هنا، يتم وصف أسلوب باستخدام غشاء النظام العدوى قابلة للاختراق القائم على إدراج لدراسة آثار ستربتوليزين S، السم يفرز التي تنتجها المجموعة العقدية، على القرنية. هذا النظام يمكن تطبيقه بسهولة لدراسة البروتينات البكتيرية يفرز الأخرى على مختلف أنواع الخلايا المضيفة خلال العدوى.
العديد من مسببات الأمراض البكتيرية تفرز السموم قوية للمساعدة في تدمير الأنسجة المضيف، لبدء التغييرات يشير في الخلايا المضيفة أو التلاعب استجابات جهاز المناعة خلال العدوى. على الرغم من أساليب وضعت لتنقية بنجاح وإنتاج العديد من هذه العوامل الفوعة مهمة، لا تزال هناك العديد من السموم البكتيرية التي بنية فريدة من نوعها أو تعديلات واسعة النطاق بعد متعدية جعل من الصعب تنقية ودراسة في نظم في المختبر. وعلاوة على ذلك، حتى عندما يمكن الحصول على السم النقي، وهناك العديد من التحديات المرتبطة بدراسة آثار محددة من السم في ظل الظروف الفسيولوجية ذات الصلة. الأكثر في نماذج زراعة الخلايا في المختبر يهدف إلى تقييم آثار السموم البكتيرية يفرز في الخلايا المضيفة تنطوي على احتضان الخلايا المضيفة مع جرعة لمرة واحدة من السم. هذه الأساليب سيئة تقارب ما الخلايا المضيفة في الواقع تجربة أثناء وجود عدوى، حيث يتم إنتاج السم باستمرار من قبلالخلايا البكتيرية والسماح لتتراكم تدريجيا خلال العدوى. يصف هذا البروتوكول تصميم نظام عدوى بكتيرية أساس إدراج-نفاذية الغشاء لدراسة آثار ستربتوليزين S، مادة سامة قوية تنتجها المجموعة العقدية، على القرنية الطلائية الإنسان. هذا النظام تحاكي بشكل وثيق البيئة الفسيولوجية الطبيعية خلال العدوى من الطرق حيث السم النقي أو supernatants البكتيرية يتم تطبيقها مباشرة إلى الخلايا المضيفة. الأهم من ذلك، كما يلغي هذا الأسلوب التحيز الردود المضيف الذي من المقرر أن الاتصال المباشر بين البكتيريا والخلايا المضيفة. وقد استخدم هذا النظام لتقييم فعالية آثار ستربتوليزين S (SLS) على المضيف سلامة الغشاء، والسلامة الخلوية، والاستجابات يشير الخلوية. هذه التقنية يمكن تطبيقها بسهولة لدراسة عوامل الفوعة أخرى يفرزها على مجموعة متنوعة من أنواع الخلايا المضيفة الثدييات للتحقيق في دور معين من البكتيريا تفرز عامل دأورينغ مسار العدوى.
