本文介绍的方法,从中获得丰富的人口在原代培养的小鼠少突胶质前体细胞(OPCS),它分化为成熟的少突胶质细胞(OLS)。此外,本报告介绍的技术生产小鼠myelinating播种到小鼠背根神经节(DRGNs)突起床鼠标OPCs的合作文化。
确定基本的OL发展的分子机制,推动我们的OL生物学知识不仅是关键,但也有了解脱髓鞘疾病,如多发性硬化症(MS)的发病机制的影响。细胞发育通常与原代细胞培养模型研究。原代细胞培养有利于对一个给定的细胞类型的评价提供了一个受控环境中,体内多余的变量。虽然从大鼠的职等文化提供入职等生物大量的洞察力,类似的努力,建立从小鼠OL的文化遭到了主要障碍。发展文化小鼠的主要OLS方法是必须以利用现有的转基因小鼠线的优势。
已被描述为啮齿类动物组织中提取OPCs的多种方法,从神经球的推导,差速贴壁纯化和immunopurification 1-3范围。虽然许多方法提供了成功,最需要丰富的文化时间和/或昂贵的设备/试剂。为了解决这个问题,净化适应最初是由麦卡锡和DE Vellis 2描述的方法,从小鼠组织的OPCs的首选。此方法涉及物理分离OPCs的来自新生儿灭鼠皮质的神经胶质混合文化。结果是可以分化成OL丰富文化的纯化OPC人口。这种做法是有吸引力,因为其文化相对短的时间和不必要的生长因子或immunopanning抗体要求。
虽然在纯化文化探索的OL发展的机制是知识性的,它不提供有关生理环境评估髓鞘的形成。与神经元共培养OLS将给予调节OL介导的神经轴突髓鞘的分子基础的洞察力。对于很多OL /神经元共培养研究,背根神经节(DRGNs)已被证明是神经类型的选择。他们是由于其易于提取,少量污染的细胞,并形成致密突起的病床与OLS的合作文化的理想选择。 4-6,虽然研究使用鼠/鼠标myelinating xenocultures已经发表,这样的推导方法OL / DRGN myelinating产后小鼠组织中的合作文化并没有被描述。在这里,我们目前对如何有效地产生这样的文化,以及预期结果的例子详细的方法。这些方法有助于解决OL开发/ myelinating功能的相关问题,并在神经科学领域的有用工具。
这份报告介绍了隔离分化中的OL,丰富的文化或OL / DRGN联合培养的小鼠OPCs的一个方法。单独培养时,OPCs的分化成的MBP +已经 OLS,生产髓鞘膜张。 DRGN突起病床时,OLS enwrap与MBP的DRGN突起+已经膜。这种模式的好处OL介导的神经轴突ensheathment复杂的基础调查。
虽然建立这样的文化具有极大的价值,在技术上是具有挑战性的。特别是,要求方面,包括高效的组织消化/解离,维持平衡文化传媒pH值,并DRGN媒体的变化。重要的是要考虑消化的长度,组织量被消化和trituration金额影响疗效和最终结果的组织分解。这不是不寻常经验的研究人员获得从分离的神经系统组织细胞的产量低。此外,小鼠OPCs的倾向,特别是在碱性条件下,培养基的pH值的变化要敏感。文化维持在8.5%的CO 2,目的是为了防止这种情况,因为OPCs的出现,以更好地容忍超过基本微酸性条件。喂养DRGNs方面,媒体的变化,必须迅速执行,不会变干的神经元,但是,一定要轻柔,以不破坏发展中国家突起床。突然媒体的变化可能撞出从基板突起的床,并有可能导致在其完整的解离盖玻片。
这个模型系统的潜在好处极大地掩盖其技术要求的性质。这种系统的优点之一是产后小鼠细胞培养推导的使用,规避需要牺牲养殖女性收获胚胎组织。另一个优点是生长因子的缺乏扩大的OPCs(GFS)的要求。混合胶质文化提供了一个环境,支持OPCs的,大概是由于星形胶质细胞源性营养因子的存在传播。其他方法,如通过神经球7,8推导,依靠政府飞行服务队的有丝分裂的属性,如碱性成纤维细胞生长因子(bFGF),表皮生长因子(EGF)和血小板衍生生长因子(PDGF)为OPC扩张。同样,产后(P5 – 10)DRGNs的小鼠,避免与神经生长因子(NGF),神经营养因子在体外胚胎DRGNs 9,10生存所需补充的文化传媒的要求。它的利益,以避免使用神经生长因子,因为它产生负面影响的OLS myelinating能力培养DRGNs 4时。避免使用GF -为辅的媒体也有经济利益,作为在大规模使用时,这些试剂成为昂贵的。
或许,这种文化模式最重要的好处是它从鼠标的唯一组织的推导,从而提供机会来自各种各样的转基因小鼠线OPCs的和DRGNs。这允许DRGN和/或OPC特定的属性,执政髓鞘的研究。这将是重要的,特别是阐明受体/配体的相互作用,调节OL介导的神经轴突髓鞘。总之,这是由于神经科学的研究及其应用朝着理解的基础髓鞘的分子线索方面很有价值的技术。
The authors have nothing to disclose.
