בעלי חיים שלמה זלוף קיבוע של מכרסמים

1. הכן מקבע (ראה מקבע שולחן Buffers). 2. הכן Buffers זלוף (ראה מקבע שולחן Buffers). 3. להכין מנגנון הרדמה שימוש באמבט מים חמים זלוף חיץ עד 37 ° C. מוצא מקום השסתום בכוס מלאה למאגר. למלא מזרק 50 מ"ל עם חיץ ומתחברים צינורות מקבע. שטוף את צינור שוב ושוב על ידי גירוש ונסיגה המאגר. נקה בקנה אחד עם חיץ עד שכל בועות אוויר בצינור בוטלו. זה חיוני להצלחת זלוף לא לקבל בועות אוויר בכל הקווים. הסר את המזרק ולהתחבר מקבע paraformaldehyde 4% (בטמפרטורת החדר) מיכל. כדי למנוע בועות אוויר בסוף צינורות, לסחוט את הצינור תוך הצבת הצינור לתוך מיכל כך ירידה של בולט חיץ בין לא הסוףהו ליצור קשר עם פני הנוזל בתוך המיכל. לסגור את נמל היציאה (סוף מחט). הפעל שסתום חיץ (כחול) לתפקיד כמו שסתום מקבע (לבן). זה יאפשר זרימת מהקו חיץ בלבד. פתח את נמל היציאה וחזור על שלב A1 עד A3 למילוי שורת חיץ. אחרי כל בועות האוויר בוטלו סמוך לנמל המוצא, הסר את המזרק ולחבר את מיכל חיץ, נזהר שלא להכניס בועות אוויר לתוך צינורות. בדיקת המערכת על היכולת להחזיק לחץ של שאיבת ליילל מד גומי. יש בדרך כלל התנגדות מסוימת עקב דחיסה של אוויר במערכת. תוכנית ההתקנה של כלי ניתוח על מנת קלה של גישה. מלא מחט זלוף עם חיץ כדי לשלול את האפשרות של בועות אוויר. לפני הניתוח, תערובת קטמין / xylazine (עד 80 מ"ג / ק"ג משקל גוף קטמין ו – 10 מ"ג / ק"ג משקל גוף xylazine) ניתנת באמצעות זריקה intraperitoneal (27 מחט מד ו 1 מזרק סמ"ק). הממשל נוסף של הרדמה תבוצע לפי הצורך במהלך כל פעולה כדי לשמור על מטוס כירורגית של הרדמה. 4. זלוף כירורגיה לאחר החיה הגיע מטוס כירורגית של הרדמה, למקם אותו על מגש הרדוד מלאה קרח כתוש. (השתמשו בבוהן קמצוץ התגובה שיטה לקביעת עומק ההרדמה. בעלי חיים חייב שלא להגיב לפני שתמשיך). לעשות חתך לרוחב 5-6 ס"מ דרך integument ואת דופן הבטן ממש מתחת לכלוב הצלעות. להפריד בזהירות את הכבד מן הסרעפת. לעשות חתך קטן הסרעפת באמצעות מעוקלים, מספריים קהים. את המיקום ואת הלחץ של האצבע יכול לסייע היכולת לחתוך את הסרעפת. המשך החתך הסרעפת לאורך כל אורכו של כלוב הצלעות לחשוף את חלל פלאורלי. מניחים מעוקלים, מספריים קהים לאורך צד אחד של הצלעות, בזהירות לעקירתם הריאות, ולגרום מ"קלא באמצעות כלוב הצלעות עד עצם הבריח. לעשות חתך דומה בצד הנגדי. הרמת עצם החזה משם, בזהירות לקצץ בכל רקמת חיבור זה ללב. הצמד את קצה עצם החזה עם hemostat ומניחים hemostat על הראש. כאשר נעשה כראוי, התימוס מרים מן הלב יחד עם עצם החזה, מספקת תצוגה ברורה של הכלים העיקריים. לעשות חתך קטן לסוף האחורי של