Summary

Dubbel direktinsprutning av blod i Cisterna Magna som en modell av Subarachnoid Hemorrhage

Published: August 30, 2020
doi:

Summary

Vi beskrivs i detta protokoll en standardiserad subarachnoid blödning (SAH) mus modell genom en dubbel injektion av autolog helblod i cisterna magna. Den höga graden av standardisering av förfarandet med dubbelinsprutning representerar en medel-till-akut modell av SAH med relativ säkerhet angående dödlighet.

Abstract

Bland stroke, subarachnoid blödning (SAH) på varandra följande till sprängning av en cerebral kranskärlens aneurysm representerar 5-9% men är ansvarig för cirka 30% av den totala stroke-relaterade dödligheten med en viktig sjuklighet i form av neurologiska resultatet. En fördröjd cerebral vasospasm (CVS) kan uppstå oftast i samband med en fördröjd cerebral ischemi. Olika djurmodeller av SAH används nu inklusive endovaskulär perforering och direkt injektion av blod i cisternas storsint eller till och med den prechiasmatiska cisternen, som var och en uppvisar distinkta fördelar och nackdelar. I denna artikel presenteras en standardiserad musmodell av SAH genom dubbel direktinsprutning av beslutsamma volymer av autologt helblod in i cisterna magna. Kortfattat, möss vägdes och sedan bedövas av isofluran inandning. Sedan placerades djuret i ett liggande läge på en uppvärmd filt som upprätthåller en rektaltemperatur på 37 °C och placerade i en stereotaktisk ram med en cervikal böj på ca 30°. Väl på plats placerades spetsen på en avlång glasmikropipette fylld med det homologa kranskärlens blod som tagits från halsartären hos en annan mus i samma ålder och kön (C57Bl/6J) i rät vinkel i kontakt med membranet atlanto-occipital med hjälp av en mikromanipulator. Därefter injicerades 60 μL blod i cisterna magna följt av en 30° nedåtlutning av djuret i 2 minuter. Den andra infusionen av 30 μL blod i cisterna magna utfördes 24 h efter den första. Varje djurs individuella uppföljning görs dagligen (noggrann utvärdering av vikt och välbefinnande). Detta förfarande möjliggör en förutsägbar och mycket reproducerbar fördelning av blod, sannolikt åtföljs av intrakraniell tryck höjd som kan härmas av en motsvarande injektion av en konstgjord cerebral spinal vätska (CSF), och representerar en akut till mild-modell av SAH inducerande låg dödlighet.

Introduction

Subarachnoid blödning (SAH) står för upp till 5% av alla stroke fall och utgör en relativt vanlig patologi med en incidens på 7,2 till 9 patienter per 100.000 per år, med en dödlighet på 20%-60% beroende på studien1,2,3. I den akuta fasen beror dödligheten på blödningens svårighetsgrad, rebleeding, cerebral vasospasm (CVS) och/eller medicinska komplikationer4. I överlevande, tidig hjärnskada (EBI) är associerad med parenchymal förlängning av blödning och abrupt ökning av intrakraniellt tryck, vilket kan resultera i primär cerebral ischemi5 och omedelbar död i cirka 10%-15% av fallen6. Efter den inledande “akut” skede av SAH, prognosen beror på förekomsten av “sekundär” eller fördröjd cerebral ischemi (DCI), detekteras i nästan 40% av patienterna av cerebral datortomografi, och i upp till 80% av patienterna efter magnetisk resonanstomografi (MRT)7,8. Förutom att CVS inträffar mellan 4 till 21 dagar efter aneurysm bristning i en majoritet av SAH patienter, DCI9 kan bero på multifaktoriella diffusa hjärnskador sekundärt till microthrombosis bildning, minskad cerebral perfusion, neuroinflammation, och när spridande depression (CSD)10,11,12,13. Detta påverkar 30% av SAH överlevande och påverkar kognitiva funktioner inklusive visuellt minne, verbalt minne, reaktionstid, och verkställande, visuospatial och språkfunktioner14 försämra det dagliga livet15. Nuvarande standardterapier för att förhindra CVS och/eller de dåliga kognitiva resultaten hos SAH-patienter baseras på blockeringen av Ca2+ signalering och vasokonstriktion med hjälp av Ca2+ kanalhämmare som Nimodipin. Nyare kliniska prövningar inriktning vasoconstriction visade dock dissociation mellan patientens neurologiska resultatet och förebyggande av CVS16, vilket tyder på mer komplexa patofysiologiska mekanismer som deltar i SAH-långsiktiga konsekvenser. Därför finns det ett medicinskt behov av större förståelse för antalet patologiska händelser som åtföljer SAH och utvecklingen av giltiga och standardiserade djurmodeller för att testa ursprungliga terapeutiska interventioner.

