Dit protocol beschrijft de technische benadering om adipogene en fibro-inflammatoire stromale celsubpopulaties te isoleren uit intra-abdominale witte vetweefseldepots (WAT) van muizen door middel van fluorescentie-geactiveerde celsortering of immunomagnetische parelscheiding.
De stromale-vasculaire fractie (SVF) van wit vetweefsel (WAT) is opmerkelijk heterogeen en bestaat uit talrijke celtypen die functioneel bijdragen aan de uitbreiding en hermodellering van WAT op volwassen leeftijd. Een enorme barrière voor het bestuderen van de implicaties van deze cellulaire heterogeniteit is het onvermogen om gemakkelijk functioneel verschillende celsubpopulaties te isoleren van WAT SVF voor in vitro en in vivo analyses. Single-cell sequencing-technologie heeft onlangs functioneel verschillende fibro-inflammatoire en adipogene PDGFRβ+ perivasculaire celsubpopulaties geïdentificeerd in intra-abdominale WAT-depots van volwassen muizen. Fibro-inflammatoire voorlopercellen (“FIP’s” genoemd) zijn niet-adipogene collageenproducerende cellen die een pro-inflammatoir fenotype kunnen uitoefenen. PDGFRβ+ adipocytenprecursorcellen (APC’s) zijn zowel in vitro als in vivo bij celtransplantatie zeer adipogeen. Hier beschrijven we meerdere methoden voor de isolatie van deze stromale celsubpopulaties uit intra-abdominale WAT-depots van muizen. FIP’s en APC’s kunnen worden geïsoleerd door fluorescentie-geactiveerde celsortering (FACS) of door gebruik te maken van op biotinylated antilichamen gebaseerde immunomagnetische pareltechnologie. Geïsoleerde cellen kunnen worden gebruikt voor moleculaire en functionele analyse. Het bestuderen van de functionele eigenschappen van de subpopulatie van stromale cellen in isolatie zal onze huidige kennis van de hermodellering van vetweefsel onder fysiologische of pathologische omstandigheden op cellulair niveau uitbreiden.
Wit vetweefsel (WAT) vertegenwoordigt de belangrijkste plaats voor energieopslag bij zoogdieren. In dit weefsel slaan adipocyten, of ‘vetcellen’, overtollige calorieën op in de vorm van triglyceriden, verpakt in grote uniloculaire lipidedruppels. Bovendien scheiden adipocyten een groot aantal factoren af die verschillende aspecten van energiehomeostase reguleren 1,2,3. Adipocyten vormen het grootste deel van het WAT-volume; adipocyten vertegenwoordigen echter slechts minder dan 50% van het totale aantal cellen dat wordt aangetroffen in WAT 4,5. Het niet-adipocytencompartiment van WAT, of stromale-vasculaire fractie (SVF), is vrij heterogeen en bevat vasculaire endotheelcellen, weefsel-residente immuuncellen, fibroblasten en populaties van adipocytenprecursorcellen (APC).
WAT is uitzonderlijk in zijn opmerkelijke vermogen om in omvang uit te breiden naarmate de vraag naar energieopslag toeneemt. Het handhaven van deze weefselplasticiteit is essentieel, aangezien een adequate opslag van lipiden in WAT beschermt tegen schadelijke ectopische lipideafzetting in niet-vetweefsels6. De manier waarop individuele WAT-depots deze expansie ondergaan als reactie op een calorieoverschot is een cruciale bepalende factor voor insulinegevoeligheid in de setting van obesitas7. Pathologische WAT-expansie, waargenomen bij zwaarlijvige personen met metabool syndroom, wordt gekenmerkt door preferentiële expansie van viscerale WAT-depots ten koste van metabolisch gunstig onderhuids vetweefsel. Bovendien wordt insulineresistentie bij obesitas in verband gebracht met pathologische remodellering van WAT. Dit wordt gekenmerkt door hypertrofische groei van bestaande adipocyten (toename in omvang), ontoereikende angiogenese, chronische metabole ontsteking, accumulatie van extracellulaire matrixcomponenten (fibrose) en weefselhypoxie 8,9. Deze WAT-fenotypes van obesitas worden geassocieerd met leversteatose en insulineresistentie, vergelijkbaar met wat wordt waargenomen bij de aandoening van lipodystrofie (afwezigheid van functionele WAT). Daarentegen wordt gezonde WAT-expansie waargenomen in de metabolisch gezonde zwaarlijvige populatie en wordt gekenmerkt door preferentiële expansie van beschermende subcutane WAT en depot-expansie door adipocytenhyperplasie10. De rekrutering van nieuwe adipocyten wordt gemedieerd door de novo differentiatie van adipocyten uit adipocytenprecursorcellen (APC’s) (“adipogenese” genoemd). Hyperplasie van adipocyten valt samen met relatief lagere graden van WAT-fibrose en metabole ontsteking 6,11. Een veelheid aan celtypen binnen de WAT-micro-omgeving heeft een directe invloed op de gezondheid en uitbreidbaarheid van WAT bij obesitas12. Als zodanig blijft het definiëren van de functie van de verschillende celtypen die aanwezig zijn in WAT een hoge prioriteit voor het veld.