فهم وظيفة عوامل الفوعة البكتيرية في سياق عدوى الخلية المضيفة هو التركيز الرئيسي للأبحاث المرضية البكتيرية. العديد من مسببات الأمراض البكتيرية تفرز بنشاط السموم والعوامل القابلة للذوبان أخرى للمساعدة في تدمير الأنسجة المضيف، لبدء التغييرات يشير في الخلايا المضيفة أو التلاعب استجابات جهاز المناعة خلال العدوى 1-10. على الرغم من أساليب وضعت لتنقية بنجاح وإنتاج العديد من هذه العوامل الفوعة الهامة للدراسة، وبعض المنتجات البكتيرية لديها هياكل فريدة من نوعها أو تعديلات واسعة النطاق بعد متعدية التي تجعلهم مرشحين المتمردة لطرق تنقية، وبالتالي لا يمكن دراستها بمعزل استخدام في أنظمة المختبر . على سبيل المثال، المجموعة الأولى العقدية، والبكتيريا الممرضة مسؤولة عن عدد لا يحصى من الأمراض بدءا من البلعوم إلى التهاب اللفافة الناخر ومتلازمة الصدمة السامة، وتنتج يفرزالسم البكتيري المعروف باسم ستربتوليزين S (SLS) 11-17. يتم ترميز هذا الببتيد أنتجت ribosomally من قبل الكتلة الجين ستربتوليزين S المرتبطة بها (تبلد)، وتشير التقديرات إلى أن المنتج ناضجة لتكون 2.7 كيلو دالتون في حجم 14-17. وبديئة الذيفان، المشفرة بواسطة الملحمة، يتم تعديل بعد translationally من قبل العديد من الأنزيمات (SagB، SagC، وSAGD) لإنتاج شكل ناضج، وظيفية 15-17. وتعقد هذه التعديلات بعد متعدية إلى جانب تسلسل الأحماض الأمينية غير عادية السم لجعلت السم يتنافى مع كل الجهود توضيح تنقية والهيكل الذي تم الشروع حتى الآن 15،17. هذه التحديات لها تعقيد الجهود الرامية إلى تحديد دور محدد من هذه المادة السامة في التسبب المضيف.
في الحالات التي يكون فيها إعداد السموم تنقيته أو عوامل أخرى يفرز إما معقدة أو غير ممكن، وآليات لتوضيح تقليديا درس وظيفة من هذه المنتجات من خلال إعداد supernatants البكتيرية التي تمت تصفيتها، والتي يتم تطبيقها على الخلايا المضيفة 18-20. وهناك العديد من التحديات المرتبطة مع هذه التقنية. أولا، وكثير من هذه العوامل يفرز، بما في ذلك SLS، لا في المحافظة على النشاط الأقصى أو ثابت عند تخزينها وتطبيقها على الخلايا المضيفة في وقت لاحق. بالإضافة إلى ذلك، عندما يتم جمع supernatants عند نقطة زمنية واحدة ومن ثم تطبيقها على الخلايا المضيفة، فإنه من الصعب تحديد مدى الفسيولوجية والتوصل إلى استنتاجات مباشرة عن عملية العدوى الطبيعية، حيث يسمح للعوامل يفرز تتراكم خلال العدوى ل تركيز ذات الصلة من الناحية الفسيولوجية. ينطبق هذا التحدي الثاني ليس فقط لاستخدام supernatants البكتيرية، ولكن أيضا لاستخدام السموم تنقيته في دراسات الخلية المضيفة 1 – 3،8. لمعالجة هذه القضايا، وINSE نفاذية الغشاءوقد تم تطوير نظام العدوى مقرها غ لتقييم آثار SLS على الخلايا المضيفة بطريقة تحافظ على النشاط السم الأمثل وأيضا يزيل متغير من الاتصال المباشر بين البكتيريا والخلايا المضيفة. في هذا النظام، وتزرع الخلايا الظهارية الإنسان في أحادي الطبقة في الغرفة السفلى من مجلسين جيدا، وأدخلت البكتيريا في الغرفة العليا من نفس البئر. غشاء مسامي (0.4 ميكرومتر المسام) يفصل بين الغرف العلوية والسفلية، مما يسمح للعوامل يفرز التي يتم تبادلها بين الغرفتين ولكن منع مرور البكتيريا. وقد سمح هذا النظام لتقييم فعالية الاستجابات المضيفة التي ترجع إلى مكونات بكتيرية يفرز حقت فقط حين القضاء على الردود التي قد تحدث من خلال الاتصال المباشر أثناء عدوى المجموعة. على الرغم من العوامل البكتيرية يفرز أخرى إلى جانب SLS يمكن أن تمر أيضا من خلال غشاء مسامي، واستخدام لوحة متحولة إسوي بما في ذلك النوع البري (WT)، وSLS-KNockout (ΔsagA) ويكمل سلالة الملحمة (ΔsagA + الملحمة) يسمح لتقييم دقيق للردود المضيفة التي هي بدقة 21 تعتمد SLS.
