检测荧光纳米粒子的相互作用与原发性免疫细胞亚群流式细胞仪的

操守准则以下卫生意大利教育部的指导方针人类和动物样品进行处理，在第116/92号和欧洲共同体理事会指令86/609/EEC。 1。单核细胞培养培养人THP-1细胞中的T-75培养瓶中含补充有10％人血清，50单位/ ml青霉素和50毫克/毫升链霉素，在5％CO 2 0.05 mM的β-巯基乙醇，在37℃的RPMI-1640培养基。 分裂的文化融合时（每隔3-5天）。 2。从巴菲大衣分离外周血单个核细胞（PBMC）中的启动隔离协议之前，准备的磷酸盐缓冲盐水（PBS）pH 7.2的溶液中，2 mM的乙二胺四乙酸（EDTA），0​​.5％牛血清白蛋白（BSA），加入5ml的BSA储备液至95毫升漂洗缓冲液（1： 20稀释）。脱气缓冲区和保持低温（2-8℃）。 请注意：未脱气缓冲，可能会导致在不到最佳的效果，因为气泡会阻塞隔离柱（见步骤3.2）。 注：抗凝枸橼酸葡萄糖式-A（ACD-A）或柠檬酸磷酸葡萄糖（CPD）可交替使用。相反，来自其他物种的其他蛋白白蛋白或血清可以代替BSA。不要使用含Ca 2 +或Mg 2 +缓冲区。 从健康的捐赠者（年龄在20-60岁）获得棕黄色的大衣。 制备50ml锥形管中用于密度梯度离心法。确定所需的处理血液（每管可处理35ml的稀释血液），并添加15毫升的Ficoll-Paque上的每个空管的管的数目。 稀释加入8ml血液24毫升的PBS / BSA / EDTA溶液（1:4稀释）。 仔细层（密度=1.077克/毫升）中的每个的50ml锥形管上的Ficoll-Paque上的顶部的稀释液。不要混合使用血液和菲可 – 帕克。 重要提示 ：为避免血液和菲可-帕克的混合，保持管在45°角，慢慢地一层血合剂。 离心机在400×g离心30分钟，在4℃下单核细胞（MNCs）将保持在所述等离子的Ficoll-Paque上的接口，而粒细胞和红细胞的沉淀是由于较高密度的Ficoll-Paque上的渗透压。 转移的间期细胞（外周血单核细胞，PBMC）中，以一个新的50ml管中在4℃下填充用PBS / BSA / EDTA和离心机在300×g离心10分钟用PBS / BSA / EDTA两次洗涤沉淀，除去血小板。转速为200×g离心10分钟，在4°C。 培养的细胞在完全RPMI-1640含10％人类血清和抗生素或进行单核细胞的纯化。 3。从外周血单个核细胞分离纯化主要的单核细胞用坎磁珠分离外周血单个核细胞从分离的单核细胞一个泛单核细胞分离试剂盒： 通过30微米尼龙网（预分离器，30微米）通过细胞，以消除可能的细胞团块。 使用血细胞计数器测定细胞数。 离心细胞悬浮液在300×g下在室温（RT）下10分钟。吸上清完全。 重悬细胞沉淀中加入30μl的PBS / EDTA / BSA缓冲液每10共7个细胞。 加入10微升的FcR每10共7个细胞阻断剂。 加入10μl生物素抗体鸡尾酒每10共7个细胞。 拌匀，静置5分钟，在2-8°C。 加入30微升缓冲液，每10 7细胞总数。 加入20微升的每10 7总细胞抗生物素微珠。 拌匀，静置10分钟，在2-8°C。 悬浮高达10 8个细胞于500μl的PBS / EDTA / BSA缓冲液。 磁组合模式振动性因此总细胞数，选择合适的MACS柱和MACS分离器（MACS见列数据表）。 将列在MACS分离器的磁场。 通过用PBS / EDTA / BSA缓冲液适量漂洗制备柱（MS色谱柱：500微升; LS柱：3ml）溶液。 注 ：列是“流停止”和不干涸。 应用细胞悬液上柱。收集流过含有未标记细胞，占富含单核细胞部分。 用PBS / EDTA / BSA缓冲液（500微升的MS和3毫升每洗LS）洗柱3倍。 收集穿过，代表富集的单核细胞未标记细胞，并加入到流通的第3.2.4节。 注：通过添加PBS / EDTA / BSA缓冲液等份，只有当水库栏为空洗柱。 （可选）从删除列分离器并将其放置在一个合适的收集管。吸取缓冲到柱（MS色谱柱：1毫升; LS列5毫升）。