Этот протокол показывает, как последовательно акцизный планарии глаз (оптические чашки) без нарушения окружающих тканей. С помощью иглы и шприца инсулина, либо один или оба глаза могут быть абляции, чтобы облегчить расследование механизмов, регулирующих регенерацию глаз, эволюцию визуальной регенерации, а также нейронную основу светоиндуцированного поведения.
В исследовании взрослых стволовых клеток и регенеративных механизмов, планарии плоских черви являются одним из основных продуктов в естественных условиях модельной системы. Это связано в значительной степени с их обильной плюрипотентных популяции стволовых клеток и способность к регенерации всех типов клеток и тканей после травм, которые были бы катастрофическими для большинства животных. В последнее время планарий завоевал популярность в качестве модели для регенерации глаз. Их способность к регенерации всему глаза (состоит из двух типов тканей: пигментные клетки и фоторецепторов) позволяет рассечения механизмов, регулирующих визуальную регенерации системы. Глаз абляция имеет несколько преимуществ по сравнению с другими методами (такими как обезглавливание или перфорация) для изучения глазных конкретных путей и механизмов, наиболее важными из которых является то, что регенерация в основном ограничиваются только тканями глаза. Цель этого видео статьи является показать, как надежно удалить планарии оптической чашки, не нарушая мозг или окружающие ткани.Обработка червей и поддержания установленной колонии также описана. Эта методика использует 31 г, 5/16-дюймовый инсулина иглы хирургическим путем выкопать оптический чашку планарий, иммобилизованных на холодную пластину. Этот метод включает в себя как одиночный и двойной абляции глаза, с глазами регенерирующих в течение 1-2 недель, что позволяет в широком диапазоне применений. В частности, этот метод абляции можно легко сочетать с фармакологическими и генетическими (РНК-интерференции) экраны для лучшего понимания регенеративных механизмов и их эволюции, стволовых клеток глаза и их содержание, а также phototaxic поведенческих реакций и их неврологической основе.
Планарии являются мощным модельным организмом для изучения клеточной регенерации взрослых стволовых. Эти непаразитарных пресноводные плоские черви обладают способностью регенерировать любые и все недостающие ткани, в том числе их центральной нервной системы и головного мозга 1. Училась еще в 1700 – х годах 2, технологические достижения в области планарий в течение последних 10-15 лет (например, виртуализированного геном, гибридизация, иммуногистохимии, РНК – интерференции (иРНК), и транскриптомика в) обновили эту историческую модель организма , В частности, планарий недавно приобрел популярность в качестве новой модели для исследования глаза 3.
Планарии имеют прототипический глаз только с двумя типов тканей, фоторецепторы нейронами и пигментными клетками; это позволило охарактеризовать ее глаз стволовых клеток населения и показал, что многие из тех же генов, регулирующих позвоночный глаз деvelopment сохраняются в планарии 4, 5. Оптические чашки расположены дорсально и состоят из белых, окрашенных пигмента дендритов нейронов фоторецепторов и пол-лунным черного пигмента клеток, а глаза иннервируют мозг с помощью зрительного перекреста. Помимо того , что модель для выяснения регенеративных процессов 6, планарии глаз хорошо подходят для изучения эволюции зрительных механизмов 7, поведенческие реакции на свет (планарий отображать отрицательный фототаксис) 8, и неврологическую основу поведения 9.
Глаз в регенерации планарий была в значительной степени изучена в двух основных контекстах: в качестве части головки регенерации следуя обезглавливание 4, 10, и после иссечения только тканей глаза 11, 12 </SUP>. Большинство планарий исследования по регенерации глаз использовали метод обезглавливание, как это просто и понятно. Наиболее распространенный метод планарии глаз иссечения до настоящего времени был через отверстие пуансон с тонким стеклянной капиллярной трубкой 13, 14, хотя некоторые исследования также проводили ампутации только позади глаз (частичная декапитации) 15. Тем не менее, все эти методы предполагают потерю многих других, чем просто глаз тканей (например, мозга, кишечника, и нефридиев), потенциально усложняет интерпретацию результатов. Протокол глаз абляции, представленный здесь ограничивает иссечение в ткани глаза (в частности, за исключением головного мозга), в результате чего данные, которые являются более специфическими для глаз. Кроме того, в отличие от обезглавленных червей , которые принимают 7-14 дней , чтобы начать кормление, глазные абляции черви будут кормить в течение 24 часов абляции 12, что позволяет RNAi эксперименты (там , где иРНК доставляется через пищу) , чтобы быть performed одновременно.
