Summary

Opretholdelse af biologiske kulturer og måling af Gen-ekspression i Aphis nerii: et ikke-model System for plante-insekt interaktioner

Published: August 31, 2018
doi:

Summary

Bladlus Aphis nerii koloniserer på stærkt forsvaret planter i dogbane familie (Apocyanaceae) og giver mange muligheder for at studere plante-insekt interaktioner. Her præsenterer vi en række protokoller for vedligeholdelse af anlægget og bladlus kulturer, og den generation og analyse af molekylære og – omic data for A. nerii.

Abstract

Bladlus er fremragende eksperimentelle modeller for en bred vifte af biologiske spørgsmål lige fra udviklingen i symbioser og udvikling af polyphenisms til spørgsmål omkring insekts interaktioner med deres værtsplanter. Genomisk ressourcer er tilgængelige for flere arter, bladlus, og med fremskridt inden for den næste generation sequencing, transkriptom undersøgelser udvides til ikke-model organismer, som mangler genomer. Derudover kan bladlus kulturer indsamlet fra feltet og opdrættes i laboratoriet til brug i kropsligt og molekylær eksperimenter for at bygge bro over kløften mellem økologiske og genetiske undersøgelser. Sidst, mange bladlus kan opretholdes i laboratoriet på deres foretrukne værtsplanter i evig, parthenogenic livscyklus muliggør sammenligninger af ukønnet reproduktion genotyper. Aphis nerii, milkweed-oleander bladlus, giver en sådan model for at studere insekt interaktioner med giftige planter ved hjælp af både kropsligt og molekylær eksperimenter. Metoder til produktion og vedligeholdelse af anlægget og bladlus kulturer i drivhus og laboratorium, DNA og RNA ekstraktioner, microsatellite analyse, de novo transkriptom forsamling og kommentering, transkriptom differential udtrykket analyse og qPCR verifikation af varierende udtrykte gener er skitseret og drøftet her.

Introduction

Bladlus er små, hemimetabolous insekter, at koloniser på forskellige planter familier i hele verden. De er karakteristiske for flere funktioner, de fleste især deres komplekse livscyklus involverer cykliske partenogenese og diskrete polyphenisms og deres obligat ernæringsmæssige symbioser med bakteriel eller gær endosymbionts, der leverer næringsstoffer mangler fra deres kost af plante sap1. Mens de fleste bladlus er vært plante specialister, nogle generalist arter er vigtig afgrøde skadedyr, påføre betydelig økonomisk skade på afgrøder, enten direkte eller via de patogener og virus vektor de2. Offentliggørelsen af de første bladlus genom i 2010, ært bladlus Acyrthosiphon pisum3, markerede en vigtig milepæl i studiet af bladlus biologi fordi det fastsatte behandle spørgsmål om insekt de genomiske ressourcer tilpasninger til de planteædende livsstil, herunder dem, der kan føre til en bedre kontrol strategier4. Siden dengang, har yderligere genomiske ressourcer akkumuleret med offentliggørelsen af en kommenteret genom for sojabønner bladlus Aphis glycines5og offentligt tilgængelige samlede genom ressourcer til en anden tre-bladlus arter (Myzus cerasi (black cherry bladlus), Myzus persicae (fersken-kartoffel bladlus), Rhopalosiphum padi (Hæg-havre bladlus)6. Værdifulde de novo transkriptom ressourcer er tilgængelige samt for en række andre arter, bladlus (e.g.,Aphis gossypii (bomuld bladlus)7, Sitobion avenae (Kornbladlusen)8, Cinara pinitabulaeformis (fyrretræ bladlus)9, Aphis nerii (milkweed-oleander bladlus)10).

Bladlus har også gjort varigt bidrag til vores forståelse af plante-insekt interaktioner og økologi af livet på planter11. Et område, hvor bladlus har gjort særligt vigtigt bidrag er i vores forståelse af plante værtssammenspil kemiske økologi. Planteædende insekter udtrykke forskellige tilpasninger fordel for at overvinde plante forsvar, og nogle endda ved selvsupplering plante forsvar for deres egen12,13,14. For eksempel, er milkweed-oleander bladlus, Aphis nerii, en lys gul, invasive bladlus findes i tempererede og tropiske regioner over hele verden, der koloniserer om planter i familien milkweed (Apocynaceae). Planter i familien Apocynaceae har udviklet forskellige kemiske forsvar, herunder mælkeagtig latex og hjerteglykosider kendt som cardenolides, der binder kation carrier Na, K-ATPase og er effektivt afskrækkende til generalist planteædere15, 16. milkweed specialister udtrykke forskellige former for modstand mod cardenolides, og nogle selektivt eller passivt akkumulere eller ændre cardenolides i deres væv, som et middel til at afskrække underbud eller for andre fordele17. A. nerii menes at udskille cardenolides på denne måde, selv om de mekanismer og funktionelle fordele forbliver uklart10,18.