على الرغم من أن أنظمة إدراج غشاء نفاذية مماثلة قد استخدمت لدراسة العوامل يفرز المشاركة في الالتهابات الفيروسية، بيولوجيا السرطان، وجهاز المناعة الهجرة الخلية 22 – 26، عدد قليل من الدراسات التي تنطوي على التفاعلات البكتيرية مع الخلايا المضيفة وقد استخدمت هذه الطريقة 6،27،28. حتى الدراسات التي تستخدم هذه النظم لاستكشاف التفاعلات بين البكتيريا والخلايا المضيفة وركزت في المقام الأول على هجرة الخلايا الالتهابية أو البكتيريا من خلال أحادي الطبقة الظهارية أو البطانية مطلي على إدراج نفاذية الغشاء. النظام العدوى أساس إدراج غشاء نفاذية الموصوفة هنا هي طريقة بسيطة وفعالة تعتمد على الفصل بين البكتيريا والخلايا المضيفة عبر غشاء مسامي لتقييم EFFEسنت من السم يفرز، SLS، على سلامة غشاء المضيف، والسلامة الخلوية المتنقلة نقل الإشارة، والعوامل الخلية المضيفة يفرز. هذه التقنية يمكن تكييفها وفقا لدراسة عوامل الفوعة أخرى يفرزها على مجموعة متنوعة من أنواع الخلايا المضيفة الثدييات للتحقيق في دور عامل جرثومي محدد على مدى وجود عدوى.
هنا يتم وصف أسلوب باستخدام غشاء النظام العدوى قابلة للاختراق القائم على إدراج لدراسة آثار السم البكتيري ستربتوليزين S على القرنية الطلائية الإنسان في النظام في المختبر. ويمكن تكييف هذا البروتوكول لدراسة عوامل الفوعة البكتيرية يفرز الأخرى، وكذلك أنواع الخلايا المضيفة البديلة. ويوفر هذا النظام وضعت مؤخرا العديد من المزايا أكثر من الأساليب التجريبية التي تستخدم السموم النقاء أو supernatants البكتيرية التي تمت تصفيتها 1 – 3،8،18 – 20. ويوفر هذا النظام قابلة للاختراق على أساس إدراج غشاء جرعة حافظت باستمرار للسموم البكتيريا ذات الصلة لاستضافة الخلايا كما يتم إنتاجه، والذي يسمح النشاط السم القصوى التي يتعين الحفاظ عليها وأيضا يزيد من تناسق بين التجارب. بالإضافة إلى ذلك، فإن هذا النظام تحاكي بشكل وثيق الظروف الفسيولوجية من خلال السماح للعامل يفرز تتراكم مع مرور الوقت كما تقدم العدوى وeliminating الحاجة لتحديد تعسفي تركيز السم محددة لتطبيقها على الخلايا المضيفة. وعلاوة على ذلك، فإن هذا النظام أيضا أن يكون وسيلة للمحققين لتقييم ما إذا كان يتم تسليم أحد العوامل البكتيرية التي تهم الخلايا المضيفة بطريقة تعتمد على الاتصال. في كثير من الأحيان اختبار الاتصال الاعتماد من خلال جيل من المسوخ البكتيرية إسوي نقص في الالتزام أو من خلال استخدام الكواشف التي تحول دون التزام. ان النظام المذكور هنا توفر بديلا بسيط لتكمل أو استبدال هذه الأساليب التقليدية.
بالإضافة إلى تطبيقات اختبار هو موضح في القسم 5 من البروتوكول، والتطبيقات الأخرى التي هذا النظام العدوى يمكن أن تتكيف بسهولة تشمل جمع العينات لصفائف خلوى والمقايسات إليسا. في كل من هذه الحالات، يمكن اتباع بروتوكول مماثل لتلك التي وصفها لفحوصات الإفراج LDH. وإن لم يكن هو موضح هنا، وقد استخدم هذا النظام لجمع عينات بشكل فعال الخلية المضيفة أن يكونnalyzed التدفق الخلوي. في هذا التطبيق، تتم إزالة إدراج نفاذية الغشاء بعد فترة العدوى، ويتم غسل الخلايا لإزالة مستنبت الخلية، ويتم تطبيق التربسين السماح مجموعة من الخلايا لتحليلها. الفصل المادي من البكتيريا من الخلايا المضيفة مفيد بشكل خاص لهذا التطبيق لأنه يساعد على منع تكوين مجاميع كبيرة تتألف من البكتيريا الالتزام والخلايا المضيفة التي يمكن أن تتداخل خلاف مع عد الخلايا دقيق من خلال قياس التدفق الخلوي.
