Criopreservación de espermatozoides de ratón y de recuperación con el I · Kit de Cryo

1. Criopreservación de espermatozoides de ratón Para cada línea para ser criopreservados, prepare lo siguiente antes de comenzar. Un pozo de una placa de cuatro pocillos con 240 l de kit de CPA 15 pajuelas de criopreservación de espermatozoides de la siguiente manera Conecte el pajuelas de 0,25 ml a las jeringas de 1 ml con tapón de algodón cercano a la jeringa. En cada uno de paja, carga de 8 cm (aproximadamente 160 l) de medio de fertilización in vitro, y luego de 1 cm de aire. Etiqueta de la paja con el nombre de la línea para ser preservado. LN 2 debe ser de 15 cm de profundidad en el cuadro de espuma. Cierre la tapa. La eutanasia a dos ratones machos de cada línea para ser criopreservados. Los ratones deben ser entre 10 y 60 semanas. Retire los dos epidídimos caudal, junto con el conducto deferente de cada ratón. Coloque el epidídimo en el CPA previamente preparado que contiene los pocillos de una placa de 4 pocillos (paso 1.1). Hacer 5-7 cortes longitudinales en cada epidídimo y suavementeApriete cada conducto deferente para empujar el esperma hacia fuera. Agite la mezcla de CPA y el epidídimo con la mano suavemente a temperatura ambiente durante 3-5 minutos. Esto permitirá a los espermatozoides a nadar. Utilizando la paja previamente preparado, aspirar 5 mm (aproximadamente 10 l) de suspensión de esperma y luego de 1 cm de aire. Repita este proceso con hasta un total de 15 pajillas. De carga y el sello paja a los 10 minutos para la supervivencia mejores espermatozoides. Termosellado ambos lados de la paja con cuidado. Coloque la paja en el recipiente de congelación con la columna de los espermatozoides en primer lugar. Coloque la pipeta de 1 ml proporciona como parte del kit de la lata para extender el mango. Coloque el recipiente en LN 2 en el cuadro de espuma a través del agujero en la tapa. Deje que el frasco para flotar verticalmente en la LN 2 durante 10 minutos. Sumergir el recipiente en el LN2. Los espermatozoides criopreservados y ahora se puede mover a largo plazo de almacenamiento de LN 2. El envase no debe ser utilizado parala siguiente línea hasta que se calienta hasta la temperatura ambiente. 2. Ratón superovulación En general, el uso de ratones hembra jóvenes el mismo fondo que los donantes de esperma. Los ratones deben ser ~ 12 g (3-4 semanas de edad). Realizar una inyección intraperitoneal con IU 5.10 de embarazadas gonadotropina de suero de yegua (PMSG). Espere 46 a 48 horas. Realizar una inyección intraperitoneal con IU 5.10 de la gonadotropina coriónica humana (hCG). Los ovocitos de la cosecha 14-16 h después de la inyección de hCG como se describe a continuación. 3. Ratón de recuperación de espermatozoides y fecundación in vitro Antes de la FIV, para cada uno de paja para ser descongelado, preparar la siguiente y equilibrar durante al menos una hora en un 37 ° C incubadora de CO 2. Espermatozoides plato de incubación: una placa de Petri de 35 mm, con una caída de 90 l de medio de tratamiento de esperma (STM) cubierto con aceite. Corte de plato: Para la recogida de ovocitos de un máximo de 10 superovulated mujeres, una de 35 mm placa de Petri con 3 ml de medio de fertilización in vitro. Fecundación in vitro, así: Para cada grupo de 5 mujeres superovuladas para la FIV, un pocillo de una placa de 4 y con 500 l de medio de FIV (si está utilizando 10 hembras superovuladas, por ejemplo, se necesitan 2 pozos…) Lavar los platos: una placa de Petri de 35 mm con 3 ml de potasio simple medio optimizado (KSOM) para el lavado de cada pocillo de la placa de FIV 4-bien utilizado Placa de cultivo: una placa de Petri de 35 mm con 50 gotas l de medio KSOM