Het hier beschreven protocol belicht de belangrijkste stappen in de differentiërende geïnduceerde pluripotente stamcel-afgeleide hersenachtige endotheelcellen, de voorbereiding van Neisseria meningitidis voor infectie en het verzamelen van monsters voor andere moleculaire analyses.
Meningokokkenmeningitis is een levensbedreigende infectie die optreedt wanneer Neisseria meningitidis (meningokokken, Nm) toegang kan krijgen tot het centrale zenuwstelsel (CZS) door zeer gespecialiseerde endotheelcellen van de hersenen (BEC’s) binnen te dringen. Aangezien Nm een mensspecifieke ziekteverwekker is, maakt het gebrek aan robuuste in vivo modelsystemen de studie van de gastheer-pathogeen interacties tussen Nm en BEC’s een uitdaging en stelt het vast dat er behoefte is aan een op mensen gebaseerd model dat inheemse BEC’s nabootst. BEC’s hebben strakkere barrière-eigenschappen in vergelijking met perifere endotheelcellen die worden gekenmerkt door complexe tight junctions en verhoogde trans-endotheliale elektrische weerstand (TEER). Veel in vitro modellen, zoals primaire BEC’s en onsterfelijke BEC’s, missen of verliezen echter snel hun barrière-eigenschappen na verwijdering uit de oorspronkelijke neurale micro-omgeving. Recente ontwikkelingen in menselijke stamceltechnologieën hebben methoden ontwikkeld voor het afleiden van hersenachtige endotheelcellen uit geïnduceerde pluripotente stamcellen (iPSC’s) die BEC’s beter fenokopiëren in vergelijking met andere in vitro menselijke modellen. Het gebruik van iPSC-afgeleide BEC’s (iPSC-BEC’s) om Nm-BEC-interactie te modelleren, heeft het voordeel dat menselijke cellen worden gebruikt die BEC-barrière-eigenschappen bezitten, en kan worden gebruikt om barrièrevernietiging, aangeboren immuunactivering en bacteriële interactie te onderzoeken. Hier laten we zien hoe iPSC-BEC’s kunnen worden afgeleid uit iPSC’s, naast bacteriële voorbereiding, infectie en monsterverzameling voor analyse.
De bloed-hersenbarrière (BBB) en de meningeale bloed-CSF-barrière (mBCSFB) zijn extreem strakke cellulaire barrières die de bloedsomloop scheiden van het centrale zenuwstelsel (CZS) en bestaan voornamelijk uit zeer gespecialiseerde hersenendotheelcellen (BEC’s)1,2. Samen handhaven BEC’s een goede hersenhomeostase door voedingsstoffen en afvalproducten in en uit de hersenen te reguleren, terwijl veel gifstoffen, medicijnen en ziekteverwekkers wordenuitgesloten1,2. Bacteriële meningitis treedt op wanneer door bloed overgedragen bacteriën in staat zijn om te interageren met en door de barrière te dringen die wordt gevormd door BEC’s en ontstekingen te veroorzaken. Neisseria meningitidis (Nm, meningokokken) is een Gram-negatieve bacterie die de neusdarm van 10-40% van de gezonde personen koloniseert, maar in sommige gevallen ernstige systemische ziekten kanveroorzaken3. Bij getroffen personen kan Nm toegang krijgen tot de bloedbaan, waar het purpura fulminans kan veroorzaken en BEC’s kan binnendringen en toegang kan krijgen tot het CZS enmeningitis kan veroorzaken. Nm is wereldwijd een belangrijke oorzaak van bacteriële meningitis en ondanks vaccinatie-inspanningen is het nog steeds een primaire oorzaak van meningitis4. Moderne medische interventies, zoals antibioticabehandeling, hebben deze aandoeningen overleefbaar gemaakt, maar degenen die getroffen zijn door meningitis blijven vaak achter met permanente neurologische schade 5,6.