Sprängningen av en intrakraniell aneurysm mestadels ansvarig för SAH hos människor är sannolikt svårt att efterlikna i prekliniska djurmodeller. För närvarande kan aneurysm bristning och SAH situationen preliminärt testas genom perforering av den mellersta cerebral artär (endovaskulär punktering modell) som ansvarar för CVS och sensitivomotor dysfunktioner i möss17,18. På grund av bristen på någon möjlig kontroll över blödningsansiglet och diffusion av blod i denna modell, har andra metoder utvecklats hos gnagare för att generera SAH-modeller utan endovaskulär bristning. Mer exakt, de består av direkt administrering av arteriellt blod i det subarachnoid utrymmet genom en enda eller en dubbel injektion i magnaten cisterna19 eller en enda injektion i prechiasmatiska cisternen20. Den största fördelen med dessa musmodeller utan endovaskulär bristning är möjligheten att reproducera sig det kirurgiska ingreppet och kvaliteten och kvantiteten av det injicerade blodprovet. En annan fördel med denna modell framför modellen genom endovaskulär perforering i synnerhet är bevarandet av djurets allmänna välbefinnande. I själva verket är denna operation mindre invasiv och tekniskt mindre utmanande än vad som krävs för att generera en halspulsådervägg bristning. I denna sista modell, djuret måste intuberas och mekaniskt ventileras, medan en monofilament sätts in i den externa halspulsådern, och avancerade i den inre halspulsådern. Detta leder sannolikt till transient ischemi på grund av kärl obstruktion av trådvägen. Följaktligen är den kommorolighet (döende tillstånd, viktig smärta och död) som är associerade med kirurgi mindre viktigt i dubbel injektion modell jämfört med endovaskulära perforering modell. Förutom att den är en mer konsekvent SAH, uppfyller metoden för dubbel direktinsprutning djurskyddet i forskning och testning (minskad tid under anestesi, smärta från vävnadsstörningar vid kirurgi och nöd) och leder till ett minsta totalt antal djur som används för protokollstudien och personalutbildning.

Dessutom möjliggör detta implementering av samma protokoll till transgena möss, vilket leder till en optimerad patologisk förståelse av SAH och möjligheten till jämförande testning av potentiella terapeutiska föreningar. Här presenterar vi en standardiserad mus modell av subarachnoid blödning (SAH) genom en dubbel daglig på varandra följande injektion av autolog kranskärlens blod i cisterna magna i 6-8 veckor gamla manliga C57Bl/6J möss. Den största fördelen med denna modell är kontrollen av blödningsvolymen jämfört med endovaskulär perforeringsmodell, och förstärkande av blödningshändelsen utan en drastisk ökning av intrakraniellt tryck21. Nyligen har den dubbla direktinsprutningen av blod i cisterna magna väl beskrivits på de experimentella och fysiopatologiska frågorna hos möss. Faktum är att vi nyligen visat CVS av stora cerebrala artärer (basilar (BA), mitten (MCA) och främre (ACA) cerebral artärer), cerebrovaskulär fibrin nedfall och cell apoptos från dag 3 (D3) till 10 (D10), cirkulationsfel av paravaskulära cerebrospinalvätska tillsammans med förändrade sensitivomotor och kognitiva funktioner i möss, 10 dagar efter SAH i denna modell22. Således gör det denna modell behärskas, valideras och kännetecknas för kortsiktiga och långvariga händelser efter SAH. Det bör vara idealiskt lämplig för prospektiv identifiering av nya mål och för studier om potenta och effektiva terapeutiska strategier mot SAH-associerade komplikationer.