على الرغم من أن لوحظ استجابة المضيف متسقة للغاية عند مقارنة نتائج نفاذية الغشاء القائم على إدراج الدراسات الإصابة بفيروس دراسات عدوى التقليدية المباشرة، وقد لوحظ بعض الاختلافات الملحوظة في حركية ردود المضيف هذه 21. على سبيل المثال، التغييرات في إشارة المضيف وغشاء القائم على السمسة تأخذ 30-50٪ وقتا أطول للتحدث في نفاذية الغشاء نموذج العدوى القائم على إدراج من كورالاستجابة نماذج إصابة مباشرة. لأن الغشاء النظام القائم على إدراج نفاذية يتطلب المتوسطة ليتم تطبيقها على المقصورات العلوية والسفلية من كل جانب، ونظام متطور للدراسات الموصوفة هنا يتطلب زيادة بنسبة 30٪ في إجمالي حجم المتوسط في مقابل جيد لالمقابل نماذج العدوى المباشرة المستخدمة سابقا 21. هذا الاختلاف في إجمالي حجم المتوسط، إلى جانب زيادة المسافة بين البكتيريا والخلايا المضيفة عندما يحظر الاتصال المباشر، من المرجح أن يزيد من الوقت الذي يستغرقه لSLS لنشر من خلال وسيلة للوصول إلى الخلايا المضيفة والحصول على الآثار الملاحظة. بالإضافة إلى ذلك، فإن النظام نفاذية أساس إدراج غشاء يزيل العديد من العوامل غاز الفوعة التي من المحتمل أن تسهم في استضافة تلف الخلايا. غياب هذه العوامل الإضافية في هذا النظام قد يسهم في تأخير المضيف موت الخلايا وبدء الأحداث المضيف يشير مقارنة للإصابة المباشرة 21 أيضا. وينبغي النظر في هذه العواملعند تصميم التجارب لتقييم مكونات بكتيرية يفرز أخرى.
للتعرف على الظروف الأكثر وضوحا لاختبار آثار العوامل البكتيرية يفرز في الخلايا المضيفة، واختبار مجموعة من النقاط الزمنية لكل تطبيق نظام العدوى القائم على إدراج نفاذية الغشاء يوصى. من المهم النظر في ماهية الظروف عامل الفوعة معين من الفائدة تنتج على النحو الأمثل (على سبيل المثال مرحلة السجل، مرحلة ثابتة، في استجابة لإشارات بيئية معينة، وما إلى ذلك) من أجل مراقبة بنجاح آثاره. في التجارب التي تركز على تقييم التغيرات في البروتينات المضيف يشير، كان من الضروري لتحديد نقاط الوقت الذي يسمح الوقت الكافي لSLS للوصول إلى الخلايا المضيفة وإلى أن يتم إنتاجها بكميات كافية للحث على إشارات تغيير 21. في نفس الوقت، وتقييم التغييرات في المضيف يشير حاجة إلى أن تتم قبل permeabilization غشاء الناجم عن SLS، لأن ذلك أثر جomplicates جمع لست] الخلية المضيفة لتحليلها. موت الخلايا الناجم عن SLS يمكن ملاحظة على النحو الأمثل في كل غشاء المباشر ونفاذية نماذج العدوى القائم على إدراج بعد عدة ساعات من بدء الأحداث يشير ذكرت 21. وعلاوة على ذلك، في اختيار الوقت من نقاط الاهتمام، فمن المهم أيضا ضمان أن البكتيريا التي تجري دراستها غير قادرة على اختراق الغشاء إدراج يسهل اختراقها خلال فترة الدراسة. إنتاج بعض المكونات البكتيرية على مدى فترة طويلة قد تعرقل سلامة الغشاء وتسمح بمرور البكتيريا إلى المقصورة أقل. لتحديد ما إذا كان هذا هو وجود مشكلة محتملة في نظام الفائدة، ويمكن تطبيق السلالات البكتيرية التي يتعين دراستها إلى الغرفة العليا من نظام نفاذية أساس إدراج غشاء على مجموعة من النقاط الزمنية. في كل نقطة زمنية، وإدراج يمكن إزالتها بعناية والمتوسطة من الغرفة السفلى يمكن جمعها والاستفادة منها في التعاون مستعمرة القياسيةفحص unting (انظر القسم 1.5). إذا لم تتشكل أي مستعمرات من مستنبت الخلية في المقصورة أقل، يمكن افتراض الغشاء إدراج إلى أن منع بشكل فعال مرور البكتيريا في نقطة زمنية والحمولة الجرثومية التي تم اختبارها.
