在进化的场景分类(空间隔离)的作用,可以在允许控制的空间分布调整实验室使用简单微生物系统进行检查。通过修改创始人细胞密度时,各品种水平可在枯草芽孢杆菌的菌落生物膜使用荧光标记的细菌菌株进行可视化。
Microbes provide an intriguing system to study social interaction among individuals within a population. The short generation times and relatively simple genetic modification procedures of microbes facilitate the development of the sociomicrobiology field. To assess the fitness of certain microbial species, selected strains or their genetically modified derivatives within one population, can be fluorescently labelled and tracked using microscopy adapted with appropriate fluorescence filters. Expanding colonies of diverse microbial species on agar media can be used to monitor the spatial distribution of cells producing distinctive fluorescent proteins.
Here, we present a detailed protocol for the use of green- and red-fluorescent protein producing bacterial strains to follow spatial arrangement during surface colonization, including flagellum-driven community movement (swarming), exopolysaccharide- and hydrophobin-dependent growth mediated spreading (sliding), and complex colony biofilm formation. Non-domesticated isolates of the Gram-positive bacterium, Bacillus subtilis can be utilized to scrutinize certain surface spreading traits and their effect on two-dimensional distribution on the agar-solidified medium. By altering the number of cells used to initiate colony biofilms, the assortment levels can be varied on a continuous scale. Time-lapse fluorescent microscopy can be used to witness the interaction between different phenotypes and genotypes at a certain assortment level and to determine the relative success of either.
在过去的几十年,微生物已被确认为与各种生态系统在地球上1,2有关的社会团体。相反在一般实验室实践中使用的浮游培养物,在环境中的微生物显示根据对生态环境的空间社区结构的一个不同的范围。简单微生物系统可以用来了解空间结构的社会互动3,4的进化的结果。同时使用真核生物和原核生物模型系统在过去的2 – 3年的出版物强调空间结构对合作的稳定性微生物种群内5-8的影响。此外,预留的相互作用中的微生物, 如代谢跨喂养,也可能改变互动的合作伙伴9-11的空间分布。空间结构的这些研究的影响是使用表面附着固着细胞居住在这样大多审查-called生物膜或在菌落生长的琼脂培养基的表面上。导致高空间分类遗传漂在微生物菌落观察,其中在细胞分裂介导的扩张导致一系列的遗传瓶颈,导致某些克隆linages 12高的局部固定概率边缘养分枯竭。遗传漂变可以使用,因此,研究空间隔离的微生物菌落的作用。
