA)-Universidad Nacional Autónoma de México [hibe numaraları IN211117 ve IN213314] ve Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT) [hibe numarası 1887 CONACyT-Fronteras de la Ciencia] tarafından desteklenmiştir. JC M-L, Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología’dan (CONACyT-Fronteras de la Ciencia-1887) doktora sonrası burs aldı. Yazarlar Lic’in yardımını takdir ediyor. Instituto de Investigaciones Biomédicas, UNAM’dan Lucia Brito, bu makalenin hazırlık referanslarında.
Affi-Gel Blue Gel beads | Bio-Rad | 153-7302 | |
AG1-X2 beads | Bio-Rad | 1400123 | |
Egg incubator | Incumatic de Mexico | Incumatic 1000 | |
Fine surgical forceps | Fine Science Tools | 9115-10 | |
Heparine Sepharose beads | Abcam | ab193268 | |
Petri dish | Nest | 705001 | |
Stereomicroscope | Zeiss | Stemi DV4 | |
Tape | NA | NA | |
Tungsten needle | GoodFellow | E74-15096/01 |