Summary

Flödescytometribaserad kvantifiering och analys av myokardiella B-celler

Published: August 17, 2022
doi:

Summary

Här rapporterar vi ett protokoll för kvantifiering och differentiering av myokardiella B-lymfocyter baserat på deras placering i det intravaskulära eller endoteliala utrymmet med hjälp av flödescytometri.

Abstract

En växande mängd bevis visar att B-lymfocyter spelar en viktig roll i samband med myokardiell fysiologi och myokardiell anpassning till skada. Litteraturen rapporterar dock kontrasterande data om förekomsten av myokardiella B-celler. B-celler har rapporterats vara både bland de vanligaste immuncellerna i gnagarhjärtat eller vara närvarande, men med en markant lägre prevalens än myeloida celler, eller för att vara ganska sällsynta. På samma sätt har flera grupper beskrivit att antalet myokardiella B-celler ökar efter akut ischemisk hjärtskada, men en grupp rapporterade inga förändringar i antalet B-celler i det skadade myokardiet. Implementering av en delad, reproducerbar metod för att bedöma förekomsten av myokardiella B-celler är avgörande för att harmonisera observationer från olika forskargrupper och därmed främja utvecklingen av studien av B-cells myokardiella interaktioner. Baserat på vår erfarenhet härrör de till synes kontrasterande observationerna som rapporterats i litteraturen sannolikt från det faktum att murina myokardiella B-celler mestadels är intravaskulära och kopplade till det mikrovaskulära endotelet. Därför är antalet B-celler som återvinns från ett murint hjärta utsökt känsligt för de perfusionsförhållanden som används för att rengöra organet och för den metod för matsmältning som används. Här rapporterar vi ett optimerat protokoll som redovisar dessa två kritiska variabler på ett specifikt sätt. Detta protokoll möjliggör reproducerbar, flödescytometribaserad analys av antalet murina myokardiella B-celler och gör det möjligt för forskare att skilja extravaskulära kontra intravaskulära myokardiella B-celler.

Introduction

B-lymfocyter är högspecialiserade immunceller som spelar en viktig roll i både adaptiva och medfödda immunsvar1. Det finns två huvudpopulationer av B-celler: en mindre population av B1-celler som mestadels produceras under embryonalt liv och en övervägande population av B2-celler som produceras i vuxenlivet i benmärgen1. Efter mognad i benmärgen migrerar B-celler till primära och sekundära lymfoida organ. Därifrån återcirkulerar de kontinuerligt mellan lymfoida organ som färdas genom blodkärl och lymfkärl2. B-celler uttrycker specifika antikroppar på deras yta, som fungerar som receptorer. När B-celler stöter på ett antigen som binder till deras receptor kan en aktiverande signal utlösas. Aktiverade B-celler migrerar antingen till vävnaden där antigenet hittades eller går tillbaka till benmärgen där de kan mogna till antikroppsproducerande plasmaceller 3,4.

Nyligen har det uppskattats att hjärtat har en stor population av B-celler. Studier på gnagare har visat att B-celler koloniserar hjärtat tidigt under embryonal utveckling5, och att myokardassocierade B-celler mestadels är intravaskulära, naiva B2-celler vidhäftade till endotelet6,7, med en liten andel B1-celler 7. Det finns fortfarande många osäkerhetsområden, men tillgängliga data indikerar att B-celler spelar en viktig roll både i det naiva hjärtat och i samband med myokardiell anpassning till skada.

Studier i det naiva murina hjärtat har visat att vid baslinjen är myokardiella B-celler mestadels belägna i det intravaskulära utrymmet, vidhäftade till endotelet (>95% av murina hjärt-B-celler befanns vara belägna i det intravaskulära utrymmet). Dessa B-celler visade sig ha genuttrycksmönster som skiljer sig från de hos cirkulerande B-celler isolerade från det perifera blodet. Analys av naiva hjärtan från B-cellsbristdjur och syngena kontroller visade att djur som saknade B-celler hade mindre hjärtan och högre utkastningsfraktion6. Alla dessa bevis tyder på att B-celler kan modulera myokardiell tillväxt och / eller myokardiell funktion, och att inte bara interstitiella utan också intravaskulära B-celler kan vara ansvariga för sådana observationer. B-celler visade sig också modulera fenotypen för myokardiella makrofager8.