החדר השמאלי באמצעות מספריים איריס. לחץ כאן כדי להציג דמות גדולה . להעביר מחט 15-מד זלוף בוטה או זית שקצהו דרך החדר חתך לתוך אבי העורקים העולה. טיפ צריך להיות גלוי דרך הקיר של אבי העורקים, ולא צריך להגיע קשת אבי העורקים בו עורקי הזרוע ועל הראש לסטות. השתמש hemostat כדי לצבוט את הלב, זה שמחבר את המחט ומונע דליפה. אם תרצה, hemostat שונה ניתן להשתמש כדי לצבוט אבי העורקים סביב קצה המחט (hemostats אלה להישאר במקום עד לנתיחה מתחיל, אך הם הושמטו מן האיורים הבאים לבהירות). לבסוף, את החתך כדי אטריום הזכות של בעל החיים באמצעות מספריים איריס ליצור בגודל של שקע ככל האפשר מבלי לפגוע באבי העורקים היורד. בשלב זה בעל החיים הוא מוכן להיות perfused. 5. זלוף פתח ולצרף יציאת שקע לבסיס מחט נזהר שלא להציג את כל בועות האוויר. הגבר את הנורה מד הלחץ ללחץ של 80 מ"מ כספית במהירות & שווה. לשמור על לחץ לאורך כל התקופה עירוי חיץ. הפעל את שעון העצר. כוון את זווית המחט. הזווית של המחט הוא קריטי להשגת קצב זרימה מרבי (שימו לב לשינוי לזרום עם התאמת זווית). מעבר חובבאה שסתום (כחול) לאחר חיץ הוא כמעט סיים (200 מ"ל). הנוזלים צריכים לפעול ברור. ניקוי הכבד מהווה אינדיקטור זלוף טוב. הכבד צריך להיות ברור בשלב זה. ציין זמן לצורך תיעוד. רעידות קיבוע יש לשים לב תוך שניות, זה יש לשקול את הזמן האמיתי של קיבעון. ציין זמן לצורך תיעוד. הלחץ יכול להיות בהדרגה להגדיל עד למקסימום של 130 מ"מ כספית 2 כדי לשמור על קצב זרימה יציב. סגור את שסתום היציאה פעם מקבע נגמר כמעט. ציין סיום זמן לצורך תיעוד. החולדה צריכה להיות נוקשה בשלב זה. Paraformaldehyde שימוש יש לאסוף ולאחסן לסילוק על פי תקנות המוסד שלך. 6. דיסקציה 4,11 הסר את הראש באמצעות מספריים. לעשות חתך לאורך קו האמצע integument מהצוואר אל פנים ולחשוףהגולגולת. חתוך את שרירי הצוואר הנותרים כך את בסיס הגולגולת חשוף, להסיר כל שריר שיורי באמצעות מספריים או rongeurs. מחברים את הקצה החד של זוג מספריים איריס אל מגנום foramen מצד אחד, בזהירות מחליק את המספריים על פני השטח הפנימי של הגולגולת. לאחר מכן, לבצע חתך המשתרע על הקצה הדיסטלי של פני הגולגולת האחורי. לעשות חתך זהה בצד הנגדי. השתמש rongeurs לפנות את הגולגולת סביב המוח הקטן. החלק בזהירות את המספריים על פני השטח הפנימי של הגולגולת כמו עצה נוסע מהפינה הגב האחורי דיסטלי לקצה הקדמי הדיסטלי של הגולגולת, מרימה על הלהב כפי שאתה חיתוך כדי למנוע נזק למוח. חזור על הפעולה עבור הצד השני. שימוש rongeurs לקלף פני השטח הגבי של הגולגולת מן המוח. לחתוך את הצדדים של הגולגולת באמצעות rongeurs גם כן. בעזרת