No plasmáticos de unión de PDMS para la Fabricación de bajo costo de los dispositivos de microfluidos

La preparación de dispositivos de microfluídica para el cultivo celular neuronal 1) Limpiar Corning N º 1 de 24 mm X 40 mm portaobjetos de vidrio Sonicar el portaobjetos de vidrio en un baño de ultrasonido agua durante 30 minutos Enjuague el portaobjetos de vidrio con un 70% EtOH Lavar los portaobjetos tres veces con dH 2 O Portaobjetos secos en una campana de cultivo de tejidos durante varias horas, preferiblemente durante la noche Nota: Hemos bandejas especiales de metal que se carga con las diapositivas. Las diapositivas están separados de forma individual y se coloca en las ranuras de esta rejilla de metal. A continuación, puede colocar las bandejas de carga de metal en un recipiente de vidrio que se llenan de agua, lugar en el baño de ultrasonido de agua, y someter a ultrasonidos durante 30 minutos. Lavados posteriores se llevan a cabo en este plato. 2) Preparación de los dispositivos de PDMS Cortar el molde de PDMS de la oblea de silicio, hacer agujeros en el reparto PDSM y cuarto que Limpiar los dispositivos PDMS primero soplando gas inerte (argón o nitrógeno) a través de ellos. A continuación, utilice la marca 3M Scotch 471 cintas para despegar cualquier residuo restante Nota: Es importante mantener los dispositivos boca arriba. Al principio, cuando cortamos el PDMS lejos de la oblea de silicio, la superficie en contacto con la oblea es el lado limpio: contiene los canales de microfluidos. Tratamos de ser lo más cuidadoso que nosotros, como puede para no dañar el dispositivo y mantener la cara de la limpieza hasta que estemos listos para la unión de plasma. Dispositivos de autoclave en recipientes de plástico Después del autoclave, limpia No. 1 portaobjetos de vidrio Corning y el tratamiento de plasma-dispositivos que utilizan una marca de limpiador de plasma Harrick, www.harrickplasma.com Coloque los dispositivos de limpieza hacia abajo en el portaobjetos de vidrio. El dispositivo está ahora en plasma unida a la lámina de vidrio. 3) Los dispositivos de recubrimiento con poli L-lisina (PLL) PLL se agrega a un pozo en cada lado del dispositivo y permite que fluya a través de en el pozo siguiente => 150 ml de PLL para los grandes pozos y 30 μ l PLL para los pozos más pequeños. No tiene por qué ser exacta, siempre y cuando los pozos están llenos. Nota: Si nos fijamos en un dispositivo que se va a ver cuatro pozos: cada dos están conectados. ¿Quieres poner el PLL en un pozo para que fluya a través del dispositivo en el pozo siguiente. Deje que el PLL para el flujo a través del dispositivo durante unos 10 minutos y luego añadir más PLL a los pozos para llenarlos Colocar los dispositivos que contienen PLL en una incubadora a 37 ° C durante un mínimo de 4 horas (una noche es preferible) Aspire el exceso de PLL después del tratamiento, pero tenga cuidado de no aspirar todo el líquido fuera del dispositivo Nota: No es aconsejable introducir burbujas de aire a los canales o de la cámara. Sólo vacío el exceso de PLL en los pozos. Añadir autoclave dH 2 O a cada bien en cada lado del dispositivo y permitir que fluya hacia el otro pozo por capilaridad La figura 1 es un diagrama de un dispositivo de microfluidos. Observe cómo el azul (Soma lado) está conectado y el rojo (lado axonal) están conectados. Cuando hablamos de poner el PLL, el agua o los medios de comunicación, en un pozo en cada lado del dispositivo, lo que queremos decir, por ejemplo, es la siguiente: Coloque 150 ul de autoclave dH 2 O en un Pozo Azul y coloque 150 ml de autoclave dH 2 0 en una Red Well. El agua (o PLL, o los medios de comunicación, o células) fluirá a través del dispositivo a la fuente correspondiente otros. Figura 1 Nota: Tenga en cuenta que, a partir de ahora, cuando digo "los medios de comunicación el lugar, las células, el agua o el PLL en el TOP pozos", me refiero al diagrama de arriba, donde el Soma se encuentra a la izquierda y los axones crecerán a la derecha. Aspirar el agua (de nuevo teniendo cuidado de no eliminar por completo todo el líquido desde el dispositivo), a continuación, añadir otra l 150 de autoclave dH 2 O a uno de cada bien conectados y permitir que fluya a través de la correspondiente así. Coloque el dispositivo que contiene dH 2 O en una incubadora a 37 ° C durante 1 hora, y luego repetir la etapa de lavado de nuevo. Lavar los dispositivos de tres veces con dH 2 O durante una hora cada uno, que es el total. Nota: Debido a la posibilidad de que el borato de la PLL se puede absorber en el PDMS, algunos en el Laboratorio de Jeon recomienda incubar los dispositivos durante la noche con autoclave dH 2 O después de un par de initial enjuagues rápida. Esto asegurará que todos los boratos se filtre fuera de la PDMS