立即冲洗掉磁标记nonmonocyte细胞力推柱塞入列。 培养物中纯化的完全RPMI-1640的单核细胞，用10％的人血清和抗生素。 4。从全血中分离纯化主要的单核细胞使用全血单核细胞分离试剂盒按照制造商的说明净化从全血中的单核细胞。 5。纳米颗粒内在血液中白细胞和单核细胞纯化板5×10 5个细胞/ ml的分离的PBMC或纯化的CD14阳性单核细胞在12孔板（1毫升/孔）。 涡流FITC-SiO 2的纳米颗粒储液，重悬在完全培养基中，以100nM的工作浓度。 加入10微升的工作nanop的文章悬浮液（100纳米）对处理过的样品，达到1纳米的纳米颗粒的最终浓度。添加完全培养基为未处理的对照组相同体积到各孔中。 后1小时内在收集的样品在1.5ml聚丙烯管中，在6000×g离心在RT离心他们3分钟。 用1毫升在6000 XG在室温下运行缓冲液3分钟的洗涤沉淀。 重悬沉淀在200μl缓冲液中。这些细胞是现在准备读通过流式细胞仪。 6。原发性混合胶质细胞培养隔离（见Bertero 等 。7） 7。 Replating混合合流胶质细胞培养用10毫升的PBS洗一件T-75瓶一次（W / O型的Ca 2 + / Mg 2 +的），然后加入10维尔烯毫升和孵化在37℃5-7分钟。 吸取上清上下数次，以从T-75的表面分离的细胞，溶解细胞聚集。 转移在15毫升聚丙烯管中的细胞悬浮液。收集少量的细胞悬液计数细胞，血球。 离心细胞悬浮液5分钟，在300×g离心于RT。 去除上清，重悬沉淀以5×10 5细胞/胶质完全培养基毫升的最终浓度。 制版为0.5ml /孔在24孔板中，并让细胞沉降纳米颗粒处理之前2-4小时。 8。纳米颗粒内在的小胶质细胞加入500μl完整胶质培养基（对于未治疗的对照）或500微升的在完整胶质培养基2倍罗丹明的SiO 2纳米颗粒悬浮液（对于处理过的样品）到每个孔中。 移液器的细胞，允许非快速附着的细胞在选定的时间点支队和收集他们在2毫升聚丙烯管。 加入500μl维尔烯的每个孔中，培养板在37℃下5分钟，然后分离剩余的细胞部分和每个样品与上一步骤的相应nonadhering细胞收集。 离心样品为3分钟，在300×g离心于RT。 重悬沉淀在100μlAutoMACS运行缓冲液。 9。与细胞CD11b-VioBlue染色加入10微升VioBlue-CD11b的人/鼠抗体100微升细胞悬液（一点11分比）的运行缓冲液孵育10分钟，在4°C。 加入1 ml缓冲液和混合细胞悬液。 离心每个样品为3分钟，在300×g下。 弃上清，悬浮颗粒在100-150微升电泳缓冲液中。 读出的样品的流式细胞仪（存储样品在4℃下的最后两个步骤之间）。 重要提示 ：分析样品前，进行重叠信号的赔偿我不同的荧光染料（荧光标记的纳米颗粒或抗体）n之间发射光谱观测。 10。光谱溢出补偿打开“仪器设置”对话框（存在于所有的仪器软件程序）。 注意：如果使用从一个报道，在材料表不同的乐器，请参阅仪器说明书的具体的收购细节。 在低温流体的速度（如果允许的仪器）收购未处理的样品（不含纳米颗粒）。在采集，通过调节电压通道手动调节前向和侧向散射（FSC和SSC，分别）。 注意：修改SSC和FSC轴刻度，以最好地显现完整的细胞群中的情节。一种仪器设置的模板为每个感兴趣的细胞类型可以被创建，保存并用于未来的收购。 打开特定的“区域”选项卡中的软件。各地所需的人口画出一个合适的大区（“门”）。 注意：纳米颗粒的内化诱导该细胞的SSC移位。如果门已围绕感兴趣的细胞群过于紧密的限制，所获得的数据可能会错过要检测的细胞的一部分。 用两个未染色样品，一是用作空白样品和一个用于对PI染色（可选）补偿，用适当的荧光染料进行补偿每个荧光通道单一染色样品。 注意：使用对于每个荧光标记的抗体在实验中标记要使用一个不同的1.5毫升样品管中。 在“仪器设置”对话框中打开“补偿”选项卡。增加或收购时降低补偿系数，直到溢出通道的荧光强度大致相同的荧光POS可持续的竞争和人口负。 获得纳米粒子处理过的样品后的补偿进行了调整。