Хотя глаз абляция технически сложнее, чтобы успешно выполнить, чем обезглавливание, в настоящее время исследования с участием глаз иссечение не включены подробные инструкции по их процедур. Цель этого видео статьи позволит исследователям, чтобы последовательно удалить планарии оптической чашки, не нарушая основные ткани мозга и удаления, как несколько других тканей, как это возможно. Этот метод может быть использован как для одиночного и двойного абляции глаза и применимо к широкому кругу исследований. Как и большинство анализов регенерации, глаза абляция хорошо подходят для комбинации с обеими фармакологическими и генетическими (RNAi) экранами, а также поведенческими исследованиями. Здесь мы опишем методы для обработки червей, поддерживая планарии колонию, а сама техника глаз абляции.
Эта техника глаза абляции улучшает современные методы (например, перфорация) путем исключения тканей мозга и ограничения иссечения в основном для тканей глаза. С практикой, эта техника может быть выполнена большинством людей, от опытных техников в микрохирургических для неопытных, но …
The authors have nothing to disclose.
Авторы хотели бы поблагодарить Мишел Деочанд для совершенствования этой глазной метод абляции, Тейлор Биркхольцем за помощью функционального анализа, Майкл Левин для анти-arrestin антитела и Junji Morokuma информации на пластинах Пельтье. Эта работа была поддержана грантом ГФНЫ из Университета Западного Мичигана в WSB.
Instant Ocean sea salts | Spectrum Brands | SS15-10 | "10 Gallon" box (net weight 3 lbs) |
Kimwipes EX-L lint-free tissue wipe | Kimberly-Clark | 34155 | 4.5 x 8.5 in |
Whatman #2 filter paper | Sigma | WHA1002125 | Circles, 125 mm diameter, white |
Easy Touch Insulin syringe (with needle) | Pet Health Market | 17175-04 | U-100 1 cc syringe, 31-gauge 5/16 in needle |
100 mm Petri dish | VWR | 25384-342 | 100 x 15 mm |
60 mm Petri dish | VWR | 25384-092 | 60 x 15 mm |
Dumont #5 forceps | Fine Science Tools | 11254-20 | Inox, straight tip , 11 cm |
Transfer pipettes | Samco Scientific | 225 | Graduated, large bulb, 7.5 mL, non sterile |
Parafilm M paraffin film | Brand | 701606 | 4 in x 125 ft roll |
12-well untreated tissue culture plate | VWR | 15705-059 | Untreated, flat bottom, sterile, Falcon brand |
Plastic food containers (for colony) | Ziploc | Large rectangle | 2.25 qt (2.12 L), 10" x 6 -3/4 " x 3 -3/16" |
Planaria (Girardia tigrina) | Carolina Biological | 132954 | Sold as "Brown" Planaria; most often they are G. tigrina (aka Dugesia tigrina), but sometimes are G. dorotocephala (aka Dugesia dorotocephala); either will work. |
Planaria (Schmidtea mediterranea) | n/a | n/a | S. mediterranea are not commercially available. At this time animals are only obtainable from laboratories that use them and have extra animals. |
Brown paper towels | Grainger | 2U229 | 9-3/16 x 9-3/8" 1-Ply Multifold Paper Towel, UNBLEACHED |
Wash bottle (for worm water), optional | VWR | 16650-275 | Wash Bottles, Low-Density Polyethylene, Wide Mouth, 500 mL |
Anti-synapsin antibody, optional | Developmental Studies Hybridoma Bank | 3C11 | Supernatant |
Anti-arrestin antibody, optional | n/a | n/a | Not commercially available. Kind gift from Michael Levin, Tufts University |
Nalgene Lowboy carboy with spigot (for storing worm water), optional | Nalge Nunc International Corporation | 2324-0015 | 15 L, polypropylene, low profile makes it easier to fill plastic colony containers |
Custom Peltier plate, optional | Williams Machine, Foxboro, MA | n/a | Design specifics courtesy of Junji Morokuma, Tufts University: Peltier plate is constructed of a standard thermoelectric heat pump (for example, All Electronics Corp Catalog # PJT-1, 30 mm2). The square heat pump is covered with a thin mirrored surface, then placed inside a 30 mm2 square hole in a circular plexiglass form (~50 mm in diameter). This form is of similar thickness to the heat pump, and fits flush into a well tooled in the center of a round heat sink (~115 mm in diameter). The form/heat pump is "anchored" to the sink with silicone base heat sink compound. The leads are threaded through holes drilled through both the form and the the heat sink. The bottom half of the heat sink is tooled into a "foot" that fits into the opening of your microscope's base plate. |
DC power source (for Peltier plate), optional | B & K Precision | 1665 | Regulated Low Voltage DC Power Supply, 1-18 volts (DC), 1-10 amps. |
Other common supplies | |||
Gloves | |||
Razor blade | |||
Scissors | |||
Dissecting scope with gooseneck lighting | |||
Chopstick rests, optional |