A imunoprecipitação quantitativa Multiplex (QMI) utiliza citometria de fluxo para detecção sensível de diferenças na abundância de interações proteína-proteína direcionadas entre duas amostras. O QMI pode ser realizado usando uma pequena quantidade de biomaterial, não requer Tags geneticamente projetadas e pode ser adaptado para qualquer rede de interação protéica previamente definida.
Interações proteína-proteína dinâmicas controlam o comportamento celular, da motilidade à replicação do DNA para a transdução do sinal. No entanto, o monitoramento de interações dinâmicas entre múltiplas proteínas em uma rede de interação protéica é tecnicamente difícil. Aqui, apresentamos um protocolo para imunoprecipitação multiplex quantitativa (QMI), que permite a avaliação quantitativa de alterações de dobra em interações protéicas com base em medições de fluorescência relativa de proteínas em complexos compartilhados detectados por expostos Epítopos de superfície (PiSCES). Em QMI, os complexos proteicos de lysates da pilha são Immunoprecipitated em microspheres, e então sondado com um anticorpo etiquetado para uma proteína diferente a fim quantificar a abundância de PiSCES. Os anticorpos da imunoprecipitação são conjugados às regiões espectrais diferentes de magbead, que permite que um citômetro do fluxo diferencie ligações paralelos múltiplos e quantifique simultaneamente a quantidade de anticorpo da ponta de prova associado com cada um. O QMI não necessita de marcação genética e pode ser realizado utilizando um biomaterial mínimo em comparação com outros métodos de imunoprecipitação. O QMI pode ser adaptado para qualquer grupo definido de proteínas interagindo, e até agora tem sido usado para caracterizar redes de sinalização em células T e sinapses neuronais de glutamato. Os resultados conduziram à geração nova da hipótese com aplicações diagnósticas e terapêuticas potenciais. Este protocolo inclui instruções para executar o QMI, desde a seleção inicial do painel de anticorpos até a execução de ensaios e análise de dados. A montagem inicial de um ensaio QMI envolve a triagem de anticorpos para gerar um painel, e empiricamente determinando um tampão de Lise apropriado. A preparação subsequente do reagente inclui anticorpos covalentemente do immunoprecipitação do acoplamento aos magbeads, e anticorpos biotinylating da ponta de prova assim que podem ser etiquetados por um fluorophore streptavidin-conjugado. Para executar o ensaio, o lisado é misturado com magbeads durante a noite, e então os grânulos são divididos e incubados com anticorpos diferentes da ponta de prova, e então uma etiqueta do fluoróforo, e lidos pelo fluxo cytometry. Dois testes estatísticos são realizados para identificar peixes que diferem significativamente entre as condições experimentais, e os resultados são visualizados usando Heatmaps ou diagramas de borda de nó.
As interações proteína-proteína dinâmicas constituem as cascatas de sinalização molecular e as estruturas motile que são a base funcional da maioria de fisiologia celular1. Esses processos são frequentemente representados como vias de sinalização lineares que alternam entre Estados estáveis com base em entradas simples, mas os dados experimentais e de modelagem mostram claramente que funcionam como redes integradas2,3, 4. no caso das proteínas g, diferentes receptores geralmente têm a capacidade de ativar a mesma proteína g, e um único receptor também pode ativar mais de um tipo de proteína g5,6. Para que o número relativamente pequeno de classes de proteína G Module especificamente uma vasta gama de funções celulares, como transmissão sináptica, regulação hormonal e migração celular, as células devem integrar e diferenciar esses sinais4 , 5. evidências mostraram que esta especificidade do sinal, para as proteínas G, bem como outras, é derivada principalmente com base em interações proteína-proteína finamente ajustadas e sua dinâmica temporal1,3, 4. º , 5. º , 6 anos de , 7. porque as redes de sinalização são compostas de complexos proteicos dinâmicos com múltiplas entradas, saídas e loops de feedback, uma única perturbação tem a oportunidade de alterar o equilíbrio homeostático geral da fisiologia de uma célula4 ,7. É agora amplamente acordado que a sinalização deve ser examinada a partir de uma perspectiva de rede, a fim de entender melhor como a integração de múltiplas entradas controla funções celulares discretas na saúde e na doença7,8, 9,10,11,12,13. À luz disto, a imunoprecipitação multiplex quantitativa (QMI) foi desenvolvida para reunir dados quantitativos de média taxa de transferência de mudanças em redes dinâmicas de interação protéica.
QMI é um ensaio anticorpo-baseado em que o lisado da pilha é incubado com um painel de anticorpos da imunoprecipitação que são acoplados covalentemente aos grânulos magnéticos que contêm relações distintas de tinturas fluorescentes. Ter anticorpos específicos acoplados às classes magnéticas distintas do grânulo permite a coimunoprecipitação simultânea de proteínas alvo múltiplas do mesmo lysate. Depois da imunoprecipitação (IP), os grânulos magnéticos são incubados com um segundo, anticorpo da ponta de prova conjugado fluorophore (ou anticorpo biotinylated conjuntamente com o streptavidin conjugado fluorophore). As coassociações entre as proteínas reconhecidas por cada par de anticorpos de anticorpo-sonda IP, ou peixes (proteínas em complexos compartilhados detectados por epítopos de superfície expostos), são então detectadas por citometria de fluxo e podem ser comparadas quantitativamente entre diferentes condições da amostra14. As ilustrações na Figura 1 mostram as etapas envolvidas na execução de um ensaio QMI, incluindo um diagrama de grânulos magnéticos com complexos proteicos imunoprecipitados marcados por anticorpos fluorescentamente conjugados da sonda (Figura 1C).
