Summary

النيسرية السحائية عدوى الخلايا البطانية الدماغية المشتقة من الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات

Published: July 14, 2020
doi:

Summary

يسلط البروتوكول الموصوف هنا الضوء على الخطوات الرئيسية في التمييز بين الخلايا البطانية الشبيهة بالدماغ المشتقة من الخلايا الجذعية متعددة القدرات ، وإعداد النيسرية السحائية للعدوى ، وجمع العينات للتحليلات الجزيئية الأخرى.

Abstract

التهاب السحايا بالمكورات السحائية هو عدوى تهدد الحياة تحدث عندما تتمكن النيسرية السحائية (المكورات السحائية ، نانومتر) من الوصول إلى الجهاز العصبي المركزي (CNS) عن طريق اختراق الخلايا البطانية الدماغية عالية التخصص (BECs). نظرا لأن Nm هو ممرض خاص بالإنسان ، فإن عدم وجود أنظمة نموذجية قوية في الجسم الحي يجعل دراسة التفاعلات بين المضيف والممرض بين Nm و BECs أمرا صعبا ويؤسس الحاجة إلى نموذج قائم على الإنسان يحاكي BECs الأصلية. تمتلك BECs خصائص حاجز أكثر إحكاما عند مقارنتها بالخلايا البطانية المحيطية التي تتميز بتقاطعات ضيقة معقدة ومقاومة كهربائية مرتفعة عبر البطانة (TEER). ومع ذلك ، فإن العديد من النماذج في المختبر ، مثل BECs الأولية و BECs الخالدة ، إما تفتقر أو تفقد خصائصها الحاجزة بسرعة بعد إزالتها من البيئة المكروية العصبية الأصلية. طورت التطورات الحديثة في تقنيات الخلايا الجذعية البشرية طرقا لاشتقاق الخلايا البطانية الشبيهة بالدماغ من الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات (iPSCs) التي تعمل على تحسين BECs الظاهرية عند مقارنتها بالنماذج البشرية الأخرى في المختبر . إن استخدام BECs المشتقة من iPSC (iPSC-BECs) لنمذجة تفاعل Nm-BEC له فائدة في استخدام الخلايا البشرية التي تمتلك خصائص حاجز BEC ، ويمكن استخدامه لفحص تدمير الحاجز ، والتنشيط المناعي الفطري ، والتفاعل البكتيري. نوضح هنا كيفية اشتقاق iPSC-BECs من iPSCs بالإضافة إلى التحضير البكتيري والعدوى وجمع العينات للتحليل.

Introduction

الحاجز الدموي الدماغي (BBB) ، وحاجز الدم السحائي CSF (mBCSFB) عبارة عن حواجز خلوية ضيقة للغاية تفصل الدورة الدموية عن الجهاز العصبي المركزي (CNS) وتتكون بشكل أساسي من خلايا بطانة الدماغ عالية التخصص (BECs)1,2. معا ، تحافظ BECs على توازن الدماغ المناسب من خلال تنظيم العناصر الغذائية ومنتجات النفايات داخل وخارج الدماغ ، مع استبعاد العديد من السموم والأدوية ومسببات الأمراض 1,2. يحدث التهاب السحايا الجرثومي عندما تكون البكتيريا المنقولة بالدم قادرة على التفاعل مع الحاجز الذي تشكله BECs واختراقه وتسبب الالتهاب. النيسرية السحائية (Nm، المكورات السحائية) هي بكتيريا سالبة الجرام تستعمر الأنفية من 10-40٪ من الأفراد الأصحاء، ولكن في بعض الحالات يمكن أن تسبب مرضا جهازيا خطيرا3. في الأفراد المصابين ، يمكن أن يتمكن Nm من الوصول إلى مجرى الدم حيث يمكن أن يسبب فرفرية خاطفة وكذلك اختراق BECs للوصول إلى الجهاز العصبي المركزي مما يسبب التهاب السحايا3. Nm هو السبب الرئيسي لالتهاب السحايا الجرثومي في جميع أنحاء العالم ، وعلى الرغم من جهود التطعيم ، لا يزال السبب الرئيسي لالتهاب السحايا4. التدخل الطبي الحديث ، مثل العلاج بالمضادات الحيوية ، جعل هذه الظروف قابلة للبقاء على قيد الحياة ، ولكن المصابين بالتهاب السحايا غالبا ما يتركون مع تلف عصبي دائم 5,6.