在环境中,生物膜是由自产聚合物基质13包围多种类的社区。生物膜的结构,功能和稳定性取决于社会交往的复杂网络,其中的细菌进行信号交换,基质成分和资源,或争夺空间和使用的毒素和抗生素的营养物质。 枯草芽孢杆菌是一种土壤住宅和根定殖细菌,开发高度组织上生物膜社区14。类似于社会昆虫,B.芽孢杆菌细胞雇佣劳动力战略的一个部门,开发细胞外基质的生产者和食人族,运动细胞,休眠孢子和其他细胞类型15,16亚群。分化过程是动态的,并且可以通过环境条件17,18被改变。
由细菌表面定植策略可以在实验室条件下在生长培养基修改琼脂浓度容易操纵。在低琼脂水平(0.2-0.3%),窝藏细菌鞭毛活跃能游泳,而半固体琼脂(0.7-1%琼脂)有利于带动鞭毛社区传播,称为蜂拥19-21。在没有鞭毛的,某些细菌菌株能够通过滑动, 即依赖于生长的人口膨胀由多糖基质和其他分泌疏水蛋白的化合物22-24便利,以便移到半固体介质。最后,细菌这是capabl硬琼脂培养基(1.2-2%)14,17,25生物膜发展形式架构复杂的菌落如虽然这些性状是通过精确调整的条件,在自然栖息地在实验室中检测了这些表面传播的策略可能逐渐从一个过渡到另一个取决于环境条件26。而单一的基于细胞运动是在革兰氏阳性和阴性菌27,B的复杂菌落生物膜的空气-液体界面生物膜发展的开始期间临界枯草不受鞭毛运动28的删除。然而,B的发育过程中的空间组织枯草菌落生物膜取决于用于发起生物膜8的细菌接种物的密度。
在这里,我们使用B.枯草表明,表面殖民化过程中空间隔离取决于种群水平motili机制TY( 即蜂拥或滑动),和菌落生物膜发展取决于创始人的细胞密度。我们提出了可以适用于连续监测微生物生物膜生长,表面定植和品种在宏观尺度的荧光显微镜工具。另外,提出了一种定量方法来确定相对应变丰度的人口。
细菌的荧光工具箱的可用性促进不仅异质基因表达30,31和蛋白定位32的研究,但还菌株的空间分布的群体8内的分析。具有足够不同激发和发射波长的荧光标记物允许清楚本地化两株混合时,否则是无法区分彼此。所描述的协议可以被用于观察菌株或物种间在混合培养物中的人口动态, 例如竞争实验或协同作用。确定相对丰度的荧光标记的菌株在混合群体的能力并不限于表面附蜂拥,滑动,或者生物膜集落,但是也可以用于其他多细胞生物膜系统,包括淹没,流通池或空气介质接口生物膜27,33-35。
_content“>虽然提出的技术是,以检测应变和设计竞争实验的空间分布的有力工具,它也允许以下扩大菌落基因表达的异质性。这里所描述的培养条件适用于枯草芽胞杆菌和对扩张的确切参数琼脂介质可能,需要为其它物种或菌株20的优化。在孵育室放置样品而成像允许实验者跟随人口动态时刻虽然应当重视的孵育期间在腔室中的湿度水平。此处所描述的技术还需要检测细菌菌株的遗传修饰,使得该菌株表达可以从彼此区分的荧光标记。此外,除了具有不同激发和发射光谱时,建议这两个选择的荧光标记物也有类似的定量微米的产率和在一个水平相当表示( 即发射吸收的光子的比率)。此外,在时间的相对强度的变化可被测量并归一化到一个实验的早期时间点。的相对增加或减少可以与不同的量子效率不同的荧光团之间可以进行比较。对于所提出的实验系统,不同的绿光和红色荧光蛋白先前测试36,37选择为可以在B中检测出的最优化的荧光对枯草 。最佳曝光时间应为每个荧光蛋白和样品来确定。可能需要一定的细胞密度或细胞的多个层的人口内有效地检测该信号。某些荧光蛋白可能具有在细菌细胞由于低效的表达和/或蛋白质的翻译,因此低量子产率低的强度。这种低效率的荧光标记物可以ř得出该系统的灵敏度和扩大检测细菌菌株可能导致细胞毒性由激发光所需要的时间。的荧光强度可以通过改变用于表达荧光报道编码基因的启动子作相应的修改。的表达水平太高可能导致荧光蛋白导致对细菌有害健身成本的不必要的生产过剩。当执行竞争实验,应该考虑特定荧光蛋白生产中的单元的成本。对照实验,其中荧光标记的竞争菌株或在两个基因株只有在他们的荧光标记的不同会相互竞争之间交换,总是需要来确定对一个标记任何偏见。在细胞内的荧光蛋白的寿命也可能会影响测量的强度。此外,某些细菌物种的自发荧光S可能会发生需要使用比这里所描述的其它不同的荧光标记物。
精确地确定不同细菌菌株的空间分布与丰度,从第一荧光蛋白始发,同时使用用于第二荧光标记物,反之亦然荧光滤波器背景信号应单独对单一样品进行测试(含有产生仅一个标记的细菌)。这允许重叠的荧光信号强度的减法。重要的是,作为立体显微镜从膨胀菌落上述记录荧光信号,所提出的协议是方便的确定在两个维度的空间排列。膨胀细菌群体的体系结构,可能会导致不同的荧光水平( 即皱纹状结构可能包含更多的细胞显示更高的局部荧光强度)。因此,图像的描述分析ðetermines的空间分布,而不是大量的应变的一定位置内。上一页协议描述的样品制备用于细菌菌落38蜂拥人口动态20或荧光成像,但我们的协议结合了这些技术。其它显微技术允许人口结构的三维分辨率( 例如共焦激光扫描显微镜39,40或结构照明显微镜41)的观察可以应用于具有增加结构的复杂性的样品。这些附加技术也支持菌株31用立体显微镜不可用的单细胞基于检测。
The authors have nothing to disclose.
