Summary

6-гидроксидофаминовая крысиная модель болезни Паркинсона

Published: October 27, 2021
doi:

Summary

Модель 6-гидроксидотамина (6-OHDA) использовалась в течение десятилетий для продвижения понимания болезни Паркинсона. В этом протоколе мы демонстрируем, как выполнять односторонние нигростриатальные поражения у крыс путем введения 6-OHDA в медиальный пучок переднего мозга, оценивать двигательный дефицит и прогнозировать поражения с помощью степпинг-теста.

Abstract

Двигательные симптомы болезни Паркинсона (БП) — брадикинезия, акинезия и тремор в состоянии покоя — являются последствиями нейродегенерации дофаминергических нейронов в черной субстанции pars compacta (SNc) и дофаминергического стриатального дефицита. Животные модели широко используются для моделирования патологии человека в лаборатории. Грызуны являются наиболее используемыми животными моделями для PD из-за их простоты обращения и обслуживания. Более того, анатомия и молекулярные, клеточные и фармакологические механизмы БП схожи у грызунов и человека. Инфузия нейротоксина, 6-гидроксидофамина (6-OHDA), в медиальный пучок переднего мозга (MFB) крыс воспроизводит тяжелое разрушение дофаминергических нейронов и имитирует симптомы БП. Этот протокол демонстрирует, как выполнить одностороннюю микроинъекцию 6-OHDA в MFB на крысиной модели PD и показывает двигательный дефицит, индуцированный 6-OHDA и прогнозируемыми дофаминергическими поражениями через ступенчатый тест. 6-OHDA вызывает значительное ухудшение количества шагов, выполняемых с контралатеральной передней конечностью.

Introduction

Основными нейропатологическими характеристиками БП являются хроническая прогрессирующая нейродегенерация дофаминергических нейронов в черной субстанции pars compacta (SNc) и наличие телец Леви, содержащих α-синуклеиновый белок1. Поскольку дофаминергические нейроны SNc проецируют свои аксоны в полосатое тело через нигростриатальный путь, нейродегенерация нейронов в SNc приводит к дофаминергическому дефициту в полосатом теле2. Отсутствие дофамина в полосатом теле вызывает дисбаланс в деятельности прямых и непрямых двигательных контрольных путей, что отвечает за основные двигательные симптомы БП: акинезию (медленное движение), брадикинезию (затруднение стартовых движений), жесткость мышц, тремор в состоянии покоя3,4,5.

Поскольку молекулярные и физиологические механизмы, участвующие в возникновении БП, все еще не полностью поняты, в настоящее время доступные основные методы лечения направлены на облегчение двигательных симптомов с помощью фармакотерапии, глубокой стимуляции мозга6,7, генетической терапии8 и трансплантации клеток9. Таким образом, доклинические исследования имеют основополагающее значение для выяснения механизмов, участвующих в возникновении БП, и открытия новых методологий ранней диагностики и новых методов лечения для предотвращения или остановки дегенерации нейронов, пораженных PD10.

Животные модели широко использовались для моделирования патологии человека в лаборатории, способствуя развитию медицины и науки11,12,13,14. Тем не менее, важно подчеркнуть, что правильный выбор животной модели имеет основополагающее значение для успеха исследования. Поэтому животная модель должна быть валидирована в трех основных аспектах: i) валидность лица, при которой животная модель должна обладать характеристиками патологии человека; ii) конструктивная обоснованность, при которой животная модель должна иметь прочную теоретическую основу; и iii) прогностическая валидность, при которой животные модели должны реагировать на лечение аналогично клиническому лечению.

В настоящее время несколько животных используются в качестве животных моделей для БП. Основные группы включают млекопитающих, таких как грызуны, приматы, минипиги, собаки и кошки, а также другие группы, такие как дрозофилы и рыбки данио. Грызуны являются наиболее классической моделью животных для БП и наиболее используемой из-за их простоты обращения и обслуживания. Кроме того, анатомия и молекулярные, клеточные и фармакологические механизмы БП схожи у грызунов и человека15.