Eerdere studies hebben bacteriële factoren en gastheersignalering geïdentificeerd die bijdragen aan Nm-BEC-interacties 7,8,9,10,11. De geïdentificeerde adhesinen en invasinen zoals het opaciteitseiwit Opc en type-IV pili, evenals receptoren zoals CD147, zijn in vitro uitgevoerd op verschillende BEC-modellen, maar deze modellen missen veel bepalende BBB-eigenschappen 7,9,11,12. Volledig begrip van Nm-BEC-interacties blijft ongrijpbaar, deels vanwege het onvermogen om in vivo modellen te gebruiken, onvolledige vaccinatiebescherming en het ontbreken van robuuste menselijke BEC-modellen in vitro.
Het modelleren van hBEC’s in vitro was een uitdaging vanwege de unieke eigenschappen van BEC’s. Vergeleken met perifere endotheelcellen hebben BEC’s een aantal fenotypes die hun barrière-eigenschappen versterken, zoals een hoge trans-endotheliale elektrische weerstand (TEER) als gevolg van complexe tight junctions12. Eenmaal verwijderd uit de micro-omgeving van de hersenen, verliezen BEC’s snel hun barrière-eigenschappen, waardoor het nut van primaire of onsterfelijke in-vitromodellen die slechts een zwakke barrière vormen, wordt beperkt12,13. De combinatie van de menselijke specificiteit van Nm-infecties, het gebrek aan robuuste in vivo modellen en uitdagingen bij het modelleren van menselijke BEC’s in vitro creëert een behoefte aan betere modellen om de complexe gastheer-pathogeen interactie tussen Nm en BEC’s te begrijpen. Onlangs zijn met behulp van modeltechnologieën voor menselijke geïnduceerde pluripotente stamcellen (iPSC) BEC-achtige cellen afgeleid van iPSC’s die BEC’s beter nabootsen in vivo12,13,14,15. iPSC-BEC’s zijn van menselijke oorsprong, gemakkelijk schaalbaar en bezitten verwachte BEC-fenotypes in vergelijking met hun primaire of onsterfelijke tegenhangers12,13,14,15. Bovendien hebben wij en anderen aangetoond dat iPSC-BEC’s nuttig zijn voor het modelleren van verschillende ziekten van het CZS, zoals gastheer-pathogeen interactie, de ziekte van Huntington en MCT8-deficiëntie die het Allan-Hurndon-Dudley-syndroom veroorzaakt 16,17,18,19,20,21. Hier demonstreren we hoe iPSC-BEC’s kunnen worden afgeleid uit hernieuwbare iPSC-bronnen en de infectie van iPSC-BEC’s met Nm die leidt tot activering van de aangeboren immuunrespons. Wij zijn van mening dat dit model nuttig is om gastheer-pathogeen interactie te ondervragen die niet kan worden gerecapituleerd in andere in vitro modellen en vooral nuttig is bij het onderzoeken van interacties met mensspecifieke pathogenen zoals Nm.
Het modelleren van BEC’s en de BBB heeft uitdagingen gekend, aangezien primaire en onsterfelijke menselijke BEC’s, in vitro, de neiging hebben om robuuste barrièrefenotypes te missen. De komst van menselijke stamceltechnologieën heeft het mogelijk gemaakt om van iPSC afgeleide BEC-achtige cellen te genereren die de verwachte kenmerkende BBB-fenotypes behouden, zoals endotheelmarkers, tight junction-expressie, barrière-eigenschappen, respons op andere CZS-celtypen en functionele effluxtransporters 12,13,14,15,…
The authors have nothing to disclose.
L.M.E. wordt ondersteund door het DFG-onderzoekstrainingsprogramma GRK2157 getiteld “3D Tissue Models for Studying Microbial Infections by Human Pathogens”, toegekend aan A.S-U. B.J.K. wordt ondersteund door een postdoctoraal fellowship van de Alexander von Humboldt Stichting. Daarnaast erkennen we Lena Wolter voor haar technische assistentie bij het genereren van de iPSC-BEC’s in cultuur.