Protocol

Alla förfaranden utfördes under övervakning av H. Castel i enlighet med den franska etiska kommittén och riktlinjer i Europaparlamentets direktiv 2010/63/EU och Rådet för skydd av djur som används för vetenskapliga ändamål. Detta projekt godkändes av den lokala CENOMEXA och de nationella etikkommittéerna för djurforskning och djurförsök. Manliga C57Bl/6J Rj-möss (Janvier), i åldern 8–12 veckor, inhystes under kontrollerade standard miljöförhållanden: 22 °C ± 1 °C, 12 timmar/12 timmar ljus/mörker…

Representative Results

Experimentell tidslinje, förfarande, uppföljning och dödlighetFigur 1A och figur 1B sammanfatta SAH-modellprotokollet genom dubbel intracisternal injektion av blod. Kortfattat, på den första dagen av SAH induktion (D-1), 60 μL blod som dras tillbaka från en homolog mus eller 60 μL av konstgjorda ryggmärgsvätskan (aCSF) injicerades i cisterna magna i SAH eller sken villkor, respektive. Nästa dag (D0), 30 μL blod som drogs tillbaka…

Discussion

Trots intensiteten i forskningen inom området SAH och utvecklingen av terapeutiska strategier såsom endovaskulära och farmakologiska behandlingsalternativ ökar under de senaste tjugo åren, dödligheten är fortfarande hög inom den första veckan av sjukhusvistelse och når cirka 50% under de följande 6 månaderna24,25. Denna nuvarande prekliniska modell genom daglig dubbel injektion av homologa kranskärlens blod i cisterna magna har erkä…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar PRIMACEN-plattformen (Normandie Rouen-universitetet, Frankrike) för bildutrustning och Arnaud Arabo, Julie Maucotel och Fru Martine Dubois, för djurbostäder och vård. Vi tackar mrs Celeste Nicola för att ha lånat ut sin röst till videofilmningen av protokollet. Detta arbete stöddes av Seinari Normandie mognadsprogram, Fondation AVC under egis av FRM, Normandie Rouen University och Inserm. Normandieregionen och Europeiska unionen (3R-projektet). Europa engagerar sig i Normandie med Europeiska regionala utvecklingsfonden (ERUF).

Materials

absorbable hemostat Ethicon Surgicel
absorbable suturing thread Ethicon Vicryl 5.0
auto-regulated electric blanket Harvard Apparatus 50-7087-F
bluetack for capillary fixation UHU Patafix
electronic balance Denver Instrument MXX-2001
glass capillaries Harvard Apparatus GC150F-15 inner diameter 0.86 mm
outer diameter 1.5 mm
isoflurane vaporizer Phymep V100
micropipette puller Sutter Instrument Company P-97
needle 26 G BD microbalance 300300
non absorbable suturing thread Peters surgical Filapeau 4.0
stereotaxic frame David Kopf instruments Model 902
surgical equipment Kent scientific clamp, microscissors, thin scissors
syringe 20 mL TERUMO Thermofisher 11866071