מרית, לנתק את חוש הריח ואת נורות connec העצביםtions לאורך פני השטח הגחוני של המוח. בעדינות להקניט את המוח מן הראש, זמירה בכל דורה שעדיין מחבר את המוח לגולגולת באמצעות מספריים איריס. הסר את המוח ומניחים אותו בתוך בקבוק של נוזל המכיל מקבע לפחות 10x נפח המוח עצמו. מערבולת בקבוקון מדי פעם. 7. לאחר קיבוע & Storage שמור על המוח מקבע במשך 24 שעות ב 4 ° C, מתערבל מדי פעם. לאחר 24 שעות לשטוף את המוח עם פוספט שנאגרו מלוחים על ידי החלפת 3 פעמים מדיה מתערבל בכל פעם. המוח יכול להיות מאוחסן פוספט שנאגרו מלוחים או HBHS עם אזיד הנתרן ושמרה על 4 ° C. 8. נציג תוצאות מדד הראשוני של ההצלחה של זלוף הוא הסליקה של הגפיים כמו האף, האוזניים, וכפות רגליים ואיברים פנימיים כגון בלוטת התימוס ועל הכבד (IHC העולם).בדיקה גסה של המוח מגלה את חלל כלי הדם של דם (לבן למראה צהוב בהיר). זה יהיה נכון גם בתוך סעיפים רקמות ליעד עבור מכתים ו אימונוהיסטוכימיה. מדד הסופי של תוצאות זלוף הוא מצב ultrastructure ברקמות. 1,6,7,8 הכן מקבע: להכין מלאי Paraformaldehyde 8% הוסף 40 Paraformaldehyde גרם עד 500 מ"ל DH 2 א ' מחממים את הפתרון 60-65 ° C תוך ערבוב (אין לעבור על 65 מעלות צלזיוס, כך יכול להשפיע לרעה על ההצלחה של ההליך immunohistochemical). כדי לנקות את הפתרון, להפחית את החום ולהוסיף 2-3 מ"ל של 1.0 מ 'NaOH עם טפטפת. סינון חנות ב 4 ° C עד חודש 1. להכין 0.2 סודיום פוספט מאגר M, pH 7.4 עבור המניות פוספט נתרן monobasic, להוסיף 27.8 גר 'נה 2 PO 4 * H 2 O ל 1 ל 2 א' ד"ה עבור המניות פוספט נתרן dibasic, להוסיף 28.4 גר 'Na 2 HPO 4-1 L DH 2 א' הוסף 810 מ"ל של המניה monobasic ל 190 מ"ל של המניה dibasic. הכן מקבע Paraformaldehyde 4% הוסף בחלקים שווים במניות paraformaldehyde 8% למאגר 0.2M נתרן פוספט הערה: תיקון זה מוכן הכי טרי, לא יותר מ 72 שעות מראש. הכן זלוף ו Buffers אחסון: הכן בופר פוספט pH מלוחים, 7.4 1 L DH 2 O 9 גרם NaCl 144 מ"ג KH 2 PO <תת> 4 795 מ"ג Na 2 HPO 4 בדיקת ה-pH HEPES שנאגרו הנקס פתרון (HBHS) עם pH 7.4 נתרן אזיד 990 מ"ל DH 2 O 7.5 גר 'NaCl, 0.3 גרם KCl 0.06 גר 'KH 2 PO 4 0.13 גר 'Na 2 HPO 4 2 גר 'דקסטרוז / גלוקוז 2.4 גרם 10 מ"מ Hepes 0.1 גרם MgCl 2 6 חלקים DH 2 O 0.05 גר 'MgSO 4 7 חלקים DH 2 O 0.165 גרם CaCl 2 2 חלקים DH 2 O 90 מ"ג 3 NaN בדיקת ה-pH טבלה 1. הכנת מקבע ו Buffers. באיור 1. </strong> Apparatus זלוף עם רכיבים המסומנים. איור 2. הכנת מנגנון זלוף א בגין עם קו מקבע. שטוף את צינורות של בועות אוויר וממלאים חיץ במהירות על ידי גירוש ונסיגה חיץ לתוך המזרק דרך הקו. לסגור את השסתום בקצה המחט מעל. מניחים את קו מקבע לבקבוק מקבע ללא החדרת בועות אוויר. איור 3. הכנת מנגנון זלוף השנייה. 