حددت الدراسات السابقة العوامل البكتيرية وإشارات المضيف التي تساهم في تفاعلات Nm-BEC7،8،9،10،11. تم إجراء الالتصاقات والغزوات المحددة مثل بروتين العتامة Opc ، والنوع الرابع من البيلي ، بالإضافة إلى مستقبلات مثل CD147 ، على نماذج BEC المختلفة في المختبر ، ولكن هذه النماذج تفتقر إلى العديد من خصائص BBB المحددة7،9،11،12. لا يزال الفهم الكامل لتفاعلات Nm-BEC بعيد المنال ويرجع ذلك جزئيا إلى عدم القدرة على استخدام النماذج في الجسم الحي ، وحماية التطعيم غير الكاملة ، ونقص نماذج BEC البشرية القوية في المختبر.

كانت نمذجة hBECs في المختبر صعبة بسبب الخصائص الفريدة ل BECs. بالمقارنة مع الخلايا البطانية المحيطية ، تحتوي BECs على عدد من الأنماط الظاهرية التي تعزز خصائص حاجزها مثل المقاومة الكهربائية العالية عبر البطانية (TEER) بسبب التقاطعات الضيقةالمعقدة 12. بمجرد إزالتها من البيئة المكروية للدماغ ، تفقد BECs بسرعة خصائصها الحاجزة التي تحد من فائدة النماذج الأولية أو الخالدة في المختبر التي تشكل فقط حاجزا ضعيفا12,13. إن الجمع بين الخصوصية البشرية للعدوى ب Nm ، وعدم وجود نماذج قوية في الجسم الحي ، والتحديات التي تواجه نمذجة BECs البشرية في المختبر يخلق حاجة إلى نماذج أفضل لفهم التفاعل المعقد بين المضيف والممرض بين Nm و BECs. في الآونة الأخيرة ، باستخدام تقنيات الخلايا الجذعية متعددة القدرات (iPSC) النموذجية التي يسببها الإنسان ، تم اشتقاق الخلايا الشبيهة ب BEC من iPSCs التي تحاكي بشكل أفضل BECs في الجسم الحي12،13،14،15. iPSC-BECs من أصل بشري ، وقابلة للتطوير بسهولة ، وتمتلك الأنماط الظاهرية المتوقعة ل BEC مقارنة بنظيراتها الأولية أو الخالدة12،13،14،15. بالإضافة إلى ذلك ، أثبتنا نحن وآخرون أن iPSC-BECs مفيدة لنمذجة الأمراض المختلفة للجهاز العصبي المركزي مثل التفاعل بين المضيف والممرض ، ومرض هنتنغتون ، ونقص MCT8 الذي يسبب متلازمة آلان هورندون دادلي16،17،18،19،20،21. نوضح هنا كيفية اشتقاق iPSC-BECs من مصادر iPSC المتجددة وإصابة iPSC-BECs ب Nm مما يؤدي إلى تنشيط الاستجابة المناعية الفطرية. نعتقد أن هذا النموذج مفيد لاستجواب التفاعل بين المضيف ومسبب المرض الذي لا يمكن تلخيصه في نماذج أخرى في المختبر ، وهو مفيد بشكل خاص عند فحص التفاعلات مع مسببات الأمراض البشرية المحددة مثل Nm.

Protocol

ملاحظة: تم تكييف جميع وسائل الإعلام / تحضير الكاشف ، وصيانة الخلايا الجذعية ، وخطوات التمايز من Stebbins et al.22. 1. إعداد المواد اللازمة لثقافة iPSC وتمايز BEC. طلاء مصفوفة من البلاستيك زراعة الأنسجة (TC) لثقافة IMR90-4 iPSC هلام مصفوفة الغشاء القاعدي القسمة (على سبيل ا?…

Representative Results

البروتوكول الموصوف هنا مقتبس من Stebbins et al. ويسلط الضوء على عملية التمييز بين iPSCs إلى خلايا بطانية تشبه الدماغ تمتلك خصائص BBB ، وكيفية استخدام هذا النموذج لدراسات العدوى باستخدام iPSC-BECs مع Nm19,22. وعند تمييز المستضدات ثنائية السلسلة ونقاط الضعف والإحصاء، عند تميي…

