In this manuscript, a method to prepare recombinant adeno-associated virus 9 (rAAV9) vectors to manipulate gene expression in the mouse heart is described.
Контроль экспрессии или активности специфических генов через инфарктом доставки генетического материала в мышиных моделях позволяет исследовать функции генов. Их терапевтический потенциал в сердце может быть также определена. Существуют ограниченные подходы к молекулярной вмешательства в естественных условиях в сердце мыши. Рекомбинантный аденовирус-ассоциированный вирус (Раав) основе генной инженерии была использована в качестве основного инструмента для сердца манипуляции генов в естественных условиях. Особые преимущества этой технологии включают в себя высокую эффективность, высокую специфичность, низкий уровень геномную интеграции, минимальный иммуногенность, и минимальный патогенность. Здесь подробно процедура построения, упаковки и очистить векторы rAAV9 описано. Подкожное введение rAAV9 в неонатальных крысят приводит к надежной экспрессии или эффективной нокдауна гена (ов), представляющие интерес в сердце мыши, но не в печени и других тканях. Использование сердечной Удельныйбыл получен с TnnT2 промотор, высокий уровень экспрессии гена GFP в сердце. Кроме того, мРНК-мишени ингибируется в сердце, когда использовали rAAV9-U6-shRNA. Практическое знание технологии rAAV9 могут быть полезны для сердечно-сосудистых исследований.
Контроль экспрессии или активности специфических генов в различных биологических системах стала ценной стратегией при изучении функции гена 1. Прямым средством достижения этой цели является манипулировать нуклеотидные последовательности и генерируют мутантные аллели. Несмотря на то, что делает точные, целенаправленные изменения в геном живых клеток по-прежнему отнимающий много времени и трудоемкая практика, развитие мощных инструментов Talen и Crispr / cas9 открыл новую эру редактирования генома 2-5. Более рутинной лабораторный метод для генных манипуляций была сосредоточена на введении генетических материалов (ДНК и РНК , содержащих кодирующие последовательности или миРНК / shRNAs) в клетках , чтобы выразить или нокдауна ген (ы) интерес 1,6.
Во многих случаях основным сдерживающим генная инженерия является доставка ДНК, РНК или белка в клетки. Что касается исследований в лабораторных условиях , эффективного transfectiв системах, были установлены во многих культивируемых клеточных линий. Тем не менее, в мышиной модели , в частности, в естественных условиях доставки гена является более сложной задачей. Есть целый ряд внеклеточном и внутриклеточном барьеров, которые необходимо обойти для достижения эффективного клеточного поглощения экзогенных реагентов. Дополнительные препятствия включают быстрый клиренс и короткую продолжительность поставляемого материалов 7,8. Одна из стратегий , чтобы обойти эти проблемы является использование вирусных векторов в качестве "носителей" или "транспортные средства" для в естественных условиях доставки генов. Естественно-эволюционировали свойства трансдукции вирусов позволяют эффективную доставку интересующего гена в клетки 7,9,10. Известны многочисленные типы вирусных векторов, были разработаны и позволяют гибко в естественных условиях манипуляции генов в различных типах клеток и органов у мышей.
