旋毛虫病的人在许多国家预防全球是基于消化,其中的磁力搅拌器方法被认为是黄金标准的方法,从易感动物肌肉样品的实验室检查。
旋毛虫病是人类一种使人衰弱的疾病,被感染了旋毛虫属的线虫幼虫动物的生的或未煮熟的肉类消费量造成的。全球人类感染的最重要来源是野味及猪肉或猪肉制品。在许多国家,人类旋毛虫病的预防是基于肌肉样本的易感动物尸体的人工消化的方式识别受感染的动物。
有基于肉的消化,但磁力搅拌器方法被认为是金标准的几种方法。此方法允许肌肉样品和随后的过滤和沉降步骤的酶消化后的检测旋毛虫通过显微镜。虽然这种方法不需要特殊的和昂贵的设备,就不能使用的内部控制。因此,严格的质量管理应applie整个试验D。目前的工作的目的是要提供详细的操作说明和方法来分析的基础上,欧盟参考实验室寄生虫和旋毛虫德国国家参考实验室的经验的关键控制点。
属旋毛虫寄生线虫可在全球范围内的食肉动物和杂食的哺乳动物,鸟类和爬行动物的横纹肌进行检测。这些人畜共患线虫可以从猪,马及人的时候生的或半生肉和肉类衍生产品,以及野生动物摄入。此人畜共患可以是在人类特征在于特异病征性体征和症状, 例如腹泻,发烧,眶周水肿和肌痛和可能的并发症,如心肌炎,血栓栓塞性疾病和脑炎1一种严重的疾病。
旋毛虫是野生和家养动物旋毛虫感染的最普遍的病原体,导致大部分人类感染全世界。在欧洲,北非和西非,和西亚, 旋毛虫britovi是人类感染的另一个来源。此外,另外十个类群较少通常报告为致病人类疾病和剂在世界的不同地区被发现,通常在野生动物2。除了野生动物如野猪,熊,海象和獾,猪代表了人类感染的全球最重要的来源。
为防止旋毛虫病的最好方法就是从吃生肉产品不要和煮任何肉类,尤其是野味到安全温度(> 65℃1分钟, 即从粉红肉的颜色变成棕色的核心肉产品)3。欧盟和美国农业部已指定冷冻和烹调时间和温度,可以用来杀死旋毛虫幼虫肉4,5猪肉制品。此外,对于旋毛虫在肉及肉制品灭活建议由国际委员会发表的旋毛虫病“外部参照”> 6。在欧洲,除了引进的商业猪群那里旋毛虫感染的风险可以忽略不计控制住房条件,人类旋毛虫病的预防是基于易感动物4肌肉样品的实验室检查。
对于食品安全而言,消化试验是在肉3,7直接检测旋毛虫的唯一可靠方法。即使有消化测定的几个变型中,磁力搅拌器的方法是国际公认的参考方法3,4,7。该测定是基于在横纹肌组织的检测旋毛虫 。肌肉样品的酶消化和随后的过滤和沉淀步骤, 三棱后chinella幼虫通过显微镜鉴定。根据贸易义务和国家立法,也有磁力搅拌器方法的一般协议的小变化,众说纷纭。在这里,技术细节是根据欧盟要求的4,ISO规格8,信息和通信技术指导6,和欧盟参考实验室的寄生虫(EURLP)的经验和德国的参考实验室旋毛虫 。
虽然磁力搅拌器方法可以容易地进行,而不是严格遵守的技术细节导致灵敏度不足,从而危及消费者的健康。关键控制点已经凸显在上面的文字。此外,使用适当的设备是为测试的成功结果至关重要。所有船只应作出的涂有硅,以减少对表面幼虫附着玻璃和枪头。
消化方法的灵敏度取决于在肌肉幼虫密度和肌肉样品的测试的量。为3的幼虫密度- 5液化石油气肌肉组织的,100%的灵敏度被报道,但低于1 LPG的灵敏度下降至40%,13。取决于所测试的宿主动物种类,试验的灵敏度可通过增加样品的使用量得到改善。第i在野生动物nfection负担通常较低,因此大尺寸的样品使用14。好发部位也宿主动物的不同而不同。这里,一些肌肉组织的下消化率如舌需要被考虑在内,这也可导致更大的样本在尺寸15。
此外,要明白,磁力搅拌器方法不包括内部控制是重要的。因此,从采样质量保证管理的文档是必不可少的,以获得准确的和精确的结果。实验室性能检测旋毛虫肌肉样品中的质量应在能力测试每个分析师经常参与进行监测。
该方法的进一步限制是由显微镜肌幼虫的最终识别阶段是高度主观和HEAvily依赖于幼虫形态的研究分析师的知识。
绕过这个问题的一个有趣的替代方法是磁力搅拌器方法/过滤器上分离之后幼虫检测通过胶乳凝集试验。不过,根据欧盟法规此方法仅视为等同于家猪的而不是动物,它们在感染风险较高的肉类的测试,如野猪4。用单克隆抗体幼虫抗原的识别使得测试更加客观,但否认实验室确定每克肉16的幼虫数的可能性。
磁力搅拌器方法的进一步变化包括机械辅助合并样本消化法/沉淀技术,机械辅助合并样本挖estion方法/过滤器上分离的技术,并为最多至35g技术的合并样品的自动消化方法。这些技术都是基于肉和旋毛虫的可视化及数量的人工消化,但在用于过滤和沉降步骤的设备不同。
分离出的幼虫可以进一步确定在通过分子测试( 如多重PCR)17种的水平。根据欧盟法律,所有的阳性样品必须转发国家参考实验室或EURLP为旋毛虫决心。
The authors have nothing to disclose.
我们诚挚地感谢萨宾Reckinger优秀的技术援助和支持。
Knife,Scissors, Tweezers | Cutting samples and removing non-digestible tissue | ||
Blender | With a sharp chopping blade | ||
Magnetic stirrer | With thermostatically controlled heating plate | ||
Stirring Rod | Teflon-coated, approximately 5 cm long | ||
Conical glass separation funnel | Capacity of at least 2 litres, preferably fitted with Teflon safety plugs. The width should not be larger than 55% of the length to allow a good larva sedimentation | ||
Stands, rings and clamps | |||
Sieve | Mesh size 180 microns, external diameter 11 cm, with stainless steel mesh | ||
Funnel | Internal diameter not less than 12 cm, to support the sieves | ||
Glass beaker | Capacity 3 litres | ||
Glass measuring cylinder | Capacity 50 to 100 ml, or centrifuge tube | ||
Stereo-microscope | With a substage transmitted light source of adjustable intensity or trichinoscope with a horizontal table | ||
Petri dishes | 9 cm diameter, marked on their undersides into 10 × 10 mm square examination areas using a pointed instrument or a larval counting basin for the tricinoscope | ||
Aluminium foil | Alternatively a lid to cover the beakers | ||
25 % hydrochloric acid | |||
Pepsin | Strength: 1:10 000 NF (US National Formulary) corresponding to 1:12 500 BP (British Pharmacopoeia) and to 2 000 FIP (Fédération internationale de pharmacie), or stabilised liquid pepsin with minimum 660 European Pharmacopoeia units/ml | ||
Ethanol | 70-90% ethyl alcohol | ||
Tap water | Heated to 46-48 °C before use | ||
Balance | Accurate to at least 0.1 g | ||
Metal tray | Capacity 10 to 15 litres, to collect the remaining digestive juice | ||
Pipettes and pipette holder | Different sizes (1, 10 and 25 ml) | ||
Thermometer | Accurate to 0.5 °C, temperature range at least from 20 ° C to 70 ° C | ||
Siphon | For tap water |