cubiertos con aceite para el cultivo de embriones de cada pocillo de la placa de la FIV. Eliminar una paja de LN 2 y colóquelo en un baño de agua 37 º C durante 2-3 minutos. Quitar la paja del baño de agua y limpiar para eliminar el exceso de agua. Haga el primer corte cerca de la primera columna de aire más cercano al tapón de algodón. Cortar la paja en el medio de FIV seguirá habiendo una columna de aire visible antes de la columna de los espermatozoides. A continuación, corte el extremo de la paja en el segunda columna de aire, teniendo cuidado de evitar el corte de la columna de los espermatozoides. Corte en un ángulo de 45 – esto hará que sea mucho más fácil para aspirar a los espermatozoides. Aspirar la suspensión de esperma desde el extremo distal de la paja con una pipeta 200 microlitros. Lugar la suspensión de esperma en el centro de la caída de STM y se incuba la placa durante 45-60 minutos en un 37 ° C al 5% de CO 2 incubadora. Durante la incubación de espermatozoides, diseccionar los oviductos de las hembras superovuladas en el plato de corte. Use una aguja de 30 g o fórceps para rasgar cada oviducto, la liberación de los complejos cumulus-ovocito (COC). Evite la grasa y la sangre en el medio de la FIV como sucio para los medios de comunicación hace que el lavado de medidas adicionales. Una vez que todos los oviductos se han roto, la transferencia de los anticonceptivos orales combinados de cinco mujeres de cada pozos de fecundación in vitro. El número de AOC producidos por superovulación es muy dependiente de la cepa. Recoger 10-15 l de esperma de la periferia de la caída de STM y abonar una fecundación in vitro y aproximadamente 14-16 horas después de la hCG injexión. Repita la fertilización para cada bien utilizado. La concentración de esperma final será de aproximadamente 1 millón / ml. Cocultivo de espermatozoides y ovocitos durante 4-6 horas en un 37 ° C 5% de CO 2 incubadora. Lavado de los embriones con KSOM un mínimo de 2 veces y la cultura en forma de gotas KSOM para el desarrollo en un 37 ° C 5% de CO 2 incubadora. Tasa de fecundación in vitro se ha calculado como dos embriones de células etapa de total de ovocitos utilizados después de la cultura durante la noche. 4. Resultados representante El esperma de 5 cepas puras ratón Charles River se congeló. Las relaciones de protección se calcula dividiendo los valores de evaluación de los espermatozoides congelados en fresco valores de esperma de evaluación. Relaciones de protección de la motilidad de los espermatozoides fueron 60,2%, 81,3%, 78,6%, 66,5%, 61,0% para C57BL/6NCrl, 129S2/SvPasCrl, FVB / NCrl, DBA/2NCrl y BALB / cAnNCrl, respectivamente. Relaciones de protección para la motilidad progresiva rápida fueron 47,3%, 69,4%, 57,0%, 52,8%, 54,1% en C57BL/6NCrl, 129S2/SvPas Crl, FVB / NCrl, DBA/2NCrl y BALB / cAnNCrl, respectivamente (Fig. 1). Las tasas de fecundación in vitro con esperma congelado-descongelado fueron el 55,7%, 26,4%, 87,3%, 87,8% y 26,2% en C57BL/6NCrl, 129S2/SvPasCrl, FVB / NCrl, DBA/2NCrl y BALB / cAnNCrl, respectivamente (Fig. 2) . Durante un período de 1,5 años, 49 líneas de ratones transgénicos fueron archivados por la crioconservación de esperma. Estas líneas fueron más tarde recuperados con éxito (según la definición de los cachorros nacidos vivos) por fecundación in vitro en 4 cepas de mujeres (C57BL / 6, BALB / c, DBA / 1 y 129Sv) (Fig. 3). Figura 1. Las relaciones de protección de la motilidad espermática y la motilidad progresiva rápida en los ratones Figura 2. Fertilización in vitro con semen congelado-descongelado en ratones 3713fig3.jpg "/> Figura 3. Fecundación in vitro con espermatozoides congelados-descongelados en ratones modificados genéticamente