Givet de genomiske ressourcer ved hånden, giver A. nerii en fremragende eksperimentelle model til studier af de molekylære og genetiske mekanismer involveret i kemo-økologiske samspillet mellem giftige værtsplanter og deres specialist planteædere. Det er værd at bemærke, at mens nogle af de tidligste undersøgelser af A. nerii fokuseret på binding af cardenolides19, siden dengang, undersøgelser af A. nerii har givet indsigt i en bred vifte af evolutionære og økologiske spørgsmål, herunder den genetiske struktur af invasive insekter20 og samspillet mellem bottom-up og top-down regulering på Planteæder tæthed21. A. nerii er således en god kandidat som en eksperimentel model for et særligt brede sæt af undersøgelser af insekt-plante interaktion. Kritisk for enhver undersøgelse med A. nerii succes er den forsigtige kultur af bladlus populationer, som omfatter kultur af planter som bladlus er afhængige af, samt en effektiv generation af høj kvalitet – omic data. Vores mål er at guide læseren gennem både. Skitseret nedenfor er metoder til produktion og vedligeholdelse af anlægget og bladlus kulturer i drivhus og laboratorium, DNA og RNA ekstraktioner, microsatellite analyse, de novo transkriptom forsamling og kommentering, transkriptom differential udtryk analyse og qPCR verifikation af varierende udtrykte gener. Mens disse metoder er skrevet for A. nerii, generelle dyrkning, udvinding, og analysemetoder, der kan udvides til en bred vifte af bladlus arter.

Protocol

1. plant kulturer Købe frø fra enhver kommerciel leverandør eller indsamle fra modne planter i feltet.Bemærk: Denne protokol er velegnet til de fleste kommercielt tilgængelige milkweed arter (fx Asclepias incarnata, A. syriaca, A. Silkeplante, Gomphocarpus Blærespiræa). Nogle frø skal muligvis være kolde-stratificeret, og instruktioner fra frøleverandør bør kontrolleres. Plante frø i et fint germinating jord (60-70% fine sphagnum, perlite, …

Representative Results

Plant kulturer: Frø vil tage ca. to til fire uger, afhængig af sæsonen, for at vokse stort nok til at være re potteplanter (fig. 1A). Re potteplanter frøplanter vil tage endnu to til fire uger at vokse til en optimal størrelse for bladlus kulturer (figur 1B). Bladlus kulturer: Voksen A. nerii<…

Discussion

Det har længe været anerkendt, at aposematic A. nerii kan give indsigt i de mønstre og mekanismer af resistens over for planten forsvar og især kemisk binding18,37. En række af genomisk ressourcer er for nylig opstået i A. nerii10, tilbyder nye muligheder for økologisk og funktionelle genomisk undersøgelser, der bruger A. nerii som model. Vi redegøre for grundlæggende protokoller i bladlus og plant kult…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne takke Michelle Moon (Vanderbilt University) for assistance med fotografering. Vanderbilt University givet støtte til PA og SSLB understøttes af DGE-1445197.

Materials

Sun Gro Fafard Germination Mix Hummert International 10-0952-2
Sun Gro Fafard 3B/ Metro Mix Hummert International 10-0951-2
2x 4" Round Standard Pot Anderson Pots 1503
DreamTaq DNA Polymerase ThermoFisher Scientific EP0701
Trizol ThermoFisher Scientific 15596026
SuperScript® III First-Strand Synthesis kit ThermoFisher Scientific 18080051
Power SYBR Green PCR Master Mix ThermoFisher Scientific 4367659