Discussion

واجهت نمذجة BECs و BBB تحديات ، حيث تميل BECs البشرية الأولية والخالدة ، في المختبر ، إلى الافتقار إلى الأنماط الظاهرية القوية للحواجز. سمح ظهور تقنيات الخلايا الجذعية البشرية بتوليد خلايا شبيهة ب BEC مشتقة من iPSC والتي تحتفظ بالأنماط الظاهرية BBB المميزة المتوقعة مثل العلامات البطانية ، وتعب…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

يتم دعم L.M.E. من خلال برنامج التدريب البحثي DFG GRK2157 بعنوان “نماذج الأنسجة ثلاثية الأبعاد لدراسة الالتهابات الميكروبية بواسطة مسببات الأمراض البشرية” الممنوحة ل A. S-U. يتم دعم BJK من خلال زمالة ما بعد الدكتوراه من قبل مؤسسة Alexander von Humboldt. بالإضافة إلى ذلك ، نعترف ب Lena Wolter لمساعدتها الفنية في إنشاء iPSC-BECs في الثقافة.

Materials

Accutase (1x) Sigma A6964 Enzymatic cell dissociation reagent
Acetic acid Sigma A6283
All-trans retinoic acid (RA) Sigma R2625
Anti-CD31 (PECAM-1) Thermo Scientific (Labvision) RB-10333
Anti-Claudin-5 Invitrogen 4C3C2
Anti-Glut-1 Thermo Scientific (Labvision) SPM498 (MA5-11315)
Anti-Occludin Invitrogen 33-1500
Anti-VE-cadherin Santa Cruz sc-52751
Anti-ZO-1 Invitrogen 33-9100
Bacto Proteose Peptone BD 211684
b-Mercaptoethanol Merck (Sigma-Aldrich) 805740
Cell culture plates and flasks Sarstedt
Centrifuge (Heraeus Megafuge 1.0R) Thermo Scientific
Class II biosafety cabinet Nuaire NU-437-400E
CO2 Incubator (DHD Autoflow CO2 Air-Jacketed Incubator) Nuaire
Collagen IV Sigma C5533
Columbia ager + 5 % sheep blood Biomerieux 43049
Costar Transwell polyester filters (12- or 24-well) Corning 3460, 3470
D(+)-Glucose Merck (Sigma-Aldrich) G8270
DAPI Invitrogen D1306
DMEM/F12 Gibco 31330-038
DMSO ROTH A994.1
Dulbecco's phosphate-buffered saline (DPBS) Gibco 21600-069
Epithelial Volt-Ohm Meter (Millicell ERS-2) with STX electrode Merck (Millipore) MERS00002
Fe(NO3)3 ROTH 5632.1
Fibronectin Sigma F1141
Fluoresence microscope (Eclipse Ti) Nikon
Hemacytometer (Neubauer) A. Hartenstein ZK06
Human basic fibroblast growth factor (bFGF) PeproTech 100-18B
Human Endothelial Serum Free Medium (hESFM) Gibco 11111-044
Inverted microscope (Wilovert) Hund (Will Wetzlar)
iPS(IMR90)-4 cells WiCell
Kellogg's supplement To prepare 110 ml of Kellogg's supplement, prepare 100 ml of 4 g/ml glucose, 0.1 g/ml glutamine, and 0.2 mg/ml thiamine pyrophosphate and 10 ml of 5 mg/ml Fe(NO3)3 and combine the solutions. Filter sterilize and store aliquoted at -20 °C.
Knockout serum replacement (KOSR) Gibco 10828-028
L-glutamine (GlutaMAX) Invitrogen 35050-038
LunaScript RT SuperMix Kit NEB E3010L cDNA synthesis kit
Matrigel Matrix Corning 354230
Methanol ROTH 4627.5
MgCl2 ROTH KK36.1
Micropipettes (Research Plus) Eppendorf
NaHCO3 ROTH 6329
Nonessential amino acids (NEAA) Gibco 11140-035
NucleoSpin RNA isolation kit Machery-Nagel 740955 RNA isolation kit
Pipette boy (Accu-Jet Pro) Brand
Platelet poor plasma-derived serum, bovine (PDS) Fisher 50-443-029
PowerUp SYBR Green Master Mix Applied Biosystems A25742 qPCR master mix
qPCR film (MicroAmp Optical Adhesive Film) Applied Biosystems 4211971
qPCR plates (MicroAmp Fast 96-well) Applied Biosystems 4346907
ROCK inhibitor, Y27632 dihydrochloride Tocris 1254
RT-PCR thermo cycler (StepOnePlus) Applied Biosystems 4376600
Serological pipettes Sarstedt
StemFlex basal medium + 50x StemFlex supplement Gibco A3349401 Stem-cell maintenance medium
Swinging Bucket Rotor (Heraeus #2704) Thermo Scientific
Thiamine pyrophosphate Sigma C8754-5G
Trypan Blue Solution, 0.4% Gibco 15250061
Versene Gibco 15040-033 Non-enzymatic cell dissociation reagent (EDTA)