В обзоре, опубликованном Кином и его коллегами в 2019 году, были проанализированы основные методологии моделирования животных, используемые для БП в 2000-х годах, и было обнаружено, что наиболее используемая животная модель включала нейротоксины, такие как 6-гидроксидофамин (6-OHDA) и 1-метил-4-фенил-1,2,3,6-тетрагидропиридин (MPTP). Оба нейротоксина вызывают митохондриальную дисрегуляцию в дофаминергических нейронах в нигростриатальном пути, что приводит к гибели клеток16. Другая широко используемая модель включает генетические манипуляции посредством мутации в определенных генах, участвующих в возникновении БП, вызывая митохондриальную дисрегуляцию17. Модели нейротоксинов обычно используются для оценки и сравнения терапевтических средств, тогда как генетические модели используются для изучения разработки профилактической терапии и идиопатического PD15.

Нейротоксин MPTP был обнаружен вызывающим паркинсонизм в середине 1980-х годов после того, как семь пациентов использовали вещество и проявляли тяжелые симптомы БП. В дополнение к симптомам, пациенты ответили на лечение L-DOPA, что заставило исследователей связать молекулу непосредственно с БП. После того, как случай был опубликован в 1986 году, несколько исследователей начали использовать MPTP в доклинических исследованиях PD18. Исследователи обнаружили, что, будучи липофильной молекулой, MPTP может пересекать гематоэнцефалический барьер (BBB) и преобразовываться в MPP + 19. Это токсичное вещество накапливается внутри нейронов и вызывает повреждение комплекса 1 митохондриальной дыхательной цепи, что приводит к гибели дофаминергических нейронов20.

Модель нейротоксина 6-OHDA была впервые использована для индуцирования дегенерации моноаминовых нейронов нигростриатального пути в 196821 году. Модель 6-OHDA обычно используется для вызова нейродегенерации в нигростриатальном пути, поскольку она является аналогом дофамина и токсична для клеток, содержащих катехоламин. После того, как 6-OHDA попадает в мозг, он может быть поглощен транспортером дофамина (DAT) в дофаминергических нейронах, что приводит к дегенерации нигростриатального пути22. Поскольку 6-OHDA не проникает в ГЭБ, его необходимо вводить непосредственно через внутримозговую стереотаксическую инъекцию23. Ингибитор обратного захвата норадреналина часто сочетают с микроинъекцией 6-OHDA для сохранения норадренергических волокон и обеспечения более селективной дегенерации дофаминергических нейронов24.

После того, как DAT поглощает 6-OHDA, он будет накапливаться в цитозоле нейронов, производя активные формы кислорода (АФК) и приводя к гибели клеток15. Часто используются три различные модели поражений 6-OHDA: i) поражения SNc25,26; ii) поражения полосатого тела27,28; iii) поражения MFB29,30. Поражения, вызванные в полосатом теле, приводят к медленной и ретроградной дегенерации дофаминергических нейронов в SNpc. Напротив, поражения, вызванные SNpc и MFB, приводят к быстрой и полной дегенерации нейронов, что приводит к более продвинутым симптомам паркинсонизма31.

Односторонняя или двусторонняя инъекция 6-OHDA может вызвать нейродегенерацию в дофаминергических нейронах. 6-OHDA не всегда вызывает серьезные повреждения нейронов; иногда инъекция приводит к частичному повреждению, которое также используется для моделирования ранних стадий PD32. Односторонняя инъекция чаще используется из-за способности модели оценивать двигательный дефицит животного и прогнозировать потерю клеток с помощью таких тестов, как вращение, вызванное амфетамином / апоморфином, и ступенчатый тест29. Двусторонние инъекции чаще всего используются для оценки пространственной памяти и распознавания33.

Тест вращения, индуцированный амфетамином / апоморфином, является поведенческим тестом, обычно используемым для прогнозирования потери клеток в нигростриатальном пути. Он определяется как процесс, при котором повторное введение агонистов дофамина приводит к интенсификации ротационного поведения у 6-OHDA-пораженных животных34. Ротационное поведение состоит из количественной оценки индуцированного амфетамином ипсилатерального вращения или контралатеральных поворотов, вызванных апоморфином, у односторонне пораженных грызунов. Вызванное наркотиками ротационное поведение подверглось критике, потому что ротация не соответствует симптомам БП у людей и может зависеть от таких переменных, как толерантность, сенсибилизация и «прайминг»35.

