Aquí presentamos la inyección intracraneal de vectores AAV de marcaje fluorescente de las neuronas y la glía en la corteza visual.
Abstract
Inyección intracraneal de vectores virales para expresar una proteína fluorescente es una técnica de etiquetado versátil para la visualización de grupos específicos de células en diferentes regiones del cerebro, tanto en vivo y en secciones de cerebro. A diferencia de la inyección de colorantes fluorescentes, etiquetado viral ofrece focalización de los tipos de células y es menos costoso y consume mucho tiempo que el establecimiento de líneas de ratones transgénicos. En esta técnica, un virus adeno-asociados (AAV) vector se inyecta por vía intracraneal mediante coordenadas estereotáxica, una micropipeta y una bomba automática para la entrega precisa de AAV en la zona deseada con el mínimo daño a los tejidos circundantes. Los parámetros de inyección se pueden adaptar a los distintos experimentos mediante el ajuste de la edad del animal a una velocidad de inyección, la ubicación de la inyección, el volumen de la inyección, la inyección, el serotipo AAV y el promotor dirige la expresión de genes. Dependiendo de las condiciones elegidas, de forma viral inducida por la expresión del transgén puede permitir la visualización de grupos de células, las células individuales o bien los procesos celulares, hasta el nivel de las espinas dendríticas. El experimento que se muestra aquí muestra una inyección de doble cadena AAV que expresa la proteína verde fluorescente para el etiquetado de las neuronas y la glía en la corteza visual primaria del ratón.
Protocol
1. Virus Manipulación y almacenamiento Protección adecuada y técnicas de manejo deben ser elegidos con base en el nivel de bioseguridad de los virus que se utilizarán. Estas prácticas se pueden encontrar en Seguridad de la Biotecnología en la edición de los laboratorios microbiológicos y biomédicos º 5, disponible en el sitio web de CDC ( http://www.cdc.gov/od/OHS/biosfty/bmbl5/bmbl5toc.htm ). El uso de vectores AAV…
Discussion
Viral mediada por la entrega de genes tiene un gran potencial para el estudio de los procesos neurológicos y el tratamiento de trastornos cerebrales 1,2,3. La gran versatilidad de esta técnica también puede ser aprovechado para marcar con fluorescencia células para obtener imágenes tanto in vitro como in vivo4. Aquí se demuestra un procedimiento detallado para la transducción de las neuronas y la glía en la corteza visual del ratón con una doble cadena adeno-virus que ex…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Este trabajo fue posible gracias a subvenciones del NIH (EY012977), el Premio de carrera en las Ciencias Biomédicas del Fondo Burroughs Wellcome, la Fundación de Whitehall, y la Fundación Sloan (AKM).
Materials
Material Name
Type
Company
Catalogue Number
Comment
Stoelting Mouse and Neonatal Rat Adaptor
Stoelting
51625
Regular stereotax for securing animals for surgery may be substituted
Extra Fine Bonn Scissors, 8.5cm, straight tip, cutting edge 13mm
Fine Science Tools
14084-08
Eye Dressing Forceps, 10cm, tip width 0.5mm, curved
Fine Science Tools
11152-10
Dumont #5/45 Forceps- Dumoxel Standard Tip, 11cm, angled
Fine Science Tools
11251-35
Extra-fine tipped forceps for performing craniotomy
Standard Pattern Forceps, straight, 2.5mmx1.35mmtip, 12cm
Fine Science Tools
11000-12
Microtorque Control Box and Tech2000 handpiece
Ram Products, Inc.
TECH2000ON/OFF
Dental drill
Micro Drill Stainless Steel Burrs 1.4mm tip diameter
Fine Science Tools
19008-14
Wiretrol micropipettes, to deliver 1-5 Ul
VWR International/ Drummond
5-000-1001 or 53480-287
Mineral oil
VWR International
29447-338
Manual Micromanipulator and Tilting Base (right-handed)
World Precision Instruments, Inc.
M3301-M3-R
Used for determining stereotaxic co-ordinates
UltraMicroPump (UMP3) (one) with SYS-Micro4 Controller
World Precision Instruments, Inc.
UMP3-1
Sutures
VWR International
95056-952
P-97 Flaming/Brown Micropipette Puller
Sutter Instruments
P-97
Tobradex
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