Summary

التصوير المباشر ل<em> ذبابة الفاكهة</em> اليرقات Neuroblasts

Published: July 07, 2014
doi:

Summary

هذا البروتوكول تفاصيل طريقة مبسطة تستخدم لإجراء التصوير الخلية الحية في سياق الدماغ اليرقات سليمة. النهج التصوير الخلية الحية لا تقدر بثمن لدراسة الخلايا الجذعية العصبية الانقسامات غير المتماثلة فضلا عن العمليات العصبية والتنموية الأخرى، كشف باستمرار الآليات التي تم تجاهلها سابقا.

Abstract

الخلايا الجذعية تقسيم غير متماثلة لتوليد خليتين ذرية غير متكافئة مع إمكانات مصير: الخلايا الجذعية تجديد الذات وخلية التفريق. نظرا أهميتها في التنمية والمرض، وفهم الآليات التي تحكم وكان انقسام الخلايا الجذعية غير المتماثلة منطقة قوية من الدراسة. لأنهم لين العريكة وراثيا والخضوع لجولات متتالية من الانقسام الخلوي عن مرة واحدة كل ساعة، والخلايا الجذعية في الجهاز العصبي المركزي ذبابة الفاكهة، أو neuroblasts، هي النماذج التي لا غنى عنها لدراسة انقسام الخلايا الجذعية. وتقع على بعد حوالي 100 الخلايا الجذعية العصبية بالقرب من سطح كل من اثنين من فصوص الدماغ اليرقات، مما يجعل هذا النظام نموذجا مفيدا بشكل خاص للدراسات المجهر التصوير الحي. في هذا العمل، نستعرض العديد من الأساليب المستخدمة على نطاق واسع لتصور انقسامات الخلايا الجذعية، ونتناول مزايا وعيوب تلك التقنيات التي توظف فصلها مقابل أنسجة الدماغ سليمة نسبيا. نحن أيضا لدينا simplif التفاصيلبروتوكول العبوات الناسفة المستخدمة لازدراع العقول كلها من يرقات العمر الثالث للتصوير الخلايا الحية والتطبيقات تحليل الثابتة.

Introduction

الخلايا الجذعية الحفاظ على التوازن من التمايز والتجديد الذاتي لتوليد التنوع الخلوية خلال التنمية في وقت مبكر واستبدال الخلايا التالفة في أنسجة البالغين. تنظيم هذا التوازن يمنع كلا من الخسارة والتوسع المفرط للسكان الخلايا الجذعية، التي يمكن أن تؤدي إلى تدهور الأنسجة ضارة أو تكون الأورام.

Neuroblasts (مصلحة الدولة للاحصاء) هي الخلايا الجذعية العصبية درس على نطاق واسع للنظام العصبي المركزي ذبابة الفاكهة (الشكل 1A) أن النموذج الأول خلال المراحل الجنينية 1، 2. مصلحة الدولة للاحصاء الخضوع لدورات متكررة من انقسام الخلايا غير المتماثلة (ACD) لإنتاج خليتين الحظ غير متكافئ: الخلايا الجذعية تجديد الذات وخلية التفريق. ويسترشد ACD بواسطة centrosomes، والعضيات غير الغشائي التي تكون بمثابة مراكز أنيبيب-تنظيم معظم الخلايا 3. خلال الانقسام، NB centrosomes تنظيم وتوجيه الإنقسامية المغزل بين القطبين على طول القمي، القاعدية القطبيةمحور إيتي. على الانقسام لتقسيم NB، المحددات مصير قمية التي تحدد مصير الخلايا الجذعية، والمحددات التي تحدد مصير القاعدية التمايز، وفصل في الخلايا الوليدة غير متكافئة.