Прайминг является одним из наиболее важных факторов в этих поведенческих тестах. Сообщалось о некоторых случаях, когда однократная доза L-DOPA приводила к сбою в ротационном поведении36. Кроме того, еще одним критическим фактором, связанным с комбинированным применением теста, индуцированного амфетамином, и теста, индуцированного апоморфином, для параллельного использования является то, что они измеряют различные конечные точки из-за различных механизмов действия, отражающих инактивацию различных сигнальных механизмов и путей. Кроме того, тест, индуцированный амфетамином, более точен для измерения нигростриатальных поражений выше 50-60%, тогда как тест, индуцированный апоморфином, более точен для поражений выше 80% 37.

Степпинг-тест появился как поведенческий тест, который указывает на дефицит, связанный с дегенерацией дофаминергических нейронов и терапевтическими эффектами. Это позволяет анализировать акинезию, вызванную поражением 6-OHDA в дофаминергических нейронах без процедуры, вызванной лекарственными средствами. Кроме того, тест был хорошо известен и широко используется с 1995 года, когда он был впервые описан Olsson et al.35. В 1999 году Chang et al.38 также проанализировали и сравнили производительность крыс в ступенчатом тесте с уровнем дегенерации, вызванной 6-OHDA, и обнаружили, что животные, которые показали худшие результаты в ступенчатом тесте, также имели более значительную дегенерацию дофаминергических нейронов.

Степпинг-тест является отличным методом для прогнозирования тяжелого дофаминергического нигростриатального повреждения у крыс с поражением 6 OHDA. Данные свидетельствуют о том, что двигательный дефицит появляется в контралатеральной передней части инфузии 6-OHDA во время степпинг-теста, когда степень дофаминергической потери в SNc составляет >90%39. В этой статье описываются протоколы, методологии и материалы, используемые для выполнения стереотаксической хирургии для односторонней инфузии 6-OHDA в MFB крыс, и как предсказать дофаминергические поражения, вызванные токсином, с помощью ступенчатого теста.

Protocol

Все процедуры с участием животных соответствовали этическим принципам Национального совета по контролю за экспериментами на животных (CONCEA) и Закону Аруки (Закон 11.794/2008) и были одобрены местным комитетом по этике (CEUA-FFCLRP/USP (18.5.35.59.5). 1. Приготовление лекарственных препар…

Representative Results

Оценка дофаминергических пораженийСтупенчатый тест позволяет оценить акинезию передней конечности, противопоказанную к поражению, и выбрать животных с возможным поражением нигростриатального пути, индуцированного инфузией 6-OHDA (рисунок 1). Сравнение эффек…

Discussion

В данной работе описан протокол выполнения операции по односторонней микроинфузии 6-OHDA в MFB, способной вызывать устойчивые поражения в нейронах нигростриатального пути и генерировать акинезию у животного. Также описан протокол для выполнения степпинг-теста, легко применимого и неинва…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Исследовательским фондом Сан-Паулу (FAPESP, грант 2017/00003-0). Мы благодарны за Координацию по совершенствованию кадров высшего образования (CAPES). Мы благодарим д-ра Энтони Р. Уэста, д-ра Хайнца Штайнера и д-ра Куэй Й. Ценга за поддержку и наставничество.

Materials

6-OHDA Sigma Aldrich H4381 https://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/h4381?lang=pt&region=BR&cm_sp=Insite-_-caSrpResults_srpRecs_srpModel
_6-ohda-_-srpRecs3-1
70% Alcohol
Ascorbic acid Sigma Aldrich 795437 https://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sial/795437?lang=pt&region=BR&gclid=
Cj0KCQjw4cOEBhDMARIsAA3XD
RipyOnxOxkKAm3J1PxvIsvw09
_kfaS2jYcD9E5OyuHYr4n89kO
6yicaAot6EALw_wcB
Cotton
Drill or tap
Gauze
Hamilton syringe 50 uL Hamilton 80539 https://www.hamiltoncompany.com/laboratory-products/syringes/80539
Imipramine Alfa Aeser J63723 https://www.alfa.com/pt/catalog/J63723/
Infusion pump Insight EFF-311 https://insightltda.com.br/produto/eff-311-bomba-de-infusao-2-seringas/
Ketamine (Dopalen) Ceva https://www.ceva.com.br/Produtos/Lista-de-Produtos/DOPALEN
Machine for trichotomy
Meloxicam (Maxicam 2%  Ourofino) Ourofino https://terrazoo.com.br/produto/maxicam-injetavel-2-50ml-ouro-fino/
Metal Disposal
Paper towels
Pentabiotic Zoetis https://www.zoetis.com.br/pentabiotico-veterinario.aspx
Plastic waste garbage can
Poly-antibiotic Pentabiotic (Wealth)
Povidone-iodine
Scalpel and blades
Scissors
Scraper
Stereotaxic apparatus Insight EFF-331 https://insightltda.com.br/produto/eff-331-estereotaxico-1-torre/
Sterile saline solution
Swabs
Temperature probe
Timer
Tweezers
Xylazine (Anasedan) Ceva https://www.ceva.com.br/Produtos/Lista-de-Produtos/ANASEDAN