1. פתח את השסתום בקצה המחט. 2. הפעל שסתום חיץ (כחול) כדי למקם את הזרימה. 3. שטוף את צינורות של בועות אוויר וממלאים חיץ במהירות על ידי גירוש ונסיגה חיץ עם המזרק. 4. סגור את שסתום בקצה המחט. מניחים צינורות לתוך הבקבוק חיץ. מבחן לחץ על מנת לוודא את מערכת נחרץ הנכוןLY על ידי שאיבה את הנורה מד ומסתכל מד. המכשיר מוכן כעת הליך זלוף. איור 4. Apparatus זלוף במצב למסירה המאגר. איור 5. ניתוח זלוף א) לעשות חתך לרוחב דרך integument ואת דופן הבטן. ב) עושים חתך הסרעפת לחצות את הסרעפת חושפים את הלב. לבצע חתכים מקבילים משני צדי הצלעות עד עצם הבריח. ג) להדק את קצה עצם החזה עם hemostat ומניחים hemostat על הראש. איור 6. ניתוח זלוף השנייה. א) להעביר את המחט דרך זלוף החדר חתך לתוך אבי העורקים העולה. ב) מאובטחמחט זלוף שימוש סט אחד של hemostats כדי לצבוט את הלב. קבוצה שנייה של hemostat שונה יכול לשמש גם כדי לצבוט אבי העורקים סביב קצה המחט מונע דליפה. באמצעות מספריים איריס לעשות חתך קטן לסוף האחורי של החדר השמאלי. איור 7. זלוף עם משאבה למאגר הנורה מד ליצור לחץ על הקו. פתח את השסתום (1) ולצרף לרכזת את המחט. זה קריטי על מנת לוודא שאין בועות אוויר מוצגים. הגבר את הנורה מד הלחץ ללחץ של 80 מ"מ כספית בלחץ ולשמור על זה לאורך כל תקופת העירוי המאגר. איור 8. זלוף עם מקבע לאחר חיץ הוא כמעט סיים (200 מ"ל) להחליף שסתום חיץ (1), כדי לאפשר מקבע לזרום. הלחץ יכול להיות גדל בהדרגה עדמרבי של 130 מ"מ כספית. איור 9. א Dissection) להסיר את הראש בעזרת זוג מספריים. ב) לעשות חתך בעור לאורך קו האמצע של הצוואר אל פנים ולחשוף את הגולגולת. ג) לקצץ את שריר הצוואר הנותרים כך את בסיס הגולגולת חשוף. להחזיק את הראש, כך פתח גדול משטח הגולגולת (foramen magnum) נגיש. בזהירות להכניס את הקצה החד של זוג מספריים איריס אל מגנום foramen ולעשות חתך. חזור על התרגיל אותו לצד הנגדי. השתמש rongeurs לפנות את הגולגולת סביב המוח הקטן. איור 10. Dissection השנייה. א) בזהירות להחליק את המספריים על פני השטח הפנימי של הגולגולת. להרים על קצה כמו שאתה חותך כדי למנוע נזק למוח. לחזור על אותו הדברבצד הנגדי. השתמש rongeurs קליפת הגולגולת מן המוח. ב) באיור עם הגולגולת שהוסר והמוח חשוף. ג) להשתמש במרית לנתק את נורות חוש הריח וחיבורי העצב במיקום הקדמי ביותר של המוח. בזהירות לכוון את קצה מרית לאורך החלק התחתון של המוח לנתק קשרים על מנת להקל על הסר. הסר את המוח ולמקם אותו בקבוקון של מקבע.