في الدماغ المركزي اليرقات، نوعين من مصلحة الدولة للاحصاء يمكن التمييز بين عددهم، والموقف، عامل النسخ التعبير، والنسب الخلية (الشكل 1A) و 4-6. النوع الأول مصلحة الدولة للاحصاء هي الأكثر وفرة، وحوالي 90 منهم ملء الجانبين الأمامي والخلفي من كل الفص البصري في الدماغ 7. هذه مصلحة الدولة للاحصاء التعبير عن عامل النسخ Asense (ASE)، ويتقاسمونها مميز في واحدة NB-تجديد الذات واحد أصغر خلية الأم العقدة (GMC؛ الشكل 1B). كل GMC يخضع لتقسيم محطة واحدة لتوليد الخلايا العصبية أو اثنين الدبقية (الشكل 1B). في المقابل، فإن مصلحة الدولة للاحصاء ثماني النوع الثاني التي تعيش في الجانب الخلفي من كل الفص البصري تفتقر عاصي التعبير 5. أنها تخضع ACDلإنتاج واحد NB-تجديد الذات واحدة السلف العصبية المتوسطة (الشرطة الوطنية العراقية).

الشرطة الوطنية العراقية، في المقابل، يقسم غير متماثلة 3-5 مرات. كل من هذه النتائج انقسامات في تجديد الشرطة الوطنية العراقية وإنتاج GMC واحدة 4. بشكل جماعي، وهوية NB محددة وترتيب الزمني للGMC الولادة يؤدي إلى تنوع مذهل من الخلايا العصبية في الجهاز العصبي المركزي الكبار.

فهم بيولوجيا الخلايا التي ترتكز عليها NB ACD قد تحسنت إلى حد كبير من خلال استخدام تقنيات التصوير الخلية الحية. نشرت البروتوكولات المستخدمة من قبل الباحثين لمصلحة الدولة للاحصاء الصورة الحية تختلف على نطاق واسع. عموما، ومع ذلك، يمكن تجميع هذه الأساليب إلى فئتين عامة تتميز ما إذا كان غادر الدماغ سليمة اليرقات أو ميكانيكيا فصلها. كل التقنيات لها مزايا وعيوب متميزة اعتمادا على التطبيق الباحث.

تقارير مبكرة الكشف عن خلية الحية DIVI NBتنطوي بعض التوترات درجة التفكك دليل من الدماغ اليرقات. هذه البروتوكولات التفاصيل تلطيخ 8 أو 9 وبصرف النظر إغاظة الدماغ من أجل أن تنمو الثقافات الأولية على المدى القصير من مصلحة الدولة للاحصاء على coverslips الزجاج. لتحسين التصوير، وعادة ما تكون بالارض مصلحة الدولة للاحصاء مستديرة حول لل coverslips مع أي من الشرائح الزجاجية 8 أو 9 منصات الاغاروز. على الرغم من أن الخلايا بالارض تحسنت البصريات، وهذه التقنيات غالبا ما تؤدي إلى عيوب الإنقسامية NB، بما في ذلك الانحدار من ثلم الانقسام وعدم القدرة على تقسيم أكثر من مرة واحدة. لذلك، عادة ما تكون مناسبة البروتوكولات التي تشمل كلا من التفكك دليل والتشويه الجسدي من أنسجة المخ اليرقات فقط للغاية على المدى القصير (أي.، ودورة خلية واحدة أو أقل) التطبيقات. وبالمثل، وشبه السحق أو تسطيح العقول سليمة تماما بين الشرائح الزجاجية وcoverslips يحد من مرة واحدة قد تنفق التصوير عينة تعطى لفترة حوالي 30 دقيقة 10. على الرغم من هذا القيد، ثيتم استخدام النهج بنجاح ق 11-14.

الجهود التي بذلت مؤخرا لصورة حية فصلها مصلحة الدولة للاحصاء حد التشويه الجسدي من الخلايا المعزولة. هذه التقنيات هي مفيدة بشكل خاص للتطبيقات حيث أنه من الضروري للحفاظ على مزارع الخلايا لدورات انقسام الخلايا متعددة. على سبيل المثال، خلايا متناثرة من العقول فصلها يدويا قد تكون جزءا لا يتجزأ جزئيا في جلطة مصنوعة من خليط من الفيبرينوجين وثرومبين 15 للتصوير على المدى الطويل 16. بدلا من ذلك، قد تكون العقول explanted أول فصل كيميائيا مع كولاجيناز الانزيم، بجانب تعطل يدويا عن طريق مرور المتكررة من خلال طرف الماصة، ومطلي لاحقا على أطباق أسفل بولي-L-يسين المغلفة الزجاج 17 و 18. طلاء الزجاج مع الأطباق إما الفيبرينوجين أو بولي-L-يسين يعزز المرفق وطفيفة انتشار الخلايا المستديرة، تقديمهم أقرب إلى ساترة ممكن دون تحريف المادية الكبرى. في additiعلى، وهذه الأساليب تشمل زراعة مصلحة الدولة للاحصاء في المتوسطة التي قد يتم تبادلها بسهولة لتجارب اضطراب الدوائية 18. عموما، والطلاء مباشرة فرقت مصلحة الدولة للاحصاء يحسن البصريات التصوير دون التضحية قدرات التصوير على المدى الطويل. في الآونة الأخيرة، وبروتوكول اصفا زراعة على المدى الطويل من مصلحة الدولة للاحصاء تم فصلها تفصيلا 19.