References

  1. Gibb, W. R., Lees, A. J. The relevance of the Lewy body to the pathogenesis of idiopathic Parkinson’s disease. Journal of Neurology, Neurosurgery, and Psychiatry. 51 (6), 745-752 (1988).
  2. Albin, R. L., Young, A. B., Penney, J. B. The functional anatomy of basal ganglia disorders. Trends in Neurosciences. 12 (10), 366-375 (1989).
  3. Dexter, D. T., Jenner, P. Parkinson disease: from pathology to molecular disease mechanisms. Free Radical Biology & Medicine. 62, 132-144 (2013).
  4. Obeso, J. A., et al. Functional organization of the basal ganglia: therapeutic implications for Parkinson’s disease. Movement Disorders. 23, 548-559 (2008).
  5. Tysnes, O. -. B., Storstein, A. Epidemiology of Parkinson’s disease. Journal of Neural Transmission. 124 (8), 901-905 (2017).
  6. Karachi, C., et al. Clinical and anatomical predictors for freezing of gait and falls after subthalamic deep brain stimulation in Parkinson’s disease patients. Parkinsonism & Related Disorders. 62, 91-97 (2019).
  7. Sudhakar, V., Richardson, R. M. Gene therapy for Parkinson’s disease. Progress in Neurological Surgery. 33, 253-264 (2018).
  8. Baizabal-Carvallo, J. F., et al. Combined pallidal and subthalamic nucleus deep brain stimulation in secondary dystonia-parkinsonism. Parkinsonism & Related Disorders. 19 (5), 566-568 (2013).
  9. Morizane, A. Cell therapy for Parkinson’s disease with induced pluripotent stem cells. Clinical Neurology. 59 (3), 119-124 (2019).
  10. Jankovic, J., Tan, E. K. Parkinson’s disease: etiopathogenesis and treatment. Journal of Neurology, Neurosurgery, and Psychiatry. 91 (8), 795-808 (2020).
  11. Cenci, M. A., Whishaw, I. Q., Schallert, T. Animal models of neurological deficits: how relevant is the rat. Nature Reviws. Neuroscience. 3 (7), 574-579 (2002).
  12. Tronci, E., Francardo, V. Animal models of l-DOPA-induced dyskinesia: the 6-OHDA-lesioned rat and mouse. Journal of Neural Transmission. 125 (8), 1137-1144 (2018).
  13. Lane, E., Dunnett, S. Animal models of Parkinson’s disease and L-dopa induced dyskinesia: How close are we to the clinic. Psychopharmacology. 199 (3), 303-312 (2008).
  14. Meredith, G. E., Sonsalla, P. K., Chesselet, M. -. F. Animal models of Parkinson’s disease progression. Acta Neuropathologica. 115 (4), 385-398 (2008).
  15. Kin, K., Yasuhara, T., Kameda, M., Date, I. Animal models for Parkinson’s disease research: trends in the 2000s. International Journal of Molecular Sciences. 20 (21), 5402 (2019).
  16. Schober, A. Classic toxin-induced animal models of Parkinson’s disease: 6-OHDA and MPTP. Cell and Tissue Research. 318 (1), 215-224 (2004).
  17. Smith, G. A., Isacson, O., Dunnett, S. B. The search for genetic mouse models of prodromal Parkinson’s disease. Experimental Neurology. 237 (2), 267-273 (2012).
  18. Langston, J. W., Ballard, P., Tetrud, J. W., Irwin, I. Chronic Parkinsonism in humans due to a product of meperidine-analog synthesis. Science. 219 (4587), 979-980 (1983).
  19. Langston, J. W., Irwin, I., Langston, E. B., Forno, L. S. 1-Methyl-4-phenylpyridinium ion (MPP+): identification of a metabolite of MPTP, a toxin selective to the substantia nigra. Neuroscience Letters. 48 (1), 87-92 (1984).
  20. Ramsay, R. R., Salach, J. I., Singer, T. P. Uptake of the neurotoxin 1-methyl-4-phenylpyridine (MPP+) by mitochondria and its relation to the inhibition of the mitochondrial oxidation of NAD+-linked substrates by MPP+. Biochemical and Biophysical Research Communications. 134 (2), 743-748 (1986).
