Summary

Surveillance des cellules immunitaires trafic fluorescent Rods Prion heures après l'infection par voie intrapéritonéale

Published: November 19, 2010
doi:

Summary

Nous décrivons ici un nouveau test pour la surveillance et le trafic de l'absorption du prion par les cellules immunitaires, immédiatement après l'inoculation intrapéritonéale en purifiant et en fluorescence étiquetage tiges prion agrégés à partir de tissu cérébral infecté, puis le suivi de leur absorption et le mouvement à partir du site d'injection et la caractérisation des cellules médiation de ces événements.

Abstract

Présence d'une forme anormale d'une protéine prion codée par l'hôte (PrPc) qui est résistant à la protéase, pathologiques et infectieux caractérise les maladies à prions comme la maladie débilitante chronique (MDC) des cervidés et la tremblante du mouton. L'hypothèse du prion, affirme que ce conformère anormal constitue plupart ou la totalité du prion infectieux. Le rôle du système immunitaire dans les événements précoces dans la pathogenèse du prion périphérique a été démontré de façon convaincante pour le MDC et la tremblante 1-3. Des études pharmacologiques transgéniques et des souris ont révélé un rôle important du système du complément à conserver et reproduire les prions tôt après l'infection 4-6. In vitro et in vivo ont également observé la rétention des prions par les cellules dendritiques 7-10, bien que leur rôle dans le trafic reste clair 11-16. Les macrophages ont eux aussi été impliqués dans la pathogenèse du prion début, mais ces études ont porté sur les événements survenus semaines après l'infection 3,11,17. Ces études antérieures souffrent également du problème de la différenciation entre endogènes PrP C et les prions infectieux. Nous décrivons ici un semi-quantitative, approche impartiale pour évaluer l'absorption du prion et le trafic du site d'inoculation par les cellules immunitaires recrutées là. Tringles à prions ont été agrégées purifiée à partir de l'homogénat de cerveau infecté par solubilisation d'un détergent non agrégées de protéines et d'ultracentrifugation sur un coussin de saccharose. Électrophorèse sur gel polyacrylamide, le bleu de Coomassie coloration et l'ouest de la récupération buvard confirmés de tiges prion hautement enrichi dans la fraction culot. Tringles à prions ont été marqués par voie intrapéritonéale fluorochrome, puis injectées dans des souris. Deux heures plus tard les cellules immunitaires du liquide de lavage péritonéal, la rate et les ganglions lymphatiques médiastinaux et mésentériques ont été analysés pour la rétention des prions tige et sous-ensembles de cellules identifiées par cytométrie en flux utilisant des marqueurs multicolores pour les monocytes, les neutrophiles, les cellules dendritiques, les macrophages et les cellules B et T. Ce test permet la surveillance directe de la première fois des cellules immunitaires acquisition et prions le trafic in vivo dans les heures suivant l'infection. Ce test a également différencie clairement infectieuses, les prions agrégés à partir de la PrPC normalement exprimé sur les cellules hôtes, ce qui peut être difficile et conduire à des problèmes d'interprétation des données dans les systèmes de dosage d'autres. Ce protocole peut être adapté à d'autres voies d'inoculation (voie orale, intraveineuse, intranervous et sous-cutanée, par exemple) et les antigènes (perles conjugués, les agents pathogènes bactériens, viraux et parasitaires et les protéines, les œufs) ainsi.

Protocol

1. Purifiant et l'étiquetage des tiges à prions Ce protocole est adapté d'un 18 précédemment publiés Homogénéiser 100 grammes de prion infectées par le tissu cérébral dans 900 ml de glace de tampon d'homogénéisation froid (HB, 1X PBS contenant 320 mM de saccharose, NaCl 150 mM EDTA et 4mm) 1 min à vitesse maximale dans une publicité mixeur, puis 2 min sur la glace. Répétez trois fois. Centrifuger l'homogénat pendant 10 m…

Discussion

Ici nous démontrons un protocole de marquage et de suivi des prions in vivo qui facilite grandement le suivi des événements précoces de l'infection à prion périphériques. Ce protocole améliore grandement sur ​​les tentatives passées au absorption prion surveillance in vitro et in vivo 9 3,12 en pré-étiquetage inoculum prion hautement enrichi sans ambiguïté le différencier de la PrP C endogène. Parce que les prions infectieux et la PrP C p…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions Steve et Jeff Hansen McBryant de l'aide pour l'ultracentrifugation et Patti Kiser de l'aide pour la manipulation de la souris. L'Institut national des maladies neurologiques et des maladies au National Institutes of Health, accorder 5R01NS056379-02 financé ce travail.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
CWD-infected elk brain   Private elk farm in Colorado   Use any non-human prion-infected brain
Blender   Oster 6694-015 Use any commercial blender
Centrifuge   Sorvall SS34 rotor Use any centrifuge /rotor that can reach 3000 x g and hold ≥ 500 ml volumes
Ultracentrifuge   Beckman 50.2 Ti rotor Use any ultracentrifuge /rotor that can reach 100,000 x g and hold ≥ 500 ml volumes
Bradford Reagent   Sigma-Aldrich B6916  
Complete mini protease inhibitor cocktail   Roche 11 836 170 001  
Sonicator   Misonix MP4000X Use any horn or probe sonicator set to ~70% max power
DyLight antibody Labeling kit   Thermo Scientific 53050  
microcentrifuge   Eppendorf 55430R Use any refrigerated microcentrifuge that can achieve 13,000x g
centrifugal filter columns   Millipore Microcon YM-100 Use any filter or dialysis membrane with 100 Kd molecular weight cutoff
8-40 week-old FVB mice   Charles River 207 Use any inbred mouse strain
1 μm red fluorescent beads   Phosphorex 2307 Use any fluorescent bead ≤ 10 μm
RPMI 1640 medium   Invitrogen 11875-093  
40 μm cell strainer   Falcon 352340  
fluorescent antibodies   BD pharmingen Various Use any fluorescent antibody appropriate for your application.
flow cytometer   Dakocytomation CyanADP Use any flow cytometer capable of multicolor fluorescence detection

References

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Cite This Article
Johnson, T. E., Michel, B. A., Meyerett, C., Duffy, A., Avery, A., Dow, S., Zabel, M. D. Monitoring Immune Cells Trafficking Fluorescent Prion Rods Hours after Intraperitoneal Infection. J. Vis. Exp. (45), e2349, doi:10.3791/2349 (2010).

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