ومع ذلك، فإن هذا النهج لا يخلو من حدوده. وهناك العديد من المحاذير لمصلحة الدولة للاحصاء التصوير فصلها الحية. في مجال خلايا متناثرة، على سبيل المثال، فإنه من الصعب تحديد الأنساب NB محددة مكانيا التي يتم تنظيمها في الدماغ سليمة 1. وبالمثل، التمييز بين النوع الأول النوع الثاني مقابل مصلحة الدولة للاحصاء داخل الأنسجة فصلها هو أيضا تحديا دون التعبير عن استشفاف النسب أو الجينات المحورة سلالة محددة، مثل worniu-GAL4، asense-GAL80 20. على الرغم من أن هذه الجينات المحورة هي مفيدة جدا لبعض التطبيقات، فإنها لا تحد من الباحثين من تلك الجينات المحورة السابقينضغطت تحت سيطرة العنصر UAS محسن 21 وتتطلب خطط الجينية أكثر تعقيدا. الدراسات التي تهم التنمية المكانية أو الزمانية من مصلحة الدولة للاحصاء، وبالتالي، يتطلب التصوير في الجسم الحي في سياق الأنسجة سليمة.

علاوة على ذلك، من مصلحة الدولة للاحصاء الدراسات الجنينية فصلها تشير إلى أن الاتصال الجسدي من الخلايا المجاورة هو أمر حاسم لتوطين البيني من الأقطاب الرئيسية محددات 22، 23. تظهر هذه الدراسات معزولة تماما مصلحة الدولة للاحصاء لم يعد الحفاظ على محور المغزل الإنقسامية ثابتة. بدلا من ذلك، وعرض هذه الخلايا محور المغزل أكثر عشوائية وزوايا واسعة من الفصل بين براعم GMC المتعاقبة، وربما يرجع ذلك إلى فقدان قمية المواقع الجسيم المركزي 22. على الرغم من أن العلاقة بين مصلحة الدولة للاحصاء اليرقات والخلايا المجاورة لها لم تدرس على نطاق واسع، فإنه يجدر النظر أن اليرقات المكروية الخلايا الجذعية قد تؤثر على قطبية الخلية أو غيرهاالسلوكيات. للحفاظ على السياق الفسيولوجية للاليرقات مصلحة الدولة للاحصاء، ونحن ACD صورة من العقول كلها.

بالنظر إلى القيود المتأصلة المرتبطة التصوير فصلها مصلحة الدولة للاحصاء، وضعت لدينا مختبر وغيرها بروتوكولات لصورة جولات متعاقبة من NB ACD من العقول اليرقات كله. تقنيات لصورة أدمغة سليمة في كثير من الأحيان استبدال سطح جامدة من الزجاج على جانب واحد من الغرفة الثقافة مع غشاء مرن لمنع تشويه الأنسجة أو ضرر والسماح لتبادل الغازات. تنطوي على بعض الأساليب تصاعد العقول explanted في خليط من الحشرات متوسطة زراعة، ومصل، وحمض الأسكوربيك مع الهيئات الدهون معزولة عن اليرقات عشرة 24. تضاف الهيئات الدهون معزولة لأنها تفرز mitogen المعروف لتحفيز انقسام الخلايا NB 25. هذا البروتوكول يحافظ على سلامة الأنسجة لأكثر من 3 ساعة، وبالتالي، قابلة للتصوير طويلة الأجل 24، 26-28. في الآونة الأخيرة، وبروتوكول يصف خط الطولالتصوير ز الأجل من أدمغة يرقات سليمة في وجود حمض الأسكوربيك، ومصل، والهيئات الدهون وردت تفاصيلها 29. الأهم من ذلك، لأن الأنسجة لا يتم كشفها ولا يجمد، وهذا النهج هو أقل فائدة للتطبيقات حيث يتم تبادل زراعة المتوسطة (على سبيل المثال، ودراسات المخدرات، immunodepletion، الخ).