  21. Ungerstedt, U. 6-Hydroxy-dopamine induced degeneration of central monoamine neurons. European Journal of Pharmacology. 5 (1), 107-110 (1968).
  22. Blandini, F., Armentero, M. -. T. Animal models of Parkinson’s disease. FEBS Journal. 279 (7), 1156-1166 (2012).
  23. McDowell, K., Chesselet, M. -. F. Animal models of the non-motor features of Parkinson’s disease. Neurobiology of Disease. 46 (3), 597-606 (2012).
  24. Luthman, J., Fredriksson, A., Sundström, E., Jonsson, G., Archer, T. Selective lesion of central dopamine or noradrenaline neuron systems in the neonatal rat: motor behavior and monoamine alterations at adult stage. Behavioural Brain Research. 33 (3), 267-277 (1989).
  25. Casarrubea, M., et al. Effects of Substantia Nigra pars compacta lesion on the behavioral sequencing in the 6-OHDA model of Parkinson’s disease. Behavioural Brain Research. 362, 28-35 (2019).
  26. Wang, R., Shao, M. L-DOPA-elicited abnormal involuntary movements in the rats damaged severely in substantia nigra by 6-hydroxydopamine. Annals of Palliative Medicine. 9 (3), 947-956 (2020).
  27. Hernandez-Baltazar, D., Mendoza-Garrido, M. E., Martinez-Fong, D. Activation of GSK-3β and caspase-3 occurs in Nigral dopamine neurons during the development of apoptosis activated by a striatal injection of 6-hydroxydopamine. PLoS One. 8 (8), 70951 (2013).
  28. Bagga, V., Dunnett, S. B., Fricker, R. A. The 6-OHDA mouse model of Parkinson’s disease – Terminal striatal lesions provide a superior measure of neuronal loss and replacement than median forebrain bundle lesions. Behavioural Brain Research. 288, 107-117 (2015).
  29. Iancu, R., Mohapel, P., Brundin, P., Paul, G. Behavioral characterization of a unilateral 6-OHDA-lesion model of Parkinson’s disease in mice. Behavioural Brain Research. 162 (1), 1-10 (2005).
  30. Boix, J., Padel, T., Paul, G. A partial lesion model of Parkinson’s disease in mice – Characterization of a 6-OHDA-induced medial forebrain bundle lesion. Behavioural Brain Research. 284, 196-206 (2015).
  31. Blesa, J., Phani, S., Jackson-Lewis, V., Przedborski, S. Classic and new animal models of Parkinson’s disease. Journal of Biomedicine & Biotechnology. 2012, 845618 (2012).
  32. Breit, S., et al. Effects of 6-hydroxydopamine-induced severe or partial lesion of the nigrostriatal pathway on the neuronal activity of pallido-subthalamic network in the rat. Experimental Neurology. 205 (1), 36-47 (2007).
  33. More, S. V., Kumar, H., Cho, D. -. Y., Yun, Y. -. S., Choi, D. -. K. Toxin-induced experimental models of learning and memory impairment. International Journal of Molecular Sciences. 17 (9), 1447 (2016).
  34. Schwarting, R. K. W., Huston, J. P. The unilateral 6-hydroxydopamine lesion model in behavioral brain research. Analysis of functional deficits, recovery and treatments. Progress in Neurobiology. 50 (2-3), 275-331 (1996).
  35. Olsson, M., Nikkhah, G., Bentlage, C., Björklund, A. Forelimb akinesia in the rat Parkinson model: differential effects of dopamine agonists and nigral transplants as assessed by a new stepping test. Journal of Neuroscience. 15 (5), 3863-3875 (1995).
  36. Lindgren, H. S., Rylander, D., Ohlin, K. E., Lundblad, M., Cenci, M. A. The ‘motor complication syndrome’ in rats with 6-OHDA lesions treated chronically with l-DOPA: Relation to dose and route of administration. Behavioural Brain Research. 177 (1), 150-159 (2007).