References

  1. Rua, R., McGavern, D. B. Advances in Meningeal Immunity. Trends in Molecular Medicine. 24 (6), 542-559 (2018).
  2. Abbott, N. J., Patabendige, A. A. K., Dolman, D. E. M., Yusof, S. R., Begley, D. J. Structure and function of the blood-brain barrier. Neurobiology of Disease. 37 (1), 13-25 (2010).
  3. Rouphael, N. G., Stephens, D. S. Neisseria meningitidis: Biology, microbiology, and epidemiology. Methods in Molecular Biology. , (2012).
  4. Stephens, D. S., Greenwood, B., Brandtzaeg, P. Epidemic meningitis, meningococcaemia, and Neisseria meningitidis. Lancet. 369 (9580), 2196-2210 (2007).
  5. Le Guennec, L., Coureuil, M., Nassif, X., Bourdoulous, S. Strategies used by bacterial pathogens to cross the blood-brain barrier. Cellular Microbiology. , (2020).
  6. Doran, K. S., et al. Host-pathogen interactions in bacterial meningitis. Acta Neuropathologica. 131 (2), 185-209 (2016).
  7. Cunha, C. S. E., Griffiths, N. J., Virji, M. Neisseria meningitidis opc invasin binds to the sulphated tyrosines of activated vitronectin to attach to and invade human brain endothelial cells. PLoS Pathogens. , (2010).
  8. Coureuil, M., et al. Meningococcus hijacks a β2-adrenoceptor/β-arrestin pathway to cross brain microvasculature endothelium. Cell. 143 (7), 1149-1160 (2010).
  9. Bernard, S. C., et al. Pathogenic Neisseria meningitidis utilizes CD147 for vascular colonization. Nature Medicine. 20 (7), 725-731 (2014).
  10. Slanina, H., Hebling, S., Hauck, C. R., Schubert-Unkmeir, A. Cell invasion by neisseria meningitidis requires a functional interplay between the focal adhesion kinase, Src and cortactin. PLoS ONE. 7 (6), (2012).
  11. Unkmeir, A., et al. Fibronectin mediates Opc-dependent internalization of Neisseria meningitidis in human brain microvascular endothelial cells. Molecular Microbiology. 46 (4), 933-946 (2002).
  12. Helms, H. C., et al. In vitro models of the blood-brain barrier: An overview of commonly used brain endothelial cell culture models and guidelines for their use. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. , (2015).
  13. Lippmann, E. S., et al. Derivation of Blood-Brain Barrier Endothelial Cells from Human Pluripotent Stem Cells. Nature Biotechnology. 30 (8), 783-791 (2012).
  14. Lippmann, E. S., Al-Ahmad, A., Azarin, S. M., Palecek, S. P., Shusta, E. V. A retinoic acid-enhanced, multicellular human blood-brain barrier model derived from stem cell sources. Scientific Reports. 4, 4160 (2014).
  15. Hollmann, E. K., Bailey, A. K., Potharazu, A. V., Neely, M. D., Bowman, A. B., Lippmann, E. S. Accelerated differentiation of human induced pluripotent stem cells to blood-brain barrier endothelial cells. Fluids and Barriers of the CNS. , (2017).
  16. Kim, B. J., et al. Modeling Group B Streptococcus and Blood-Brain Barrier Interaction by Using Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Brain Endothelial Cells. mSphere. , (2017).
  17. Kim, B. J., et al. Streptococcus agalactiae disrupts P-glycoprotein function in brain endothelial cells. Fluids and Barriers of the CNS. 16 (1), 26 (2019).
  18. Kim, B. J., Shusta, E. V., Doran, K. S. Past and Current Perspectives in Modeling Bacteria and Blood–Brain Barrier Interactions. Frontiers in Microbiology. , (2019).
  19. Martins Gomes, S. F., et al. Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Brain Endothelial Cells as a Cellular Model to Study Neisseria meningitidis Infection. Frontiers in Microbiology. , (2019).