In het afgelopen decennium zijn verschillende strategieën gebruikt om inheemse APC’s te definiëren en te isoleren van menselijke en muizen WAT SVF13. Dergelijke strategieën isoleren APC’s op basis van de expressie van het celoppervlak van gemeenschappelijke mesenchymale stam-/voorlopercelmarkers met behulp van op antilichamen gebaseerde celscheidingstechnieken. Deze benaderingen omvatten fluorescentie-geactiveerde celsortering (FACS), met behulp van fluorofoor-gelabelde antilichamen, of immunomagnetische parelscheiding (d.w.z. chemisch gemodificeerde antilichamen). Celoppervlakte-eiwitten die het doelwit zijn van de isolatie van APC’s zijn PDGFRα, PDGFRβ, CD34 en SCA-1. Deze benaderingen hebben bijgedragen aan de verrijking van APC’s; Celpopulaties geïsoleerd op basis van deze markers zijn echter vrij heterogeen. Zeer recente single-cell RNA-sequencing (scRNA-seq) studies hebben de moleculaire en functionele heterogeniteit van stromale cellen binnen de geïsoleerde stromale-vasculaire fractie (SVF) van muizen WAT 14,15,16,17 aan het licht gebracht. Op basis van onze eigen scRNA-seq en functionele analyses hebben we functioneel verschillende immuunmodulerende en adipogene PDGFRβ+ perivasculaire celsubpopulaties geïdentificeerd en gekarakteriseerd in het stromale compartiment van intra-abdominaal WAT bij volwassen muizen15. Fibro-inflammatoire precursoren, of FIP’s, vertegenwoordigen een prominente subpopulatie van PDGFRβ+-cellen en kunnen worden geïsoleerd op basis van LY6C-expressie (LY6C+ PDGFRβ+-cellen)15. FIP’s missen adipogene capaciteit, oefenen een sterke pro-inflammatoire reactie uit op verschillende stimuli, produceren collageen en scheiden anti-adipogene factorenaf 15. De pro-inflammatoire en fibrogene activiteit van deze cellen neemt toe in verband met obesitas bij muizen, wat impliceert dat deze cellen reguleren van WAT-remodellering. De LY6C-CD9-PDGFRβ+-subpopulatie vertegenwoordigt adipocytenprecursorcellen (APC’s). Deze APC’s zijn verrijkt door de expressie van Pparg en andere pro-adipogene genen, en differentiëren gemakkelijk tot rijpe adipocyten in vitro en in vivo15. Hier bieden we een gedetailleerd protocol voor de isolatie van deze verschillende celpopulaties uit intra-abdominale WAT-depots van volwassen muizen met behulp van FACS, en immunomagnetische parelscheiding met gebiotinyleerde antilichamen. Dit protocol kan worden gebruikt om functioneel verschillende subpopulaties van vetvoorlopercellen te isoleren van meerdere intra-abdominale WAT-depots van volwassen mannelijke en vrouwelijke muizen15. Het afzonderlijk bestuderen van deze functioneel verschillende celpopulaties kan een grote bijdrage leveren aan ons huidige begrip van de moleculaire mechanismen die adipogenese en de remodellering van intra-abdominaal vetweefsel bij gezondheid en ziekte reguleren.
Het onderstaande protocol beschrijft de isolatie van vetvoorlopercellen van muizen epididymale WAT; dezelfde procedure kan echter worden gebruikt om overeenkomstige cellen te isoleren uit de mesenteriale en retroperitoneale WAT-depots van zowel mannelijke als vrouwelijke muizen15. Een gedetailleerd protocol over hoe deze depots bij muizen te identificeren en te isoleren is te vinden in Bagchi et al.18. Dit protocol is geoptimaliseerd voor het gebruik van muizen van 6-8 weken oud. De frequentie en het differentiatievermogen van APC’s kunnen afnemen in verband met veroudering.