Flera studier har visat att B-celler spelar en viktig roll i samband med myokardiell anpassning till skada 8,9,10,11,12,13. B-celler ackumuleras övergående i det skadade hjärtat, sannolikt genom en CXCL13-CXCR5-beroende mekanism11,13. Därifrån främjar B-celler negativ hjärtombyggnad genom flera mekanismer som inkluderar cytokinmedierad monocytrekrytering 9,12. Dessutom kan B-celler producera antikroppar mot hjärtproteiner som kan främja förlängningen av hjärtskador och negativ hjärtombyggnad genom flera mekanismer 14,15,16,17,18,19,20,21,22,23,24,25 . B-celler kan också utöva skyddande effekter på det skadade hjärtat genom utsöndring av IL-1010.

I takt med att antalet grupper som undersöker B-cellernas roll i det naiva och skadade hjärtat växer blir det allt viktigare att definiera gemensamma protokoll för att korrekt kvantifiera och bedöma myokardiella B-celler och därmed undvika inkonsekvenser som redan har börjat dyka upp i litteraturen. Hittills har B-celler faktiskt både rapporterats vara en av de vanligaste immuncellerna i gnagarhjärtat7 och vara närvarande vid en markant lägre prevalens än myeloida celler26,27, eller vara ganska sällsynta 28. På samma sätt har flera grupper beskrivit att antalet myokardiella B-celler ökar efter akut ischemisk hjärtskada 7,9,13, men en grupp rapporterade inga förändringar i antalet B-celler i det skadade myokardiet29. Studier på hjärtimmunceller ger sällan detaljer om perfusionsförhållanden och det finns ingen överenskommelse om matsmältningsförhållandena. Eftersom en stor andel av B-cellerna i gnagarhjärtat är intravaskulära och extraktionen av immunceller från hjärtmuskeln är starkt beroende av den matsmältningsmetod som används, kan skillnaderna som rapporteras i litteraturen vara resultatet av skillnader i organperfusion och vävnadssmältning.

Här presenteras en detaljerad metod för flödescytometribaserad kvantifiering av murina myokardiella B-celler som maximerar utbytet av B-cellåtervinning genom att optimera perfusions- och matsmältningsförhållandena och möjliggör diskriminering av intravaskulära kontra extravaskulära myokardiella B-celler6. Detta protokoll är en anpassning och optimering av andra liknande protokoll som skiljer mellan intravaskulära och interstitiella immunceller 28,30,31.

I detta protokoll standardiserar vi myokardiell perfusion för att eliminera B-celler som flyter i det intravaskulära utrymmet utan att ta bort biologiskt relevanta B-celler som följs till det mikrovaskulära endotelet. Dessutom, med utgångspunkt i tidigare protokoll som har beskrivit användningen av intravenös injektion av antikroppar för att skilja intravaskulära från interstitiella immunceller32, och dra nytta av det faktum att B-celler uttrycker ytmarkören B22033, visar vi hur man skiljer intravaskulära kontra extravaskulära myokardiella B-celler genom intravaskulär injektion av en B220-specifik antikropp omedelbart före djuroffret och hjärtperfusionen. Detta protokoll är relevant för forskningen från alla forskare som är intresserade av att inkludera analysen av myokardiella B-celler i det naiva och skadade hjärtat. Den utbredda implementeringen av detta protokoll kommer att minska inkonsekvenser mellan forskargrupper, möjliggöra analys av förändringar i de intravaskulära och extravaskulära myokardiella B-cellpoolerna och därmed stärka utvecklingen av upptäckter inom hjärtimmunologi.

Sammanfattningsvis representerar protokollet ett optimerat arbetsflöde för att kvantifiera och analysera myokardiella B-celler via flödescytometri och samtidigt skilja mellan celler som ligger i det extravaskulära utrymmet och det intravaskulära utrymmet.

Protocol

Alla experiment som beskrivs i detta manuskript utfördes med godkännande av IACUC vid Johns Hopkins University School of Medicine. 1. Förberedelser Förbered FACS-bufferten enligt beskrivningen i tabell 1. Se till att det finns tillräckligt med CO2 för att avliva djuren. Förbered dissektionsutrymmet (placera bänkdynan och placera tejpen och dissektionsverktygen i närheten). Märk 15 ml rören, lägg 3 …

Representative Results

När förvärvet är klart och alla händelser har samlats in bör data analyseras enligt standardflödescytometripraxis. Analysens fokus varierar beroende på det individuella målet för varje experiment. I detta fall eftersträvades kvantifiering av intravaskulära och extravaskulära B-celler, och det uttrycktes som antalet celler per mg vävnad. Vid användning av en spektral cytometer rekommenderas att analysen startas med en initial grind för att avlägsna skräp med storlekar som inte…

Discussion

En växande mängd bevis tyder på att B-celler spelar en viktig roll i samband med myokardiell fysiologi och myokardiell ombyggnad / anpassning till skada 7,8,9,10,11,12,13,36. Flödescytometri är ett utmärkt verktyg för att studera immuncellpopulatione…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna studie finansierades av NHLBI-bidragen 5K08HLO145108-03 och 1R01HL160716-01 som tilldelades Luigi Adamo.