Accutase (1x) | Sigma | A6964 | Enzymatic cell dissociation reagent |
Acetic acid | Sigma | A6283 | |
All-trans retinoic acid (RA) | Sigma | R2625 | |
Anti-CD31 (PECAM-1) | Thermo Scientific (Labvision) | RB-10333 | |
Anti-Claudin-5 | Invitrogen | 4C3C2 | |
Anti-Glut-1 | Thermo Scientific (Labvision) | SPM498 (MA5-11315) | |
Anti-Occludin | Invitrogen | 33-1500 | |
Anti-VE-cadherin | Santa Cruz | sc-52751 | |
Anti-ZO-1 | Invitrogen | 33-9100 | |
Bacto Proteose Peptone | BD | 211684 | |
b-Mercaptoethanol | Merck (Sigma-Aldrich) | 805740 | |
Cell culture plates and flasks | Sarstedt | ||
Centrifuge (Heraeus Megafuge 1.0R) | Thermo Scientific | ||
Class II biosafety cabinet | Nuaire | NU-437-400E | |
CO2 Incubator (DHD Autoflow CO2 Air-Jacketed Incubator) | Nuaire | ||
Collagen IV | Sigma | C5533 | |
Columbia ager + 5 % sheep blood | Biomerieux | 43049 | |
Costar Transwell polyester filters (12- or 24-well) | Corning | 3460, 3470 | |
D(+)-Glucose | Merck (Sigma-Aldrich) | G8270 | |
DAPI | Invitrogen | D1306 | |
DMEM/F12 | Gibco | 31330-038 | |
DMSO | ROTH | A994.1 | |
Dulbecco's phosphate-buffered saline (DPBS) | Gibco | 21600-069 | |
Epithelial Volt-Ohm Meter (Millicell ERS-2) with STX electrode | Merck (Millipore) | MERS00002 | |
Fe(NO3)3 | ROTH | 5632.1 | |
Fibronectin | Sigma | F1141 | |
Fluoresence microscope (Eclipse Ti) | Nikon | ||
Hemacytometer (Neubauer) | A. Hartenstein | ZK06 | |
Human basic fibroblast growth factor (bFGF) | PeproTech | 100-18B | |
Human Endothelial Serum Free Medium (hESFM) | Gibco | 11111-044 | |
Inverted microscope (Wilovert) | Hund (Will Wetzlar) | ||
iPS(IMR90)-4 cells | WiCell | ||
Kellogg's supplement | To prepare 110 ml of Kellogg's supplement, prepare 100 ml of 4 g/ml glucose, 0.1 g/ml glutamine, and 0.2 mg/ml thiamine pyrophosphate and 10 ml of 5 mg/ml Fe(NO3)3 and combine the solutions. Filter sterilize and store aliquoted at -20 °C. | ||
Knockout serum replacement (KOSR) | Gibco | 10828-028 | |
L-glutamine (GlutaMAX) | Invitrogen | 35050-038 | |
LunaScript RT SuperMix Kit | NEB | E3010L | cDNA synthesis kit |
Matrigel Matrix | Corning | 354230 | |
Methanol | ROTH | 4627.5 | |
MgCl2 | ROTH | KK36.1 | |
Micropipettes (Research Plus) | Eppendorf | ||
NaHCO3 | ROTH | 6329 | |
Nonessential amino acids (NEAA) | Gibco | 11140-035 | |
NucleoSpin RNA isolation kit | Machery-Nagel | 740955 | RNA isolation kit |
Pipette boy (Accu-Jet Pro) | Brand | ||
Platelet poor plasma-derived serum, bovine (PDS) | Fisher | 50-443-029 | |
PowerUp SYBR Green Master Mix | Applied Biosystems | A25742 | qPCR master mix |
qPCR film (MicroAmp Optical Adhesive Film) | Applied Biosystems | 4211971 | |
qPCR plates (MicroAmp Fast 96-well) | Applied Biosystems | 4346907 | |
ROCK inhibitor, Y27632 dihydrochloride | Tocris | 1254 | |
RT-PCR thermo cycler (StepOnePlus) | Applied Biosystems | 4376600 | |
Serological pipettes | Sarstedt | ||
StemFlex basal medium + 50x StemFlex supplement | Gibco | A3349401 | Stem-cell maintenance medium |
Swinging Bucket Rotor (Heraeus #2704) | Thermo Scientific | ||
Thiamine pyrophosphate | Sigma | C8754-5G | |
Trypan Blue Solution, 0.4% | Gibco | 15250061 | |
Versene | Gibco | 15040-033 | Non-enzymatic cell dissociation reagent (EDTA) |