عنصر آخر التصميم التجريبي الذي من المرجح أن تتطلب الأمثل للتحليل الفعال للعوامل الجرثومية يفرز هو وافر من العدوى (وزارة الداخلية). تشير وزارة الداخلية إلى نسبة الخلايا البكتيرية في الخلية المضيفة، وبالتالي يتأثر confluency الخلية المضيفة في وقت الإصابة وعدد من مستعمرة بكتيرية (كفو) يتم تطبيقها على الخلايا. في هذه الدراسات، وقد نمت الخلايا الكيراتينية إلى 90٪ confluency، الذي سمح لهذه الخلايا لتشكيل أحادي الطبقة متماسكة مع منعطفات ضيقة سليمة. دراسة متأنية للمنظمة الفسيولوجية للخلايا المضيفة إلى دراسة ضروري لتحديد confluency المناسب لإجراء التجارب العدوى. مرة واحدة في approprعدد iate من الخلايا المضيفة في يتحدد بشكل جيد، وهو كفو البكتيرية مناسبة يمكن أن تحسب على أساس قبالة وزارة الداخلية المطلوبة. في الدراسات الموصوفة هنا، تم تطبيق غاز إلى الخلايا المضيفة في وزارة الداخلية من 10. مناسبة زارة الداخلية سوف تختلف مع بكتيريا مختلفة والتحليلات المتابعة المطلوبة. وبداية منخفضة وزارة الداخلية هو عادة أكثر أهمية من الناحية الفسيولوجية ويسمح للعامل البكتيريا التي تهم تتراكم ببطء بما فيه الكفاية لالتقاط بعض التغييرات الطفيفة في إشارة الخلية المضيفة قبل تغييرات جذرية في بقاء الخلية المضيفة هي واضح. وتستخدم موييس العليا في العديد من الدراسات التي تقيم السمية الخلوية، ولكن يمكن أيضا أن هذا التأثير أن يتحقق من خلال البدء مع وزارة الداخلية منخفضة والسماح للالعدوى إلى التقدم لفترة أطول من الزمن. ومن المهم لتحديد كفو دقيقة إلى النتيجة الطبيعية الكثافة البصرية لجميع السلالات البكتيرية لفحصها، كما المسوخ إسوي قد يكون لها معدل نمو تغير مقارنة البرية من نوع البكتيريا، وبالتالي قد تتطلب أن تضاف إليها كفو أعلى أو أقل لكل بئر لضمان المقارنة المناسبة للاستجابة المضيف بين السلالات. في الحالات التي تكون فيها الخلايا المضيفة الثدييات التي تجري دراستها هي قادرة على قتل البكتيريا أو تمنع نموها أو إذا اشتبه النمو nonsynchronous بين السلالات البكتيرية، فإنه قد يكون من المفيد إجراء دراسات لتقييم الحمل البكتيري النهائي في نهاية فترة العدوى أيضا. هذا يمكن أن يتحقق من خلال جمع محتويات إدراج قابلة للاختراق وأداء مستعمرة العد فحص مماثلة لتلك التي وصفها في القسم 1.5 من هذا الإجراء.
