Summary

Cell fraktionering av U937 celler i avsaknad av höghastighetståg centrifugering

Published: January 18, 2019
doi:

Summary

Här presenterar vi ett protokoll för att isolera plasmamembran, cytoplasman och mitokondrierna av U937 celler utan användning av höghastighetståg centrifugering. Denna teknik kan användas för att rena subcellulär fraktioner för efterföljande prövning av protein lokalisering via immunoblotting.

Abstract

I detta protokoll detalj vi en metod för att erhålla subcellulär fraktioner av U937 celler utan användning av ultracentrifugering eller urskillningslösa rengöringsmedel. Denna metod använder hypoton buffertar, digitonin, mekaniska lysis och differentiell centrifugering att isolera cytoplasman, mitokondrier och plasmamembranet. Processen kan skalas för att tillgodose behoven hos forskare, är billig och enkel. Denna metod gör att forskare att bestämma protein lokalisering i celler utan specialiserade centrifuger och utan användning av kommersiella kit, som båda kan vara oöverkomligt kostsamma. Vi har framgångsrikt använt denna metod att separera cytosoliska, plasmamembranet och mitokondrie proteiner i mänskliga monocyt cell linje U937.

Introduction

Tillförlitlig identifiering av protein lokalisering är ofta nödvändigt när man undersöker molekylära vägar i eukaryota celler. Metoder för att erhålla subcellulär fraktioner utnyttjas av forskare att närmare undersöka cellulära komponenter av intresse.

Majoriteten av befintlig cell fraktionering metoder generellt faller i två breda kategorier, diskmedel-baserade1,2 och ultracentrifugering-baserade3,4,5, som kan vara olika hastighet, precision och kostnad. Rengöringsmedel baserat protokoll är beroende av användningen av buffertar med ökande tvättmedel styrka för att solubilize olika komponenter av cellen. Detta är en snabb och bekväm metod för bearbetning av prover och kan vara kostnadseffektivt om antal och storlek av prover är små. Diskmedel-baserade Kit kan köpas för att isolera cytoplasmiska, membran/organell (blandad fraktion) och nukleära fraktioner från celler. Men begränsa flera nackdelar är associerad med dessa kit deras användbarhet för forskare. De är utformade för att enkelt isolera en eller två beståndsdelar i cellen, men är oförmögna att isolera alla fraktioner från ett prov samtidigt. Användningen av rengöringsmedel innebär att plasma membranet och membran slutna organeller kommer vara lika solubilized och därför inte kan skiljas från varandra. En ytterligare komplikation uppstår från de egenutvecklade komponenterna i dessa kit som förhindrar forskare från att ändra villkoren för specifika applikationer. Slutligen de är begränsade i antalet användningar och kan vara oöverkomligt dyrt för större skala experiment. Icke-tvättmedel baserat kit finns för isolering av mitokondrier, men de är inte avsedda att isolera plasmamembranet och prov avkastningen är betydligt mindre än det från densitet centrifugering baserat isolering protokoll6,7 .

Metoder som utnyttjar ultracentrifugering Erhåll fraktioner är mer tidskrävande, men ofta resulterar i renare fraktioner än diskmedel-baserade kit. För att isolera plasma membran från celler utan första solubilizing dem (resulterar i förorening med membran organeller) kräver dem att vara lyserat av en icke-tvättmedel metod följt av separation av cellulära komponenter via differential centrifugering — med plasmamembranet isolering som kräver hastigheter på 100 000 × g att utföra. I många fall måste differentiell centrifugering följas av isopycnic täthet lutning centrifugering för ytterligare separation av cellulära fraktioner eller avlägsnande av föroreningar. Medan dessa metoder är grundlig och modifierbara, inkluderar nackdelarna kostnad, tidsförbrukning och behovet av en ultracentrifugen för separation av bråk och ytterligare rening via täthet lutning centrifugering. De flesta höghastighetståg centrifuger är en kostnad som är oöverkomliga för enskilda utredare och ofta delade, core utrustning vid akademiska institutioner. Således blir ultracentrifugen tillgänglighet oöverkomliga i dessa situationer.

I detta fraktionering protokoll visar vi isolering av subcellulär fraktioner utan användning av solubilizing rengöringsmedel och hög hastighet centrifugering. Denna metod gör att forskare att isolera de plasmamembran, mitokondrier och cytoplasmiska komponenterna i en eukaryot cell med minimal nedsmutsning mellan fraktioner.

Protocol

1. Förbered buffertar och reagenser Obs: Se tabell 1. Bered lösningar av buffert A, lyseringsbuffert B, prov buffert och digitonin. Förbereda buffert A genom att lägga till 8,77 g NaCl och 50 mL HEPES (1 M, pH 7,4) till 900 mL avjoniserat vatten, anpassa den slutliga volymen till 1 L med avjoniserat vatten.Obs: Slutliga koncentrationer är 150 mM NaCl och 50 mM HEPES. Förbereda lyseringsbuffert B genom tillsats av 20 mL HEPES (1 M, pH 7,4)…

Representative Results

Framgångsrika fraktionering av odifferentierade U9378 celler odlas i suspension var fulländad med protokollet anges ovan och illustreras i figur 1. De prover som erhålls med denna metod utsattes för western blotting9 utnyttja en våt överföringsmetod till ett polyvinylidene fluor (PVDF) membran. Membranet var därefter utforskad med antikroppar mot cytoplasmiska, mitokondriella och membran lokaliserade pro…