Aurora Flow Cytometer som användes för att utveckla denna studie finansierades av NIH Grant S10OD026859. Vi erkänner stödet från JHU Ross Flow Cytometry Core.

Materials

Alexa Fluor 700 anti-mouse/human CD11b Antibody 101222 BioLegend 100 µg 200 µL
(CellTreat 29481) Cell Strainer, 40 µm, Blue QBIAP303 Southern Labware
0.5 mL Natural Microcentrifuge Tube 1605-0000 SealRite, USA Scientific
0.9% Sodium Chloride Injection, USP 114-055-101 Quality Biological 0.90%
1.5 mL Natural Microcentrifuge Tube 1615-5500 SealRite, USA Scientific
10 µL Graduated TipOne Filter Tips 11213810 USA Scientific
1000 µL Graduated TipOne Filter Tips 11267810 USA Scientific
15 mL Centrifuge Tube, Plug Seal Cap, Polypropylene, RNase-/DNase-free 430052 Corning
1-Way Stop Valve, Polycarbonate SVPT951 ECT Manufacturing
2,2,2-Tribromoethanol T48402 Sigma-Aldrich
200 µL Graduated TipOne Filter Tips 11208810 USA Scientific
3-Way Stop Valve, Polycarbonate SVPT953 ECT Manufacturing
5 mL Polystyrene Round-Bottom Tube, 12 x 75 mm style 352054 Falcon, a Corning Brand
50 mL Centrifuge Tube, Plug Seal Cap, Polypropylene, RNase-/DNase-free 430290 Corning
ACK (Ammonium-Chloride-Potassium) Lysing Buffer 118-156-101 Quality Biological Osmolality: 290 + or -5% mOsm/Kg H20
Adapter 4x50ml, for 250 mL rectangular bucket in Rotor A-4-63 5810759005 Eppendorf
Adapter for 15 mL Centrifuge Tubes, 9 Tubes per Adapter, Conical Bottom for use with Rotor Model A-4-62 22638289 Eppendorf
Adapter for 15 round-bottom tubes 2.6 – 7 mL, for 250 mL rectangular bucket in Rotor A-4-62 22638246 Eppendorf
Aluminum Foil 12 in x 75' Roll .0007 UPC 109153 Reynolds Wrap
Anesthesia Induction Chamber – Mouse RWD-AICMV-100 Conduct Science
BD Luer Slip Tip Syringe with attached needle 25 G x 5/8 in., sterile, single use, 1 mL 309626 BD Becton, Dickinson and Company
Brandzig Ultra-Fine Insulin Syringes 29G 1cc 1/2" 100-Pack CMD 2613 Brandzig
Brilliant Violet 421 anti-mouse CD19 Antibody 115537 BioLegend 50 µg/mL
CAPS for Flow Tubes w/strainer mesh 35 µm, Dual position for 12 x 75 mm tubes, sterile T9009 Southern Labware
Carbon Dioxide USP E CGA 940  CD USPE AirGas USA
Cole-Parmer Essentials Low-Form Beaker, Glass, 500 mL UX-34502-46 Cole-Parmer
Collagenase 2 LS004176 Sigma-Aldrich
Connector brass chrome plated 1/4" female NPT x 1/4" barb Y992611-AG AirGas USA
Cytek Aurora Flow Cytometer Cytek Biosciences
Diss 1080 Nipple 1/4 BARB CP M-08-12 AirGas USA
DNase I – 40,000 U D4527 Sigma-Aldrich
Easypet 3 – Electronic Pipette Controller 4430000018 Eppendorf
Electronic Balance, AX223/E 30100606 Ohaus Corp.
Eppendorf 5810R centrifuge 5810R Eppendorf
Eppendorf Research plus 1-channel variable pipettes Eppendorf
FlowJo 10.8.1 BD Becton, Dickinson and Company
GLACIERbrand, triple density Ice Pan (IPAN-3100) Z740287 Heathrow Scientific
HBSS (1x) – Ca2+ [+] Mg2+ [+] 14025076 gibco 1x
Hyaluronidase H3506 Sigma-Aldrich
Kelly Hemostats, Straight 13018-14 Fine Science Tools
Luer Slip Syringe sterile, single use, 20 mL 302831 BD Becton, Dickinson and Company
M1 Adj. Reg 0-100 PSI/CGA940 M1-940-PG AirGas USA
McKesson Underpads, Moderate 4033-CS150 McKesson
Navigator Multi-Purpose Portable Balance NV2201 Ohaus Corp.