该项目被授予一个从加拿大多发性硬化症协会RKRWO的资助,是一个从加拿大多发性硬化症协会的助学金的获得者。特别提款权是一种多发性硬化症协会从加拿大和加拿大卫生研究院的博士后奖学金获得者。
Product Name | Company | Product Number |
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM) | Multicell | 319-005-CL |
Hank’s Balanced Salt Solution (HBSS) | Invitrogen | 14170-112 |
Minimum Essential Media (MEM) | GIBCO | 12360-038 |
Fetal Bovine Serum (FBS) | GIBCO | 10091-148 |
Penicillin-Streptomycin (Pen/Strep) | GIBCO | 15140-122 |
GlutaMAX | Invitrogen | 35050-061 |
Poly-l-lysine | Sigma-Aldrich | P2636 |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Sigma-Aldrich | A4503 |
Human merosin purified protein (LN2) | Millipore | CC085 |
Recombinant rat ciliary neurotrophic factor (CNTF) | PeproTech | 450-50 |
L-thyroxine | Biochemika | 89430 |
Holo-transferrin | Sigma-Aldrich | T0665 |
B27 supplement | GIBCO | 0080085-SA |
Bovine insulin | Sigma-Aldrich | I6634 |
3,3′,5-Triiodo-L-thyronine | Sigma-Aldrich | I6634 |
Progesterone | Sigma-Aldrich | P8783 |
Putrescine | Sigma-Aldrich | P7505 |
Sodium Selenite | Sigma-Aldrich | S5261 |
5-Fluoro-2′-deoxyuridine (FuDR) | Sigma-Aldrich | F0503 |
Papain solution | Worthington | LS003126 |
DNaseI | ROCHE | 1010159001 |
L-cysteine | Sigma-Aldrich | C7352 |
24-well tissue culture dishes | Cellstar | 662-160 |
T25-tissue culture flasks with vent cap | Corning | 430639 |
10 cm tissue culture dishes | Corning | 430167 |
10 cm petri dish | Fisher Scientific | 0875713 |
Collagenase A | ROCHE | 103578 |
CellTrics 50 μm filter (optional) | PARTEC | 04-004-2327 |
Myelin Basic Protein (MBP) Antibody | AbD Serotec | MCA409S |
NG2 antibody | Millipore | AB5320 |
Myelin-Associated Glycoprotein (MAG) antibody | Millipore | MAB1567 |
2′,3′-Cyclic-nucleotide 3′-phosphodiesterase (CNP) antibody | Covance | SMI-91R-100 |
Actin pan Ab-5 antibody | Fitzgerald | 10R-A106AX |
Neurofilament-200 (NF) antibody | Sigma-Aldrich | N4142 |
Tubulin beta-3 chain (Tuj1) antibody | Millipore | MAB5544 |
Alexa Fluor 488 goat anti-rabbit IgG (H+L) secondary antibody | Invitrogen | A11008 |
Alexa Fluor 555 goat anti-mouse IgG (H+L) secondary antibody | Invitrogen | A21422 |
Alexa Fluor 647 goat anti-rat (IgG) (H+L) secondary antibody | Invitrogen | A21247 |
Goat anti-mouse IgG (H+L)-HRP conjugated secondary antibody | BioRad | 170-6516 |
Goat anti-rat IgG (H+L)-HRP conjugated secondary antibody | Santa Cruz Biotechnology | SC-2065 |
4′,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) | Sigma-Aldrich | D9542 |
Media Recipes
100X OL-Supplement*
Ingredient | Amount to add |
DMEM | 100 mL |
BSA | 1.02 g |
Progesterone | 0.6 mg |
Putrescine | 161 mg |
Sodium Selenite | 0.05 mg |
3,3′,5-Triiodo-L-thyronine | 4 mg |
*Store at -80°C in 250 μL aliquots
OL media
Ingredient | Amount to add |
DMEM | 23.75 mL |
100X OL-Supplement | 250 μL |
Bovine insulin (from 1 mg/mL stock) | 125 μL |
GlutaMAX | 250 μL |
Holo-transferrin (from 33 mg/mL stock) | 37.5 μL |
B27 Supplement | 500 μL |
FBS | 125 μL |
CNTF (from 50 ng/μL stock) | 25 μL |
Mixed glial culture media (made up in DMEM)
Ingredient | Final concentration |
FBS | 10% |
Pen/Strep (0.33% from stock) | 33 units/mL Penicillin and 33 μg/mL Streptomycin |
GlutaMAX | 1% |
DRGN media (made up in DMEM)
Ingredient | Final concentration |
FBS | 10% |
Pen/Strep (1% from stock) | 100 units/mL Penicillin and 100 μg/mL Streptomycin |
Digestion Solution Recipes:
OPC papain solution (made up in MEM)
Ingredient | Final concentration |
Papain solution | 1.54 mg/mL |
L-cysteine | 360 μg/mL |
DNaseI | 60 μg/mL |
DRG papain solution (made up in HBSS)
Ingredient | Final concentration |
Papain | 1.54 mg/mL |
L-cysteine | 360 μg/mL |
DRG Collagenase A solution (made up in HBSS)
Ingredient | Final concentration |
Collagenase A | 4 mg/mL |