References

  1. Rincon, F., Rossenwasser, R. H., Dumont, A. The epidemiology of admissions of nontraumatic subarachnoid hemorrhage in the United States. Neurosurgery. 73 (2), 212-222 (2013).
  2. Sandvei, M. S., et al. Incidence and mortality of aneurysmal subarachnoid hemorrhage in two Norwegian cohorts, 1984-2007. Neurology. 77 (20), 1833-1839 (2011).
  3. van Gijn, J., Kerr, R. S., Rinkel, G. J. Subarachnoid haemorrhage. Lancet. 369 (9558), 306-318 (2007).
  4. Solenski, N. J., et al. Medical complications of aneurysmal subarachnoid hemorrhage: a report of the multicenter, cooperative aneurysm study. Participants of the Multicenter Cooperative Aneurysm Study. Critical Care Medicine. 23 (6), 1007-1017 (1995).
  5. Cahill, J., Calvert, J. W., Zhang, J. H. Mechanisms of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 26 (11), 1341-1353 (2006).
  6. Huang, J., van Gelder, J. M. The probability of sudden death from rupture of intracranial aneurysms: a meta-analysis. Neurosurgery. 51 (5), 1101-1107 (2002).
  7. Rabinstein, A. A. Secondary brain injury after aneurysmal subarachnoid haemorrhage: more than vasospasm. Lancet Neurology. 10 (7), 593-595 (2011).
  8. Kivisaari, R. P., et al. MR Imaging After Aneurysmal Subarachnoid Hemorrhage and Surgery: A Long-term Follow-up Study. American Journal of Neuroradiology. 22 (6), 1143-1148 (2001).
  9. Mayberg, M. R., et al. Guidelines for the management of aneurysmal subarachnoid hemorrhage. A statement for healthcare professionals from a special writing group of the Stroke Council, American Heart Association. Stroke. 25 (11), 2315-2328 (1994).
  10. Dankbaar, J. W., et al. Relationship between vasospasm, cerebral perfusion, and delayed cerebral ischemia after aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Neuroradiology. 51 (12), 813-819 (2009).
  11. Sehba, F. A., Hou, J., Pluta, R. M., Zhang, J. H. The importance of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Progress in Neurobiology. 97 (1), 14-37 (2012).
  12. Miller, B. A., Turan, N., et al. Inflammation, vasospasm, and brain injury after subarachnoid hemorrhage. BioMed Res Int. 2014, 384342 (2014).
  13. Dreier, J. P., et al. Delayed ischaemic neurological deficits after subarachnoid haemorrhage are associated with clusters of spreading depolarizations. Brain. 129, 3224-3237 (2006).
  14. Mayer, S., et al. Global and domain-specific cognitive impairment and outcome after subarachnoid hemorrhage. Neurology. 59 (11), 1750-1758 (2002).
  15. Al-Khindi, T., Macdonald, R. L., Schweizer, T. A. Cognitive and functional outcome after aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Stroke. 41 (8), 519-536 (2010).
  16. Macdonald, R. L., et al. Randomized trial of clazosentan in patients with aneurysmal subarachnoid hemorrhage undergoing endovascular coiling. Stroke. 43 (6), 1463-1469 (2012).
  17. Parra, A., et al. Mouse model of subarachnoid hemorrhage associated cerebral vasospasm: methodological analysis. Neurological Research. 24 (5), 510-516 (2002).
  18. Schuller, K., Buhler, D., Plesnila, N. A murine model of subarachnoid hemorrhage. Journal of Visualized Experiments. (81), e50845 (2013).
  19. Lin, C. L., et al. A murine model of subarachnoid hemorrhage-induced cerebral vasospasm. Journal of Neuroscience Methods. 123 (1), 89-97 (2003).
  20. Sabri, M., et al. Anterior circulation mouse model of subarachnoid hemorrhage. Brain Research. 1295, 179-185 (2009).
  21. Leclerc, J. L., et al. A Comparison of Pathophysiology in Humans and Rodent Models of Subarachnoid Hemorrhage. Frontiers in Molecular Neuroscience. 11, 71 (2018).
  22. El Amki, M., et al. Long-Lasting Cerebral Vasospasm, Microthrombosis, Apoptosis and Paravascular Alterations Associated with Neurological Deficits in a Mouse Model of Subarachnoid Hemorrhage. Molecular Neurobiology. 55 (4), 2763-2779 (2018).