De C57BL/6-muizenstam is de meest gebruikte muizenstam in onderzoeken naar door voeding geïnduceerde obesitas. C57BL/6-muizen komen snel aan wanneer ze op een vetrijk dieet (HFD) worden geplaatst en ontwikkelen enkele van de prominente kenmerken van het metabool syndroom geassocieerd met obesitas (bijv. insulineresistentie en hyperlipidemie). Met name WAT-uitbreiding die optreedt in verband met voeding met een vetrijk dieet (HFD) vindt plaats op een depotspecifieke manier 19,20,21,22,23.</su…
The authors have nothing to disclose.
De auteurs zijn Lisa Hansen en Kirsten Vestergaard dankbaar voor hun uitstekende technische assistentie, en P. Scherer, N. Joffin en C. Crewe voor het kritisch lezen van het manuscript. De auteurs bedanken de UTSW Flow Cytometry Core voor uitstekende begeleiding en hulp bij het ontwikkelen van de hier beschreven protocollen. R.K.G. wordt ondersteund door NIH NIDDK R01 DK104789, NIDDK RC2 DK118620 en NIDDK R01 DK119163. J.P. wordt gesponsord door een pre-doctorale prijs van het Innovation Fund Denmark.
Mechanical Tissue Preparation and SVF Isolation | |||
40 and 100 µm cell strainers | Fisher Scientific | 352340/352360 | |
1X Phosphate buffered saline (PBS) | Fisher Scientific | 21040CV | |
5ml polypropylene tubes | Fisher Scientific | 352053 | |
Digestion Buffer (for 10mL) | |||
10 ml HBSS | Sigma | H8264 | |
10 mg Collagenase D (1 mg/ml final cc.) | Roche | 11088882001 | |
0.15 g BSA (1.5 % final cc.) | Fisher Scientific | BP1605-100 | |
Immunomagnetic separation of APCs and non-APCs | |||
5X MojoSort Buffer (MS buffer) | BioLegend | 480017 | |
5 ml MojoSort Magnet (MS magnet) | BioLegend | 480019 | |
100 µL MojoSort Streptavidin Nanobeads | BioLegend | 480015 | |
Purity Check and FACS | |||
10X Red Blood Cell Lysis Buffer | eBioscience | 00-4300-54 | |
Fc block (Mouse CD16/CD32) | eBioscience | 553141 | |
Antibodies | |||
Biotin CD45 | BioLegend | 103103 | Concentration: ≤ 0.25 µg per 10^6 cells Species: Mouse Clone: 30-F11 |
Biotin CD31 | BioLegend | 102503 | Concentration: ≤ 0.25 µg per 10^6 cells Species: Mouse Clone: MEC13.3 |
Biotin CD9 | BioLegend | 124803 | Concentration: ≤ 0.25 µg per 10^6 cells Species: Mouse Clone: MZ3 |
Biotin LY6C | BioLegend | 128003 | Concentration: ≤ 0.25 µg per 10^6 cells Species: Mouse Clone: HK1.4 |
CD31-PerCP/Cy5.5 | BioLegend | 102419 | Concentration: Dilution 1:400 Species: Mouse Clone: 390 |
CD45-PerCP/Cy5.5 | BioLegend | 103131 | Concentration: Dilution 1:400 Species: Mouse Clone: 30-F11 |
CD140b PDGFRβ-PE | BioLegend | 136006 | Concentration: Dilution 1:50 Species: Mouse Clone: APB5 |
LY6C-APC | BioLegend | 128016 | Concentration: Dilution 1:400 Species: Mouse Clone: HK1.4 |
CD9-FITC | BioLegend | 124808 | Concentration: Dilution 1:400 Species: Mouse Clone: MZ3 |
Cell Culture and Differentiation | |||
Gonadal APC Culture media (for 500mL) | |||
288 mL DMEM with 1 g/L glucose | Corning | 10-014-CV | |
192 mL MCDB201 | Sigma | M6770 | |
10 mL Fetal bovine serum (FBS)** lot#14E024 | Sigma | 12303C | |
5 mL 100% ITS premix | BD Bioscience | 354352 | |
5 mL 10 mM L-ascorbic acid-2-2phosphate | Sigma | A8960-5G | |
50 µL 100 g/ml FGF-basic | R&D systems | 3139-FB-025/CF | |
5 mL Pen/Strep | Corning | 30-001-CI | |
500 µL Gentamycin | Gibco | 15750-060 | |
**NOTE: The adipogenic capacity of primary APCs can vary from lot to lot of commercial FBS. Multiple lots/sources of FBS should be tested. |