  20. Vatine, G. D., et al. Modeling Psychomotor Retardation using iPSCs from MCT8-Deficient Patients Indicates a Prominent Role for the Blood-Brain Barrier. Cell Stem Cell. , (2016).
  21. Lim, R. G., et al. Huntington’s Disease iPSC-Derived Brain Microvascular Endothelial Cells Reveal WNT-Mediated Angiogenic and Blood-Brain Barrier Deficits. Cell Reports. 19 (7), 1365-1377 (2017).
  22. Stebbins, M. J., Wilson, H. K., Canfield, S. G., Qian, T., Palecek, S. P., Shusta, E. V. Differentiation and characterization of human pluripotent stem cell-derived brain microvascular endothelial cells. Methods. 101, 93-102 (2016).
  23. Neal, E. H., et al. A Simplified, Fully Defined Differentiation Scheme for Producing Blood-Brain Barrier Endothelial Cells from Human iPSCs. Stem Cell Reports. 12 (6), 1380-1388 (2019).
  24. Wilson, H. K., Canfield, S. G., Hjortness, M. K., Palecek, S. P., Shusta, E. V. Exploring the effects of cell seeding density on the differentiation of human pluripotent stem cells to brain microvascular endothelial cells. Fluids and Barriers of the CNS. , (2015).
  25. Wilson, H. K., Faubion, M. G., Hjortness, M. K., Palecek, S. P., Shusta, E. V. Cryopreservation of brain endothelial cells derived from human induced pluripotent stem cells is enhanced by rho-associated coiled coil-containing kinase inhibition. Tissue Engineering – Part C: Methods. , (2016).
  26. Qian, T., et al. Directed differentiation of human pluripotent stem cells to blood-brain barrier endothelial cells. Science Advances. , (2017).
  27. Sances, S., et al. Human iPSC-Derived Endothelial Cells and Microengineered Organ-Chip Enhance Neuronal Development. Stem Cell Reports. , (2018).
  28. Canfield, S. G., et al. An isogenic blood-brain barrier model comprising brain endothelial cells, astrocytes, and neurons derived from human induced pluripotent stem cells. Journal of Neurochemistry. , (2017).
  29. Kurosawa, H. Application of Rho-associated protein kinase (ROCK) inhibitor to human pluripotent stem cells. Journal of Bioscience and Bioengineering. , (2012).
  30. Schubert-Unkmeir, A., Sokolova, O., Panzner, U., Eigenthaler, M., Frosch, M. Gene expression pattern in human brain endothelial cells in response to Neisseria meningitidis. Infection and Immunity. 75 (2), 899-914 (2007).
  31. Sokolova, O., et al. Interaction of Neisseria meningitidis with human brain microvascular endothelial cells: Role of MAP- and tyrosine kinases in invasion and inflammatory cytokine release. Cellular Microbiology. 6 (12), 1153-1166 (2004).
  32. Alimonti, J. B., et al. Zika virus crosses an in vitro human blood brain barrier model. Fluids and Barriers of the CNS. , (2018).
  33. Kim, B. J., Schubert-unkmeir, A. In vitro Models for Studying the Interaction of Neisseria meningitidis with Human Brain Endothelial Cells. Neisseria meningitidis: Methods and Protocols, Methods in Molecular Biology. 1969, 135-148 (2019).
  34. Kim, B. J., et al. Bacterial induction of Snail1 contributes to blood-brain barrier disruption. Journal of Clinical Investigation. 125 (6), 2473-2483 (2015).

Play Video

Cite This Article
Endres, L. M., Hathcock, S. F., Schubert-Unkmeir, A., Kim, B. J. Neisseria meningitidis Infection of Induced Pluripotent Stem-Cell Derived Brain Endothelial Cells. J. Vis. Exp. (161), e61400, doi:10.3791/61400 (2020).

View Video