Наиболее часто используемые вирусные системы включают ретровирусов, лентивирусов, аденовирусы и адено-ассоциированный вирус (AAV) <sдо> 11. Ретровирусы одноцепочечных РНК – вирусы и могут ввести свой генетический материал в геном клетки – хозяина в стабильном состоянии во время митотического деления, обеспечивая потенциал для непрерывного экспрессии генов в трансдуцированных клеток – мишеней и органов 12-14. Тем не менее, многие виды ретровирусов инфицируют только делящиеся клетки, и их эффективность в непролиферирующих клетках очень низкий 15. Это ограничивает их полезность для доставки генов. Лентивирус является род семейства ретровирусы. В отличие от других ретровирусов, Лентивирус может заражающие как разделительные и не делящиеся клетки и широко используется для переноса генов в постмитотическими и высоко дифференцированных клеток 16. Жизненный цикл Лентивирус также включает в себя интеграцию векторной ДНК в геном хозяина. Таким образом, Лентивирус-опосредованной доставки генов обеспечивает стабильную и длительную экспрессию трансдуцированных генетических элементов 16-18. Тем не менее, эта функция может представлять собой двойную-еdged меча в использовании этих вирусов манипулировать экспрессию генов, а интеграция векторной ДНК, может привести к инсерционного мутагенеза в клетках-хозяевах и может вызвать артефактного эффекты. Аденовирус является еще одним широко используемой системой доставки генов. В отличие от ретровирусов и лентивирусов, аденовирусов неинтегрированы и не мешают геномного целостности клеток – хозяев , 8,10,11,19. Кроме того, аденовирусы могут трансфекцию ДНК во многие типы клеток, и инфекция не зависит от активной клеточного деления 19. Другой важной характеристикой аденовирусов является легкость очистки вектора, как вирусные векторы имеют возможность быть воспроизведен 19,20. Тем не менее, основной нюанс этой системы является то, что аденовирус – инфекция может вызвать сильный иммунный ответ в клетках – мишенях и органов 19, ограничивающей его применение во многих исследованиях, в частности , в исследованиях по генной терапии.
По сравнению с этими различного типаs вирусных векторов, рекомбинантный аденосателлитные вирус (Раав) , как представляется , система доставки 21,22 идеальным гена. Он обладает минимальной иммуногенность и патогенность 23,24. Кроме того, Раав инфицирует широкий спектр типов клеток, в том числе и как разделяющего непролиферирующих клеток. В большинстве случаев Раав не интегрируется в хост геномов; Таким образом, риск нежелательных генетических или геномных изменений в клетках – мишенях является низким 22.
В последнее время системы Раав были успешно использованы для доставки в естественных условиях ДНК , кодирующей белки, микроРНК, shRNAs и Crispr-gRNAs в сердечной мышцы мыши 23,25-29. Эта методика способствовала фундаментальных исследований и исследований генной терапии в области сердечно-сосудистых исследований. Здесь подробная процедура генерации векторов rAAV9, которые эффективно сверхэкспрессируют или нокдауна генов, представляющих интерес в сердцах мышей было описано. Протокол обеспечивает простой и эффективный методманипулируя экспрессию генов сердца в мышиных экспериментальных моделях.
Важно, чтобы свести к минимуму нежелательную ITR рекомбинации во время плазмидной конструкции. Перед созданием вируса, всегда нужно следить за целостностью ITR из AAV плазмиды с помощью рестрикции переваривания и электрофореза в агарозном геле. Невозможно получить 100% интактного плазмид, ?…
The authors have nothing to disclose.
We thank Dr. Zaffar Haque for careful reading of the manuscript. We thank Drs. Masaharu Kataoka and Gengze Wu for discussions and help. Work in the Wang lab is supported by the American Heart Association, Muscular Dystrophy Association, and NIH (HL085635, HL116919, HL125925).
Polyethylenimine, Linear (MW 25,000) | Polysciences, Inc. | #23966-2 | |
Tube, Polypropylene, 36.2 mL, 25 x 87 mm, (qty. 56) | Beckman Coulter, Inc | # 362183 | |
Nuclease, ultrapure | SIGMA | #E8263-25KU | |
Density Gradient Medium(Iodixanol) | SIGMA | #D1556-250ML | |
Centrifugal Filter Unit with Ultracel-100 membrane | EMD Millipore Corporation | #UFC910008 | |
Laboratory pipetting needle with 90° blunt ends,gauge 14, L 6 in., nickel plated hub | SIGMA | #CAD7942-12EA | |
Poloxamer 188 solution (Pluronic® F-68 solution) | SIGMA | P5556-100ML | |
Proteinase K | SIGMA | 3115828001 | |
DNase I | Roche | 10104159001 | |
Centrifuge machine | Thermo Scientific | 75004260 | |
Centrifuge System | Beckman Coulter | 363118 | |
Ultracentrifuge | Beckman Coulter | ||
DMEM medium | Fisher Scientific | SH30243FS | |
Fetal Bovine Serum | Atlanta Biologicals | S11150 | |
rAAV9 vector | Penn Vector Core | P1967 |