لدينا مختبر وتبسيط إعداد جبل كامل من العقول اليرقات الحية للتصوير طويلة الأجل 30، 31. والميزة الرئيسية لبروتوكول لدينا مقارنة مع الآخرين هو بساطته: ملاحظاتنا تشير لا مصل، حمض الأسكوربيك، الانسولين، ولا الأجسام الدهنية المضافة هي ضرورية لصورة جولات متعاقبة من NB ACD. على الرغم من أن المواد المضافة، مثل الانسولين، وكانت مفيدة للتصوير لفترات طويلة من الانقسامات الخلايا الجذعية والهجرة الجماعية 32 خلية في المبايض ذبابة الفاكهة 33، ويبدو أن الاستغناء عن NB ACD، كما يتكون لدينا المتوسطة التصوير من خليط بسيط من ستاndard الحشرات المتوسطة زراعة الخلايا تستكمل مع مضاد فطري للمضادات الحيوية لمنع التلوث. من خلال استخدام الأطباق ثقافة أسفل الغاز قابلة للاختراق أو الزجاج قابلة لإعادة الاستخدام، وكنا قادرين على الحفاظ على عدة جولات من المتعاقبة NB ACDs. يمكن بسهولة العينات explanted نفسه استخدامها لالمناعي وغيرها من الإجراءات مع الأنسجة الثابتة. في هذا البروتوكول، ونحن من التفصيل تشريح أدمغة يرقات سليمة، فضلا عن إعداد العقول لتحليل كل من الحية والثابتة.

Protocol

1. إعداد المواد المطلوبة لازدراع الأمخاخ الثالث الطور اليرقات وتعد الأدوات اللازمة لتسليخ مجهري. إقامة أداتين تشريح (مشرط وهوك) عن طريق وضع دبوس تشريح أول واحد في كل حام…

Representative Results

وقد أوضحت التصوير الحي عددا من الآليات التي تنظم NB ACD. قبل الحصول على الصور، فمن الضروري لتحديد ظروف التصوير المثلى. فمن الضروري لتحقيق التوازن في معدل التقاط الإطار مع مدة التصوير الخلية الحية. لتحليل الخلوية الجميلة، على سبيل المثال، زيادة الزمانية وربما تكون هناك …

Discussion

التصوير الخلية الحية هو نهج لا تقدر بثمن تستخدم لدراسة الآليات التي تنظم ACD من الخلايا الجذعية، وتمايز الخلايا الأنساب، والتشكل من أنسجة معقدة. على الرغم من أن المجموعات البحثية قد استخدمت تاريخيا مجموعة متنوعة من التقنيات لتصور NB ACD، هذه النهج يمكن تصنيفها بصفة عام?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل من قبل قسم الأبحاث جماعية في المعاهد الوطنية للصحة / NHLBI (1ZIAHL006126) والطبية الحيوية زمالة ما بعد الدكتوراه Lenfant منحت لDAL.

Materials

Lumox Tissue Culture Dish 50X12 mm Sarstedt 94.6077.410 A reusable culture dish with a gas-permeable and optically clear film base.
Schneider's S2 Medium Invitrogen 21720-024
Gibco Antibiotic-Antimycotic (100x) Invitrogen 15240-062 A supplement containing penicillin (10,000 U/mL), streptomycin (10,000 mg/mL), and amphotericin B (25 mg/mL) that is added to Schneider's S2 media to prevent bacterial and fungal contamination. 
Glass coverslips, #1.5 22X22 mm Fisher Scientific 12-541-B
Halocarbon oil 700 Sigma-Aldrich H8898 A high viscosity inert oil that is clear and colorless.
pair of nickel-plated pin holders, 17 cm long Fine Science Tools 26018-17
Minutien dissecting pins Fine Science Tools 26002-10
pair of Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 11252-20
Dissecting needle/probe with plastic handle Fisher Scientific 08-965-A
Syringe filter, 0.22 mm pore size Fisher Scientific 09-719A
Syringe 5 mL  BD Biosciences 309646
plastic transfer pipet Fisher Scientific S30467-1
paraformaldehyde, 32% EM-grade Electron Microscopy Sciences 15714 CAUTION: Formaldehyde is toxic; it should be handled in a fume hood. Follow MSDS guidelines for safe handling.
DAPI (4', 6-diamidino-2-phenylindole, dihydrochloride) Invitrogen D1306 A dye that labels DNA and is excited by UV light.
Aqua/PolyMount; Polysciences, Inc. Fisher Scientific 18606-20 A water-soluble mounting medium.