  23. Clavier, T., et al. Association between vasoactive peptide urotensin II in plasma and cerebral vasospasm after aneurysmal subarachnoid hemorrhage: a potential therapeutic target. Journal of Neurosurgery. , 1-11 (2018).
  24. Kundra, S., Mahendru, V., Gupta, V., Choudhary, A. K. Principles of neuroanesthesia in aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Journal of Anaesthesiology Clinical Pharmacology. 30 (3), 328-337 (2014).
  25. Schertz, M., et al. Incidence and Mortality of Spontaneous Subarachnoid Hemorrhage in Martinique. PLOS ONE. 11 (5), 0155945 (2016).
  26. Lin, C. -. L., et al. A murine model of subarachnoid hemorrhage-induced cerebral vasospasm. Journal of Neuroscience Methods. 123 (1), 89-97 (2003).
  27. Prunell, G. F., Mathiesen, T., Diemer, N. H., Svendgaard, N. -. A. Experimental subarachnoid hemorrhage: subarachnoid blood volume, mortality rate, neuronal death, cerebral blood flow, and perfusion pressure in three different rat models. Neurosurgery. 52 (1), 165-176 (2003).
  28. Turowski, B., et al. New angiographic measurement tool for analysis of small cerebral vessels: application to a subarachnoid haemorrhage model in the rat. Neuroradiology. 49 (2), 129-137 (2007).
  29. Boyko, M., et al. The neuro-behavioral profile in rats after subarachnoid hemorrhage. Brain Research. 1491, 109-116 (2013).
  30. Muñoz-Sánchez, M. &. #. 1. 9. 3. ;., et al. Urotensinergic system genes in experimental subarachnoid hemorrhage. Medicina Intensiva (English Edition). 41 (8), 468-474 (2017).
  31. Delgado, T., Brismar, J., Svendgaard, N. A. Subarachnoid haemorrhage in the rat: angiography and fluorescence microscopy of the major cerebral arteries. Stroke. 16 (4), 595-602 (1985).
  32. Solomon, R. A., Antunes, J. L., Chen, R., Bland, L., Chien, S. Decrease in cerebral blood flow in rats after experimental subarachnoid hemorrhage: a new animal model. Stroke. 16 (1), 58-64 (1985).
  33. Ram, Z., Sahar, A., Hadani, M. Vasospasm due to massive subarachnoid haemorrhage-a rat model. Acta Neurochirurgica. 110 (3-4), 181-184 (1991).
  34. Glenn, T. C., et al. Subarachnoid hemorrhage induces dynamic changes in regional cerebral metabolism in rats. Journal of Neurotrauma. 19 (4), 449-466 (2002).
  35. Gules, I., Satoh, M., Clower, B. R., Nanda, A., Zhang, J. H. Comparison of three rat models of cerebral vasospasm. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 283 (6), 2551-2559 (2002).
  36. Sabri, M., et al. Mechanisms of microthrombi formation after experimental subarachnoid hemorrhage. 신경과학. 224, 26-37 (2012).
  37. Jeon, H., Ai, J., Sabri, M., Tariq, A., Macdonald, R. Learning deficits after experimental subarachnoid hemorrhage in rats. 신경과학. 169 (4), 1805-1814 (2010).
  38. Silasi, G., Colbourne, F. Long-term assessment of motor and cognitive behaviours in the intraluminal perforation model of subarachnoid hemorrhage in rats. Behavioural Brain Researchearch. 198 (2), 380-387 (2009).
  39. Bederson, J. B., Germano, I. M., Guarino, L. Cortical blood flow and cerebral perfusion pressure in a new noncraniotomy model of subarachnoid hemorrhage in the rat. Stroke. 26 (6), 1086-1092 (1995).
  40. Bederson, J. B., et al. Acute vasoconstriction after subarachnoid hemorrhage. Neurosurgery. 42 (2), 352-362 (1998).
  41. Park, I. -. S., et al. Subarachnoid hemorrhage model in the rat: modification of the endovascular filament model. Journal of Neuroscience Methods. 172 (2), 195-200 (2008).
  42. Vanden Bergh, W., et al. Magnetic resonance imaging in experimental subarachnoid haemorrhage. Acta Neurochirurgica. 147 (9), 977-983 (2005).
  43. Peng, J., et al. LRP1 activation attenuates white matter injury by modulating microglial polarization through Shc1/PI3K/Akt pathway after subarachnoid hemorrhage in rats. Redox Biology. 21, 101121 (2019).
  44. Okada, T., et al. Selective Toll-Like Receptor 4 Antagonists Prevent Acute Blood-Brain Barrier Disruption After Subarachnoid Hemorrhage in Mice. Molecular Neurobiology. 56 (2), 976-985 (2019).