A sensibilidade do QMI depende da concentração proteica do lisado em relação ao número de grânulos magnéticos utilizados para a imunoprecipitação, e alcançar uma resolução para detectar 10% de alterações de dobra requer apenas uma pequena quantidade de material de partida em comparação com outros métodos de co-IP14,15. Por exemplo, a quantidade de material de partida usada em QMI é similar àquela exigida para um ensaio enzima-lig ImmunoSorbent do sanduíche (ELISA), mas as interações múltiplas são detectadas em um único ensaio de QMI. Os ensaios de QMI que usam 20 IPs e 20 alvos da ponta de prova foram executados usando 1-5 x 105 pilhas de T preliminares isoladas de uma biópsia da pele de 4 milímetros, de preparações synaptosomal P2 de uma seção coronal de 3 milímetros do córtice pré-frontal do rato, ou 3 x 106 cultivaram o rato preliminar neurônios corticais14,16,17. Esta sensibilidade faz QMI útil para a análise das pilhas ou do tecido com disponibilidade limitada, tal como amostras clínicas.
QMI pode ser adaptado para toda a rede previamente definida da interação da proteína (contanto que os anticorpos estão disponíveis), e até agora foi desenvolvido para analisar o signalosome do receptor do antígeno da pilha de T (TCR) e um subconjunto das proteínas em sinapses glutamatérgico nos neurônios 17 anos de , 18. em estudos de sinalização de receptores de células T, o QMI foi usado pela primeira vez para identificar alterações induzidas por estimulação em peixes e, em seguida, para distinguir pacientes autoimunes de um grupo controle, detectar sinalização autoimune endógena e, finalmente, gerar uma hipótese envolvendo uma subrede associada à doença desequilibrada das interações14. Mais recentemente, o mesmo painel de QMI foi usado para determinar que a seleção do anti-thymocyte está determinada por diferenças quantitativas um pouco do que qualitativas na sinalização TCR-associada19da proteína. Nos neurônios, o QMI foi usado para descrever o rearranjo de entrada específica de uma rede de interação protéica para tipos distintos de sinais de entrada de uma forma que suporta modelos recém-emergentes de plasticidade sináptica17. Adicionalmente, este painel de QMI sináptica foi usado para identificar diferenças em sete modelos do rato do autismo, aglomerar os modelos em subgrupos baseados em suas bioassinaturas de PiSCES, e supor exatamente um deficit molecular compartilhado que fosse previamente não reconhecido em um dos modelos16. Uma abordagem semelhante pode ser usada para a tela de outros subgrupos que possam responder a diferentes tratamentos medicamentoso, ou atribuir medicamentos a subgrupos responsivos específicos. O QMI tem potenciais aplicações em diagnósticos, subtipagem de pacientes e desenvolvimento de fármacos, além da ciência básica.
Para montar um painel de anticorpos QMI, os protocolos iniciais de triagem e seleção de anticorpos estão descritos na seção 1, abaixo. Uma vez identificados os painéis de anticorpos, os protocolos de conjugação dos anticorpos selecionados para os grânulos magnéticos para IP e para a biotinilação dos anticorpos de sonda selecionados estão descritos na seção 2. O protocolo para a execução do ensaio QMI em lisados celulares ou teciduais é descrito na seção 3. Finalmente, uma vez que um único experimento pode gerar ~ 5 x 105 DataPoints individuais, instruções e códigos de computador para auxiliar no processamento de dados, análise e visualização são fornecidos na seção 4. Uma visão geral do fluxo de trabalho descrito nas seções 2-4 é mostrada na Figura 1.
O ensaio QMI requer investimento substancial no desenvolvimento do painel de anticorpos, equipamentos e reagentes, mas uma vez que o ensaio é estabelecido, pode-se coletar dados de alta dimensão observando as redes de interação protéica à medida que respondem a Estímulos. Tecnicamente, o QMI requer pipetagem cuidadosa e rastreamento de locais de amostra e de poços de anticorpos. Etiquetar com cuidado as placas do ensaio é útil, como está fazendo um molde detalhado de posições do poço no papel, que é conser…
The authors have nothing to disclose.
Os autores desejam reconhecer Tessa Davis para contribuições importantes para o desenvolvimento do ensaio QMI, e membros atuais e antigos dos laboratórios Smith e Schrum para orientação técnica e entrada intelectual. Este trabalho foi financiado por subsídios de NIMH R01 MH113545 e r00 MH 102244.
96-well flat bottomed plates | Bio Rad | 171025001 | |
96-well PCR plates | VWR | 82006-704 | |
Bioplex 200 System with HTF | Bio Rad | 171000205 | modiefied to keep partially refrigerated, see Figure S1 for details |
Bio-Plex Pro Wash Station | Bio Rad | 30034376 | |
BSA | Sigma | ||
CML beads | Invitrogen | C37481 | |
EDTA | Sigma | E6758 | |
EZ-Link Sulfo-NHS-Biotin | Thermo Scientific | A39256 | |
MagPlex Microspheres | Luminex | MC12xxx-01 | xxx is the 3 digit bead region |
Melon Gel IgG Spin Purification Kit | Thermo Scientific | 45206 | used for antibody purification |
MES | Sigma | M3671 | |
Microplate film, non-sterile | USA Scientific | 2920-0000 | |
Phosphotase inhibitor cocktail #2 | Sigma | P5726 | |
Protease inhibitor cocktail | Sigma | P8340 | |
Sandwich Prep Refrigerator | Norlake | SMP 36 15 | for custom refrigeration of Bioplex 200 |
Sodium fluoride | Sigma | 201154 | |
Sodium orthovanadate | Sigma | 450243 | |
Streptavidin-PE | BioLegend | 405204 | |
Sulfo NHS | Thermo Scientific | A39269 | |
Tris | Fisher Scientific | BP152 |