Discussion

Utvecklingen av detta protokoll uppstod från en oförmåga att skilja mitokondrie och membran prover, med hjälp av kommersiellt tillgängliga kit, för analys av protein localization under necroptosis14. De primära begränsningarna av premade kit är deras oförmåga att anpassas till behoven hos enskilda forskare, deras kostnad per prov och begränsat antal prov kunna bearbetas. Metoden presenteras här kan utföras utan användning av dyra reagenser och utan behovet av dyrbar utrustning. Denn…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbetet stöddes av NIH-1R15HL135675-01 till Timothy J. LaRocca

Materials

Digitonin TCI Chemicals D0540 For Cytoplasm Extraction
D-Mannitol Sigma-Aldrich M4125 For Lysis buffer B
Dounce homogenizer VWR 22877-282 For Homogenization
end-over-end rotator Barnstead N/A For Cytoplasm Extraction
ethylene glycol-bis(β-aminoethyl ether)-N,N,N',N'-tetraacetic acid (EGTA) Alfa Aesar J61721 For Lysis buffer B
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma-Aldrich E7889 For Lysis buffer B
GAPDH (14C10) Cell Signalling Technologies 2118 For detection of cytoplasmic fractions on western blot, dilution: 1:10000
HEPES VWR J848 For Lysis buffers A and B
KCl Sigma-Aldrich P9541 For Lysis buffer B
MgCl2 Alfa Aesar 12315 For Lysis buffer B
Na, K-ATPase a1 (D4Y7E) Cell Signalling Technologies 23565 For detection of plasma membrane fractions on western blot, dilution: 1:1000
NaCl Sigma-Aldrich 793566 For Lysis buffer A
phenylmethanesulfonyl fluoride (PMSF) VWR M145 For Cytoplasm Extraction and Homogenization Buffer
probe sonicator Qsonica Q125-110 For Final Samples
Protease Inhibitor Cocktail, General Use VWR M221-1ML For Cytoplasm Extraction
refrigerated centrifuge Beckman-Coulter N/A
Sodium dodecyl sulfate (SDS) VWR 227 For Sample buffer
sodium orthovanadate (SOV) Sigma-Aldrich 450243 For Lysis buffers A and B
Sucrose Sigma-Aldrich S0389 For Lysis buffer B
Tris-buffered Saline (TBS) VWR 788 For Sample buffer
VDAC (D73D12) Cell Signalling Technologies 4661 For detection of mitochondrial fractions on western blot, dilution: 1:1000

References

  1. Baghirova, S., Hughes, B. G., Hendzel, M. J., Schulz, R. Sequential fractionation and isolation of subcellular proteins from tissue or cultured cells. MethodsX. 2, e440-e445 (2015).
  2. Hwang, S., Han, D. K. Subcellular fractionation for identification of biomarkers: Serial detergent extraction by subcellular accessibility and solubility. Methods in Molecular Biology. 1002, 25-35 (2013).
  3. Song, Y., Hao, Y., et al. Sample preparation project for the subcellular proteome of mouse liver. Proteomics. 6 (19), 5269-5277 (2006).
  4. Lenstra, J. A., Bloemendal, H. Topography of the total protein population from cultured cells upon fractionation by chemical extractions. European Journal of Biochemistry. 135 (3), 413-423 (1983).
  5. Michelsen, U., von Hagen, J. Chapter 19 Isolation of Subcellular Organelles and Structures. Methods in Enzymology. 463 (C), 305-328 (2009).
  6. Stimpson, S. E., Coorssen, J. R., Myers, S. J. Optimal isolation of mitochondria for proteomic analyses). Analytical Biochemistry. 475, 1-3 (2015).
  7. Williamson, C. D., Wong, D. S., Bozidis, P., Zhang, A., Colberg-Poley, A. M. Isolation of Endoplasmic Reticulum, Mitochondria, and Mitochondria-Associated Membrane and Detergent Resistant Membrane Fractions from Transfected Cells and from Human Cytomegalovirus-Infected Primary Fibroblasts. Current protocols in cell biology. 68, (2015).
  8. Sundström, C., Nilsson, K. Establishment and characterization of a human histiocytic lymphoma cell line (U-937). International Journal of Cancer. 17 (5), 565-577 (1976).
  9. Towbin, H., Staehelin, T., Gordon, J. Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets: procedure and some applications. Proceedings of the National Academy of Sciences. 76 (9), 4350-4354 (1979).
  10. Barber, R. D., Harmer, D. W., Coleman, R. A., Clark, B. J. GAPDH as a housekeeping gene: analysis of GAPDH mRNA expression in a panel of 72 human tissues. Physiological Genomics. 21 (3), 389-395 (2005).
  11. Hodge, T., Colombini, M. Regulation of metabolite flux through voltage-gating of VDAC channels. Journal of Membrane Biology. 157 (3), 271-279 (1997).
  12. Therien, a. G., Blostein, R. Mechanisms of sodium pump regulation. American journal of physiology. Cell physiology. 279 (3), C541-C566 (2000).
  13. Devarajan, P., Stabach, P. R., De Matteis, M. A., Morrow, J. S. Na,K-ATPase transport from endoplasmic reticulum to Golgi requires the Golgi spectrin-ankyrin G119 skeleton in Madin Darby canine kidney cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 94 (20), 10711-10716 (1997).
  14. McCaig, W. D., Patel, P. S., et al. Hyperglycemia potentiates a shift from apoptosis to RIP1-dependent necroptosis. Cell Death Discovery. 4, 55 (2018).
  15. Simpson, R. J. Homogenization of Mammalian Tissue. Cold Spring Harbor Protocols. 2010 (7), (2010).

Play Video

Cite This Article
McCaig, W. D., Deragon, M. A., Haluska Jr,, R. J., Hodges, A. L., Patel, P. S., LaRocca, T. J. Cell Fractionation of U937 Cells in the Absence of High-speed Centrifugation. J. Vis. Exp. (143), e59022, doi:10.3791/59022 (2019).

View Video