References

  1. Brisson, J. A., Stern, D. L. The pea aphid, Acyrthosiphon pisum.: an emerging genomic model system for ecological, developmental and evolutionary studies. BioEssays. 28, 747-755 (2006).
  2. Dixon, A. F. G. . Aphid Ecology: An Optimization Approach. , (1985).
  3. Consortium, T. I. A. G. Genome Sequence of the Pea Aphid Acyrthosiphon pisum. PLoS Biology. , 1000313 (2010).
  4. Srinivasan, D. G., Brisson, J. A. Aphids: A Model for Polyphenism and Epigenetics. Genetics Research International. 2012, 1-12 (2012).
  5. Wenger, J. A., et al. Whole genome sequence of the soybean aphid, Aphis glycines. Insect Biochememistry and Molecular Biology. , 1-10 (2017).
  6. Li, Z. -. Q., et al. Ecological adaption analysis of the cotton aphid (Aphis gossypii) in different phenotypes by transcriptome comparison. PLoS ONE. 8, 83180 (2013).
  7. Wang, D., Liu, Q., Jones, H. D., Bruce, T., Xia, L. Comparative transcriptomic analyses revealed divergences of two agriculturally important aphid species. BMC Genomics. 15 (1), 1023-1024 (2014).
  8. Wu, S., et al. De novo characterization of the pine aphid Cinara pinitabulaeformis Zhang et Zhang transcriptome and analysis of genes relevant to pesticides. PLoS ONE. 12, 0178496-0178517 (2017).
  9. Birnbaum, S. S. L., Rinker, D. C., Gerardo, N. M., Abbot, P. Transcriptional profile and differential fitness in a specialist milkweed insect across host plants varying in toxicity. Molecular Ecology. , (2017).
  10. Dixon, A. F. G. . Insect Herbivore-Host Dynamics. , (2005).
  11. Goggin, F. L. Plant-aphid interactions: molecular and ecological perspectives. Current Opinion in Plant Biology. 10, 399-408 (2007).
  12. Will, T., Furch, A., Zimmermann, M. R. How phloem-feeding insects face the challenge of phloem-located defenses. Frontiers in Plant Science. 4, 1-12 (2013).
  13. Webster, B. The role of olfaction in aphid host location. Physiological Entomology. 37, 10-18 (2012).
  14. Agrawal, A. A., Petschenka, G., Bingham, R. A., Weber, M. G., Rasmann, S. Toxic cardenolides: chemical ecology and coevolution of specialized plant-herbivore interactions. New Phytologist. 194, 28-45 (2012).
  15. Dobler, S., Petschenka, G., Pankoke, H. Coping with toxic plant compounds- the insect’s perspective on iridoid glycosides and cardenolides. Phytochemistry. 72, 1593-1604 (2011).
  16. Opitz, S. E. W., Müller, C. Plant chemistry and insect sequestration. Chemoecology. 19, 117-154 (2009).
  17. Birnbaum, S. S. L., Abbot, P. Insect adaptations toward plant toxins in milkweed-herbivores systems – a review. Entomologia Experimentalis et Applicata. 58, 579-610 (2018).
  18. Rothschild, M., von Euw, J., Reichstein, T. Cardiac glycosides in the oleander aphid, Aphis nerii. Journal of Insect Physiology. 16, 1141-1145 (1970).
  19. Harrison, J. S., Mondor, E. B. Evidence for an invasive aphid ‘superclone’: extremely low genetic diversity in oleander aphid (Aphis nerii) populations in the southern United States. PLoS ONE. 6, 17524 (2011).
  20. Mooney, K. A., Halitschke, R., Kessler, A., Agrawal, A. A. Evolutionary trade-offs in plants mediate the strength of trophic cascades. Science. 327, 1642-1644 (2010).
  21. Grabherr, M. G., et al. Full-length transcriptome assembly from RNA-Seq data without a reference genome. Nature Biotechnology. 29, 644-652 (2011).
  22. Haas, B. J., et al. De novo transcript sequence reconstruction from RNA-seq using the Trinity platform for reference generation and analysis. Nature Protocols. 8, 1494-1512 (2013).
  23. Finn, R. D., et al. The Pfam protein families database: towards a more sustainable future. Nucleic Acids Research. 44, 279-285 (2016).
  24. The UniProt Consortium. UniProt: the universal protein knowledgebase. Nucleic Acids Research. 45, 158-169 (2017).
  25. Johnson, M., et al. NCBI BLAST: a better web interface. Nucleic Acids Research. 1 (36), 5-9 (2008).
  26. Fu, L., Niu, B., Zhu, Z., Wu, S., Li, W. CD-HIT: accelerated for clustering the next generation sequencing data. Bioinformatics. 28 (23), 3150-3152 (2012).
  27. Simão, F. A., Waterhouse, R. M., Ioannidis, P., Kriventseva, E. V., Zdobnov, E. M. BUSCO: assessing genome assembly and annotation completeness with single-copy orthologs. Bioinformatics. 31, 3210-3212 (2015).
  28. Bolger, A. M., Lohse, M., Usadel, B. Trimmomatic: a flexible trimmer for Illumina sequence data. Bioinformatics. 30, 2114-2120 (2014).
  29. Langmead, B., Salzberg, S. L. Fast gapped-read alignment with Bowtie 2. Nature Methods. 9, 357-359 (2012).
  30. Li, H., et al. The Sequence Alignment/Map format and SAMtools. Bioinformatics. 25, 2078-2079 (2009).
  31. Love, M. I., Huber, W., Anders, S. Moderated estimation of fold change and dispersion for RNA-seq data with DESeq2. Genome Biology. 15, 31 (2014).
  32. Rieu, I., Powers, S. J. Real-time quantitative RT-PCR: design, calculations, and statistics. Plant Cell. 21, 1031-1033 (2009).
  33. Malcolm, S. B. Chemical defence in chewing and sucking insect herbivores: plant-derived cardenolides in the monarch butterfly and oleander aphid. Chemoecology. 1, 12-21 (1990).
  34. Agrawal, A. A., Underwood, N., Stinchcombe, J. R. Intraspecific variation in the strength of density dependence in aphid populations. Ecological Entomology. 29, 521-526 (2004).
  35. Zehnder, C. B., Hunter, M. D. A comparison of maternal effects and current environment on vital rates of Aphis nerii, the milkweed-oleander aphid. Ecological Entomology. 32, 172-180 (2007).
  36. Hartbauer, M. Collective defense of Aphis nerii and Uroleucon hypochoeridis (Homoptera, Aphididae) against natural enemies. PLoS ONE. 5, 10417 (2010).

Play Video

Cite This Article
Birnbaum, S. S., Rinker, D. C., Abbot, P. Maintaining Biological Cultures and Measuring Gene Expression in Aphis nerii: A Non-model System for Plant-insect Interactions. J. Vis. Exp. (138), e58044, doi:10.3791/58044 (2018).

View Video