References

  1. Truman, J. W., Bate, M. Spatial and temporal patterns of neurogenesis in the central nervous system of Drosophila melanogaster. 발생학. 125, 145-157 (1988).
  2. Doe, C. Q. Molecular markers for identified neuroblasts and ganglion mother cells in the Drosophila central nervous system. Development. 116, 855-863 (1992).
  3. Lerit, D. A., Smyth, J. T., Rusan, N. M. Organelle asymmetry for proper fitness, function, and fate. Chromosome research. 21, 271-286 (2013).
  4. Bello, B. C., Izergina, N., Caussinus, E., Reichert, H. Amplification of neural stem cell proliferation by intermediate progenitor cells in Drosophila brain development. Neural development. 3, 5 (2008).
  5. Bowman, S. K., et al. The tumor suppressors Brat and Numb regulate transit-amplifying neuroblast lineages in Drosophila. Developmental Cell. 14, 535-546 (2008).
  6. Boone, J. Q., Doe, C. Q. Identification of Drosophila type II neuroblast lineages containing transit amplifying ganglion mother cells. Dev Neurobiol. 68, 1185-1195 (2008).
  7. Homem, C. C., Knoblich, J. A. Drosophila neuroblasts: a model for stem cell biology. Development. 139, 4297-4310 (2012).
  8. Savoian, M. S., Rieder, C. L. Mitosis in primary cultures of Drosophila melanogaster larval neuroblasts. Journal of Cell Science. 115, 3061-3072 (2002).
  9. Fleming, S. L., Rieder, C. L. Flattening Drosophila cells for high-resolution light microscopic studies of mitosis in vitro. Cell Motil Cytoskeleton. 56, 141-146 (2003).
  10. Buffin, E., Lefebvre, C., Huang, J., Gagou, M. E., Karess, R. E. Recruitment of Mad2 to the kinetochore requires the Rod/Zw10 complex. Current biology. 15, 856-861 (2005).
  11. Basto, R., et al. Flies without centrioles. Cell. 125, 1375-1386 (2006).
  12. Lucas, E. P., Raff, J. W. Maintaining the proper connection between the centrioles and the pericentriolar matrix requires Drosophila centrosomin. J. Cell Biol. 178, 725-732 (2007).
  13. Basto, R., et al. Centrosome amplification can initiate tumorigenesis in flies. Cell. 133, 1032-1042 (2008).
  14. Conduit, P. T., Raff, J. W. Cnn dynamics drive centrosome size asymmetry to ensure daughter centriole retention in Drosophila neuroblasts. Curr. Biol. 20, 2187-2192 (2010).
  15. Forer, A., Pickett-Heaps, J. D. Cytochalasin D and latrunculin affect chromosome behaviour during meiosis in crane-fly spermatocytes. Chromosome research. 6, 533-549 (1998).
  16. Rebollo, E., et al. Functionally unequal centrosomes drive spindle orientation in asymmetrically dividing Drosophila neural stem cells. Dev. Cell. 12, 467-474 (2007).
  17. Januschke, J., Llamazares, S., Reina, J., Gonzalez, C. Drosophila neuroblasts retain the daughter centrosome. Nat. Commun. 2, 243 (2011).
  18. Januschke, J., et al. Centrobin controls mother-daughter centriole asymmetry in Drosophila neuroblasts. Nat Cell Biol. 15, 241-248 (2013).
  19. Homem, C. C., Reichardt, I., Berger, C., Lendl, T., Knoblich, J. A. Long-Term Live Cell Imaging and Automated 4D Analysis of Drosophila Neuroblast Lineages. PLoS One. 8, (2013).
  20. Neumuller, R. A., et al. Genome-wide analysis of self-renewal in Drosophila neural stem cells by transgenic RNAi. Cell Stem Cell. 8, 580-593 (2011).
  21. Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes. Development. 118, 401-415 (1993).