اختيار الآبار بحجم مناسب للفحص المطلوب من المهم للحصول على أفضل النتائج أيضا. هي إدراج غشاء نفاذية متاحة في مجموعة متنوعة من الأحجام، ولكن لوحظت نتائج أكثر اتساقا للدراسات هو موضح هنا باستخدام إدراج مصممة لمدة 24 جيدا و 6 لوحات زراعة الأنسجة بشكل جيد. هذه الأحجام إدراج سهلة نسبيا للتعامل مع ملقط معقم، وسهولة التلاعب أمر بالغ الأهمية في منعجي نقل غير المرغوب فيها من البكتيريا من المقصورة العليا إلى المقصورة أقل من البئر. لالتجارب التي تنطوي على جمع لست] الخلية المضيفة، وتوفر 6 أطباق جيدا على عدد الخلايا المناسب لكل حالة لمعظم التحليلات وكبيرة بما يكفي لاستيعاب كاشطات خلية لجمع العينات. لفحوصات السمية الخلوية حيث تقوم الخلايا المضيفة لا تزال ملتصقة وصفت مع الفلورسنت أو صبغ colorometric التي يمكن قياسها على قارئ لوحة (على سبيل المثال إيثيديوم homodimer الفحص، التريبان مقايسة الاستبعاد الزرقاء)، واستخدام 24 لوحة جيدا مع إدراج المقابلة هو موصى به. لالتجارب التي مستنبت الخلية سيتم جمعها وتحليلها (على سبيل المثال إطلاق رابطة حقوق الإنسان، دراسات خلوى) إما 24 جيدا أو 6 لوحات جيدا يمكن أن تستخدم، على الرغم من أن الآبار الصغيرة عادة ما توفر كميات عينة كافية لهذه التحليلات وتقليل استخدام المطلوبة الكواشف. وعموما، فإن هذه الطريقة تنوعا للغاية ويمكن تكييفها حسب الحاجة لإعداد sampl الدراسيوفاق للعديد من التطبيقات المتابعة.
The authors have nothing to disclose.
We thank our fellow Lee Lab colleagues, who provided valuable insight and expertise that greatly assisted this research. This work was supported by the Young Innovator Award from the National Institute of Health, awarded to S.W. Lee (NIH-1DP2OD008468-01). R.A. Flaherty is supported by the Albertus Magnus Fellowship provided by Dr. Robert C. Boguslaski, and a teaching assistantship through the Eck Institute for Global Health at the University of Notre Dame.
Todd-Hewitt broth | Acumedia | 7161A | Use appropriate broth for bacterial species of interest. |
BioSpectrometer | Eppendorf | basic model | Any UV-Vis spectrophotometer is suitable. |
Petri Dishes | Fisher Scientific | FB0875713 | Other brands are suitable. |
Agar | Sigma | A1296-1kg | Other brands are suitable. |
HaCaT human epithelial keratinocytes | Gift from lab of Victor Nizet. | ||
Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) | Life Technologies | 11995-073 | Use appropriate media for cell line of interest. |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Biowest | S162H | Use appropriate media additives for cell line of interest. |
10cm tissue culture dishes | Nunc | 150350 | Other brands are suitable. |
6 well tissue culture dishes | CytoOne | cc7682-7506 | Other brands are suitable but need to be compatible with the Corning insert. |
24 well tissue culture dishes | CytoOne | cc7682-7524 | Other brands are suitable but need to be compatible with the Corning insert. |
Glass coverslips | Fisherbrand | 12-541-B | These must be autoclaved prior to use for cell plating. |
Phosphate Buffered Saline (PBS) | Gibco | 10010-023 | |
Phenol Red Free DMEM | Life Technologies | 31053028 | Phenol Red Free media is only required for the LDH release assay. |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Fisher Scientific | BP1600-100 | |
L-glutamine | Gibco | 25030149 | Only required to supplement cell culture media for LDH release assay. |
Sodium pyruvate | Gibco | BP356100 | Only required to supplement cell culture media for LDH release assay. |
Collagen-coated 0.4μm Transwell inserts (6 well) | Corning | 3540 | |