  37. Björklund, A., Dunnett, S. B. The amphetamine induced rotation test: A re-assessment of its use as a tool to monitor motor impairment and functional recovery in rodent models of Parkinson’s disease. Journal of Parkinson’s Disease. 9 (1), 17-29 (2019).
  38. Chang, J. W., Wachtel, S. R., Young, D., Kang, U. J. Biochemical and anatomical characterization of forepaw adjusting steps in rat models of Parkinson’s disease: studies on medial forebrain bundle and striatal lesions. 신경과학. 88 (2), 617-628 (1999).
  39. Jayasinghe, V. R., Flores-Barrera, E., West, A. R., Tseng, K. Y. Frequency-dependent corticostriatal disinhibition resulting from chronic dopamine depletion: role of local striatal cGMP and GABA-AR signaling. Cerebral Cortex. 27 (1), 625-634 (2017).
  40. Schallert, T., Fleming, S. M., Leasure, J. L., Tillerson, J. L., Bland, S. T. CNS plasticity and assessment of forelimb sensorimotor outcome in unilateral rat models of stroke, cortical ablation, parkinsonism and spinal cord injury. Neuropharmacology. 39 (5), 777-787 (2000).
  41. Paxinos, G., Watson, C. . The rat brain in stereotaxic coordinates. , (2006).
  42. Padovan-Neto, F. E., et al. Selective regulation of 5-HT1B serotonin receptor expression in the striatum by dopamine depletion and repeated L-DOPA treatment: relationship to L-DOPA-induced dyskinesias. Molecular Neurobiology. 57 (2), 736-751 (2020).
  43. Prasad, E. M., Hung, S. -. Y. Behavioral tests in neurotoxin-induced aAnimal models of Parkinson’s disease. Antioxidants. 9 (10), 1007 (2020).
  44. Lundblad, M., Picconi, B., Lindgren, H., Cenci, M. A. A model of L-DOPA-induced dyskinesia in 6-hydroxydopamine lesioned mice: Relation to motor and cellular parameters of nigrostriatal function. Neurobiology of Disease. 16 (1), 110-123 (2004).
  45. Masini, D., et al. A guide to the generation of a 6-hydroxydopamine mouse model of Parkinson’s disease for the study of non-motor symptoms. Biomedicines. 9 (6), 598 (2021).
  46. Francardo, V., et al. Impact of the lesion procedure on the profiles of motor impairment and molecular responsiveness to L-DOPA in the 6-hydroxydopamine mouse model of Parkinson’s disease. Neurobiology of Disease. 42 (3), 327-340 (2011).
  47. Thiele, S. L., Warre, R., Nash, J. E. Development of a unilaterally-lesioned 6-OHDA mouse model of Parkinson’s disease. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (60), e3234 (2012).
  48. Fish, R., Danneman, P., Brown, M., Karas, A. . Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals. , (2008).
  49. Buitrago, S., Martin, T. E., Tetens-Woodring, J., Belicha-Villanueva, A., Wilding, G. E. Safety and efficacy of various combinations of injectable anesthetics in BALB/c mice. Journal of the American Association for Laboratory Animal Sciences. 47 (1), 11-17 (2008).
  50. Struck, M. B., Andrutis, K. A., Ramirez, H. E., Battles, A. H. Effect of a short-term fast on ketamine-xylazine anesthesia in rats. Journal of the American Association for Laboratory Animal Sciences. 50 (3), 344-348 (2011).
  51. Jiron, J. M., et al. Comparison of isoflurane, ketamine-dexmedetomidine, and ketamine-xylazine for general anesthesia during oral procedures in rice rats (Oryzomys palustris). Journal of the American Association for Laboratory Animal Sciences. 58 (1), 40-49 (2019).

Play Video

Cite This Article
Guimarães, R. P., Ribeiro, D. L., dos Santos, K. B., Godoy, L. D., Corrêa, M. R., Padovan-Neto, F. E. The 6-hydroxydopamine Rat Model of Parkinson’s Disease. J. Vis. Exp. (176), e62923, doi:10.3791/62923 (2021).

View Video