  45. Tiebosch, I. A., et al. Progression of brain lesions in relation to hyperperfusion from subacute to chronic stages after experimental subarachnoid hemorrhage: a multiparametric MRI study. Cerebrovascular Diseases. 36 (3), 167-172 (2013).
  46. Weidauer, S., Vatter, H., Dettmann, E., Seifert, V., Zanella, F. E. Assessment of vasospasm in experimental subarachnoid hemorrhage in rats by selective biplane digital subtraction angiography. Neuroradiology. 48 (3), 176-181 (2006).
  47. Lee, J. Y., Huang, D. L., Keep, R., Sagher, O. Characterization of an improved double hemorrhage rat model for the study of delayed cerebral vasospasm. Journal of Neuroscience Methods. 168 (2), 358-366 (2008).
  48. Cai, J., et al. A novel intravital method to evaluate cerebral vasospasm in rat models of subarachnoid hemorrhage: a study with synchrotron radiation angiography. PloS one. 7 (3), 33366 (2012).
  49. Piepgras, A., Thome, C., Schmiedek, P. Characterization of an anterior circulation rat subarachnoid hemorrhage model. Stroke. 26 (12), 2347-2352 (1995).
  50. Rosenberg, G. A., Mun-Bryce, S., Wesley, M., Kornfeld, M. Collagenase-induced intracerebral hemorrhage in rats. Stroke. 21 (5), 801-807 (1990).
  51. Raslan, F., et al. A modified double injection model of cisterna magna for the study of delayed cerebral vasospasm following subarachnoid hemorrhage in rats. Experimental & Translational Stroke Medicine. 4 (1), 23 (2012).
  52. Cai, J., et al. A novel intravital method to evaluate cerebral vasospasm in rat models of subarachnoid hemorrhage: a study with synchrotron radiation angiography. PLoS One. 7 (3), 33366 (2012).
  53. Lee, J. Y., Sagher, O., Keep, R., Hua, Y., Xi, G. Comparison of experimental rat models of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Neurosurgery. 65 (2), 331-343 (2009).
  54. Guresir, E., et al. The effect of common carotid artery occlusion on delayed brain tissue damage in the rat double subarachnoid hemorrhage model. Acta Neurochir (Wien). 154 (1), 11-19 (2012).
  55. Vatter, H., et al. Time course in the development of cerebral vasospasm after experimental subarachnoid hemorrhage: clinical and neuroradiological assessment of the rat double hemorrhage model. Neurosurgery. 58 (6), 1190-1197 (2006).
  56. Leonardo, C. C., Robbins, S., Doré, S. Translating basic science research to clinical application: models and strategies for intracerebral hemorrhage. Frontiers in Neurology. 3, 85 (2012).
  57. Feiler, S., Friedrich, B., Schöller, K., Thal, S. C., Plesnila, N. Standardized induction of subarachnoid hemorrhage in mice by intracranial pressure monitoring. Journal of Neuroscience Methods. 190 (2), 164-170 (2010).
  58. Westermaier, T., Jauss, A., Eriskat, J., Kunze, E., Roosen, K. Acute vasoconstriction: decrease and recovery of cerebral blood flow after various intensities of experimental subarachnoid hemorrhage in rats. Journal of Neurosurgery. 110 (5), 996-1002 (2009).
  59. van Lieshout, J. H., et al. An introduction to the pathophysiology of aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Neurosurgical Review. 41 (4), 917-930 (2018).
  60. Conzen, C., et al. The Acute Phase of Experimental Subarachnoid Hemorrhage: Intracranial Pressure Dynamics and Their Effect on Cerebral Blood Flow and Autoregulation. Translational Stroke Research. 10 (5), 566-582 (2019).
  61. Connolly, E. S., et al. Guidelines for the management of aneurysmal subarachnoid hemorrhage: a guideline for healthcare professionals from the American Heart Association/american Stroke Association. Stroke. 43 (6), 1711-1737 (2012).

Play Video

Cite This Article
Pedard, M., El Amki, M., Lefevre-Scelles, A., Compère, V., Castel, H. Double Direct Injection of Blood into the Cisterna Magna as a Model of Subarachnoid Hemorrhage. J. Vis. Exp. (162), e61322, doi:10.3791/61322 (2020).

View Video