Collagen-coated 0.4μm Transwell inserts (24 well) | Corning | 3595 | |
Forceps | Fisher | 3120018 | These must be sterilized with ethanol prior to handeling Transwell inserts. |
Cell scrapers | Fisherbrand | 08-100-241 | These are only required for the collection of cell lysates. |
Paraformaldehyde | Fisher Scientific | 04042-500 | TOXIC. This is only required for immunofluorescence imaging. |
Bicinchoninic acid (BCA) assay kit | Pierce | 23227 | Other protein quantification assays may be used. |
Tris-glycine 4-15% polyacrylamide gels | BioRad | 4561083 | Buffer system and percent polyacrylamide should be selected based on proteins of interest. |
Electrophoresis cassette supplies | BioRad | 1658063 | Only required for Western Blotting. |
Electrophoresis power supply | BioRad | 1645050 | Only required for Western Blotting. |
Western blot transfer cassette | BioRad | Only required for Western Blotting. | |
Polyvinylidene (PVDF) Membrane | EMD Millipore | IPVH00010 | Only required for Western Blotting. |
Tween 20 | Sigma | P1379-500mL | |
Rabbit IgG-HRP secondary antibody | Santa Cruz Biotechnology | sc2030 | The secondary antibody should be determined based on the selected method of detection. |
Mouse IgG-HRP secondary antibody | Santa Cruz Biotechnology | sc2031 | The secondary antibody should be determined based on the selected method of detection. |
Phospho-p38 (T180+T182) MAPK antibody | Cell Signaling | 4511 | Select appropriate primary antibodies based on proteins of interest. |
Total p38 MAPK antibody | Cell Signaling | 8690 | Select appropriate primary antibodies based on proteins of interest. |
Goat anti-rabbit IgG Alexafluor488 | Molecular Probes | A-11034 | Other secondary antibodies may be used for immunofluoresence imaging detection. |
LumiGLO Detection Reagent | KPL | 54-61-00 | Only required for Western Blotting with detection on film. |
Detection film | Biodot | BDB57 | Only required for Western Blotting with detection on film. |
DeltaVision Nikon 90i fluoresence microscope | Nikon | Other fluorescence microscopes are suitable for these analyses. | |
Normal goat serum | Thermo Scientific | 31873 | |
Triton X-100 | Sigma | T9284-500mL | |
DAPI nuclear stain | Cell Signaling | 4083 | Select stains based on specific immunofluorescence applications of interest. |
Rhodamine-phalloidin actin stain | Molecular Probes | R415 | Select stains based on specific immunofluorescence applications of interest. |
Fluoromount-G | Southern Biotech | 0100-01 | Only required for immunofluorescence imaging. |
Ethidium homodimer 1 | Molecular Probes | E1169 | Only required for membrane permeabilization cytotoxicity assay. |
Spectramax M5 Microplate Reader | Molecular Devices | Other microplate readers capable of detecting UV-vis, fluorescence and luminescence may be suitable. | |
Saponin | Sigma | 47036-50G-F | Only required for membrane permeabilization cytotoxicity assay. |
Molecular Probes ATP Determination Kit | Life Technologies | A22066 | Other kits are likely to be suitable. |
Cytotoxicity Detection Kit for LDH release | Roche | 11644793001 | Other kits are likely to be suitable. |
Nonidet P40 Substitute | Sigma | 74385-1L | Other suppliers are suitable. |
HALT Phosphatase Inhibitor Cocktail | Thermo Scientific | 78420B | Other cocktails are likely to be suitable. |
SIGMAFAST Protease Inhibitor Cocktail Tablets, EDTA-free | Sigma | S8830-2TAB | Other cocktails are likely to be suitable. |