这项工作是由德意志研究联合会(DFG)资助的资助KO4741 / 3-1。此外,Á.TK实验室是由玛丽·居里罗多夫斯卡集成事业补助金(PheHetBacBiofilm),并授予来自DFG KO4741 / 2-1的支持。 TH,AD,RG-M,和EM被国际马克斯·普朗克研究学院分别,亚历山大·冯·洪堡基金会,理事会全国国立西恩西亚ŸTECNOLOGIA,德意志学术交流中心(国家科学技术委员会-DAAD)和JSMC奖学金支持。
Lennox Broth (LB) | Carl Roth GmbH | X964 | |
Agar-agar, Kobe I | Carl Roth GmbH | 5210 | |
Petri dish (90 mm diameter) | any | NA | Use Petri dishes without ventillation cams |
Petri dish (35 mm diameter) | any | NA | Use Petri dishes without ventillation cams |
Difco Nutrient Broth | BD Europe | 234000 | |
KCl | any | NA | |
MgSO4 7H2O | any | NA | |
Ca(NO3)2 4H2O | any | NA | |
MnCl24H2O | any | NA | |
FeSO4 | any | NA | |
D-Glucose | any | NA | |
Fluorescence AxioZoom V16 time-lapse microscope | Carl Zeiss Microscopy GmbH | see bellow detailed description | |
AxioZoom V16 Microscope body | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 435080 9030 000 | |
Phototube Z 100:0 for Axio Zoom V16 | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 435180 9020 000 | without eyepieces |
Fluar Illuminator Z mot Fluorescence intermediate tube for Axio Zoom.V16 | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 435180 9060 000 | |
Controller EMS 3 | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 435610 9010 000 | |
System Control Panel SYCOP 3 | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 435611 9010 000 | |
Reflector module Z | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 435180 9160 000 | For Fluar Illuminator Z mot on Axio Zoom.V16 and SYCOP 3 |
Filter set 38 HE eGFP shift free (E) | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 489038 9901 000 | EX BP 470/40, BS FT 495, EM BP 525/50 |
Filter set 63 HE mRFP shift free (E) | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 489063 0000 000 | EX BP 572/25, BS FT 590, EM BP 629/62 |
Mount S | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 435402 0000 000 | |
Objektive PlanApo Z 0,5x/0,125 FWD 114mm | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 435280 9050 000 | 164mm parfocal length; M62x0.75 thread at front |
Coarse/fine drive with profile column | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 435400 0000 000 | 490 mm, 10kg load capacity, compatible with stand bases 300/450 |
Stand base 450 | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 435430 9902 000 | |
Cold-light source Zeiss CL 9000 LED CAN | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 435700 9000 000 | |
CAN-bus cable | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 457411 9011 000 | 2.5 m length |
Slit-ring illuminator | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 417075 9010 000 | d=66 mm |
Flexible light guide 1500 | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 417063 9901 000 | 8/1000 mm |
Illumination Adapter for light guide | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 000000 1370 927 | |
Lightguide HXP with liquid fill | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 000000 0482 760 | ø3mm x 2000mm |
Camera Adapter 60N-C | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 426113 0000 000 | 2/3" 0.63x |
High Resolution Microscopy Camera AxioCam MRm Rev. 3 FireWire | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 426509 9901 000 | |
AxioCam FireWire Trigger Cable Set | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 426506 0002 000 | for direct shutter synchronization |
ZEN pro 2012 | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 410135 1002 120 | Blue edition, requires min. Windows 7 64-bit |
ZEN Module Time Lapse | Carl Zeiss Microscopy GmbH | 410136 1031 110 | |
Standard Heating Stage Top Incubator | Tokai Hit | INUL-MS1-F1 | |
Zeiss Stereo Microscope Base Adapter | Tokai Hit | MS-V12 | |
Softwares | |||
Image J | National Institute of Health, Bethesda, MD, USA | v 1.49m | |
BioVoxxel plugin | BioVoxxel | http://www.biovoxxel.de/development/ |