antes de la carga de las células. Si no se hace esto, puede haber una liberación de borato en los medios de comunicación a través del tiempo, lo que podría llevar a la citotoxicidad. Añadir Neural medio basal (NBM), con los factores necesarios (glutamax, B27, Penstrep) a los pozos de alto Nota: Los dispositivos pueden ser incubados durante la noche y recubierto de células al día siguiente, o se incuban con un mínimo de 3 horas con NMB + factores de las placas, las células. La preparación de las neuronas de carga en los dispositivos Utilizamos 18 días de edad corteza de rata fetal que, o bien comprar a una empresa llamada Bits del cerebro y de que se prepara aquí en el campus para nosotros. Nosotros preferimos obtener el tejido fresco. Obtener una corteza cerebral fetal (2 piezas de tejido) almacenados en Hibernate E Tomar 3 pipetas de vidrio largo y el fuego a cada uno en tamaños cada vez más pequeños con una lámpara de alcohol eliminar los tejidos de Hibernate E con una pipeta de vidrio y el lugar en 2 ml de NMB + Factores en un tubo estéril de 15 ml. La trituración: Con una pipeta de vidrio bombilla y la corteza se pasa arriba y hacia abajo alrededor de 5 a 10 veces. Entonces, la pipeta más pequeño siguiente se utiliza para pipeta y el tejido. Por último, la más pequeña pipeta se utiliza para la pipeta y el tejido. Nos gusta para asegurarse de que no hay trozos visibles. Nota: Recientemente, el Laboratorio de Jeon comenzó a comparar las células de los tejidos almacenados en Hibernate E a las células que se han preparado a partir de los tejidos tratados inicialmente con 0,125% de tripsina en el 50% de Ca + + libre y Mg + + buffer disección de forma gratuita. El consenso es que el tejido preparado con tripsina producir células más viable que el tejido situado inicialmente en Hibernate E. Si no se va a utilizar el tejido de inmediato, entonces usted necesita para almacenar los tejidos en Hibernate E. Si usted va a utilizar el tejido de inmediato y le gustaría una mayor viabilidad, a continuación, tratar el tejido con tripsina antes de la trituración mecánica de la siguiente manera: 1) se diluye 1 ml de tripsina 0,25% (Gibco, Invitrogen) con 1 ml de Ca + + libre de Mg + + gratis buffer disección (final tripsina = 0,125%) en un tubo de 15 ml (mantener frío el hielo), 2) los tejidos lugar en el buffer e incubar inmediatamente a 37 º C durante 8 minutos, 3) agregar 10 ml DMEM/10% de SFB para detener la tripsina reacción y seguir el protocolo a continuación. Las células se centrifugan a 1100 rpm durante 1 minuto Los medios de comunicación aspirado cuidadosamente de la bolita de células Añadir 1 ml de la NMB + factores de la pastilla y re-suspendido por pipeteando arriba y abajo Pase la suspensión de células re-por gravedad a través de un filtro para eliminar los grumos (BD Falcon células colador de nylon 40 um) Conde y células de la placa: En un tubo de microcentrífuga, añadir 60 NMB l + factores, 20 l de suspensión celular, y 20 l de azul de tripano y mezclar Añadir unos 10 l de esta solución a un hemocitómetro y contar las células vivas (no azules) Ajuste la concentración de 2,5 a 4,5 x 10 6 células / ml Nota: Por lo general, obtener una concentración de aproximadamente 2,5 a 4,5 x 106 células / ml. dependiendo del volumen de las células se resuspenden en (normalmente 1 ml NBM + B27/Glutamax/PenStrep percortex). Si el tejido ha sido elaborado con la tripsina, la producción probablemente se incrementará. Revestimiento Los dispositivos Las celdas de carga (neuronas primarias) en un pozo del dispositivo Placa de 5 l por dispositivo pequeño y 20 l por aparato grande Nota: Puede cargar 10 l de células en la parte superior del dispositivo y 10 l en la parte inferior del dispositivo (volumen total medio), o directamente a todos l 20 de las células en la parte superior y cromosómicas (5 l en la parte superior y cromosómicas para los dispositivos pequeños). Incubar durante 10 minutos en una incubadora a 37 ° C lo que las células pueden empezar a colocar Añadir l aproximadamente 150/30 de factores + NMB a cada pocillo, dependiendo del tamaño del dispositivo Nota: Los volúmenes pueden variar dependiendo del espesor de la PDMS. Todo lo que importa es que los pozos están llenos. Suplementario Acerca del uso de los dispositivos sin vinculación Plasma Sin el tratamiento de plasma, Christina Tu, un técnico, que lo hace con éxito todas las semanas sin plasma, dice que la carga sólo a las células de inmediato. Recuerde que debe eliminar los medios de comunicación tanto de los pozos en el lado del soma (parte del axón no importa si deja los medios de comunicación). Es el flujo de fluido que permite a las células para entrar en el canal principal. Si usted tiene los medios de comunicación en los pozos, no obtendrá el flujo de fluidos.