  22. Siegrist, S. E., Doe, C. Q. Extrinsic cues orient the cell division axis in Drosophila embryonic neuroblasts. Development. 133, 529-536 (2006).
  23. Broadus, J., Doe, C. Q. Extrinsic cues, intrinsic cues and microfilaments regulate asymmetric protein localization in Drosophila neuroblasts. Curr. Biol. 7, 827-835 (1997).
  24. Siller, K. H., Serr, M., Steward, R., Hays, T. S., Doe, C. Q. Live imaging of Drosophila brain neuroblasts reveals a role for Lis1/dynactin in spindle assembly and mitotic checkpoint control. Molecular biology of the cell. 16, 5127-5140 (2005).
  25. Britton, J. S., Edgar, B. A. Environmental control of the cell cycle in Drosophila: nutrition activates mitotic and endoreplicative cells by distinct mechanisms. Development. 125, 2149-2158 (1998).
  26. Siller, K. H., Doe, C. Q. Lis1/dynactin regulates metaphase spindle orientation in Drosophila neuroblasts. 발생학. 319, 1-9 (2008).
  27. Cabernard, C., Doe, C. Q. Apical/basal spindle orientation is required for neuroblast homeostasis and neuronal differentiation in Drosophila. Dev. Cell. 17, 134-141 (2009).
  28. Januschke, J., Gonzalez, C. The interphase microtubule aster is a determinant of asymmetric division orientation in Drosophila neuroblasts. J. Cell Biol. 188, 693-706 (2010).
  29. Cabernard, C., Doe, C. Q. Live imaging of neuroblast lineages within intact larval brains in Drosophila. Cold Spring Harb Protoc. 2013, 970-977 (2013).
  30. Rusan, N. M., Akong, K., Peifer, M. Putting the model to the test: are APC proteins essential for neuronal polarity, axon outgrowth, and axon targeting. J. Cell Biol. 183, 203-212 (2008).
  31. Lerit, D. A., Rusan, N. M. PLP inhibits the activity of interphase centrosomes to ensure their proper segregation in stem cells. J. Cell Biol. 202, 1013-1022 (2013).
  32. Morris, L. X., Spradling, A. C. Long-term live imaging provides new insight into stem cell regulation and germline-soma coordination in the Drosophila ovary. Development. 138, 2207-2215 (2011).
  33. Prasad, M., Jang, A. C., Starz-Gaiano, M., Melani, M., Montell, D. J. A protocol for culturing Drosophila melanogaster stage 9 egg chambers for live imaging. Nat. Protoc. 2, 2467-2473 (2007).
  34. Rusan, N. M., Peifer, M. A role for a novel centrosome cycle in asymmetric cell division. J. Cell Biol. 177, 13-20 (2007).
  35. Martinez-Campos, M., Basto, R., Baker, J., Kernan, M., Raff, J. W. The Drosophila pericentrin-like protein is essential for cilia/flagella function, but appears to be dispensable for mitosis. J. Cell Biol. 165, 673-683 (2004).
  36. Dix, C. I., Raff, J. W. Drosophila Spd-2 recruits PCM to the sperm centriole, but is dispensable for centriole duplication. Curr. Biol. 17, 1759-1764 (2007).
  37. Moutinho-Santos, T., Sampaio, P., Amorim, I., Costa, M., Sunkel, C. E. In vivo localisation of the mitotic POLO kinase shows a highly dynamic association with the mitotic apparatus during early embryogenesis in Drosophila. Biol. Cell. 91, 585-596 (1999).
  38. Megraw, T. L., Kilaru, S., Turner, F. R., Kaufman, T. C. The centrosome is a dynamic structure that ejects PCM flares. J. Cell Sci. 115, 4707-4718 (2002).

Play Video

Cite This Article
Lerit, D. A., Plevock, K. M., Rusan, N. M. Live Imaging of Drosophila Larval Neuroblasts. J. Vis. Exp. (89), e51756, doi:10.3791/51756 (2014).

View Video