PBS pH 7.4 (1X) Ca2+ [-] Mg2+ [-] 10010023 gibco 1x
PE anti-mouse/human CD45R/B220 Antibody 103208 BioLegend 200 µg/mL
PerCP/Cyanine5.5 anti-mouse CD45 Antibody 103132 BioLegend 100 µg 500 uL
Petri dish, Stackable 35 mm x 10 mm Sterile Polystyrene FB0875711YZ Fisher Scientific
Pkgd: Diss 1080 Nut/CO2/CO2-02 M08-1 AirGas USA
Powerful 6 Watt LED Dual Goose-Neck Illuminator LED-6W AmScope
PrecisionGlide Needle 25 G x 5/8 (0.5 mm x 16 mm) 305122 BD Becton, Dickinson and Company
Purified Rat Anti-Mouse CD16/CD32 (Mouse BD Fc Block) Clone 2.4G2 (RUO) 553141 BD Becton, Dickinson and Company Biosciences 0.5 mg/mL
R 4.1.1 The R Foundation
Razor Blades 9501250000 Accutec Blades Inc
Regulator analytical two stage 0-25 psi delivery CGA320 3500 psi inlet Y12244A320-AG AirGas USA
Rotor A-4-62, incl. 4 x 250 mL rectangular buckets Rotor A-4-62 Eppendorf
Serological pipette, plugged, 10 mL, sterile, non-pyrogenic/endotoxin-free, non-cytotoxic, 1 piece(s)/blister 86.1254.001 Sarstedt AG & Co KG
Sigma label tape L8394 Sigma-Aldrich
SpectroFlo 3.0.0 Cytek Biosciences
Spex VapLock Luer Fitting, PP, Straight, Male Luer Lock x 1/8" Hose Barb; 1/EA MTLL230-6005 Spex
Std Wall Lab Tubing, Size S2, Excelon, 1/8" ID x 3/16" OD x 1/32" Wall x 50' Long CG-730-003 Excelon Laboratory
Syringe PP/PE without needle, 3 mL Z683566 Millipore Sigma
Syringe pump 55-1199 (95-240) Harvard Apparatus
Thomas 3-Channel Alarm Timer TM10500 9371W13 Thomas Scientific
Tube Rack, 12 positions, 6 for 5.0 mL and 15 mL tubes and 6 for 25 mL and 50 mL tubes, polypropylene, numbered positions, autoclavable 30119835 Eppendorf
Tube Rack, 12 positions, for 5.0 mL and 15 mL tubes, polypropylene, numbered positions, autoclavable 30119827 Eppendorf
TYGON R-3603 Laboratory Tubing, I.D. × O.D. 1/4 in. × 3/8 in. T8913 (Millipore Sigma) Tygon, Saint-Gobain
Vortex-Genie 2 SI-0236 Scientific Industries, Inc.
VWR Dissecting Forceps with Guide Pin with Curved Tips 89259-946 Avantor, by VWR
VWR Dissecting Scissors, Sharp Tip, 4½" 82027-578 Avantor, by VWR
VWR Incubating Orbital Shaker, Model 3500I 12620-946 Avantor, by VWR
Zombie Aqua Fixable Viability Kit 423102 BioLegend

Riferimenti

  1. Adamo, L., Rocha-Resende, C., Mann, D. L. The emerging role of B lymphocytes in cardiovascular disease. Annual Review of Immunology. 38, 99-121 (2020).
  2. Gowans, J. L., Knight, E. J. The route of re-circulation of lymphocytes in the rat. Proceedings of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences. 159 (975), 257-282 (1964).
  3. Kunkel, E. J., Butcher, E. C. Chemokines and the tissue-specific migration of lymphocytes. Immunity. 16 (1), 1-4 (2002).
  4. Tanaka, T., et al. Molecular determinants controlling homeostatic recirculation and tissue-specific trafficking of lymphocytes. International Archives of Allergy and Immunology. 134 (2), 120-134 (2004).
  5. Rocha-Resende, C., et al. Developmental changes in myocardial B cells mirror changes in B cells associated with different organs. JCI Insight. 5 (16), (2020).
  6. Adamo, L., et al. Myocardial B cells are a subset of circulating lymphocytes with delayed transit through the heart. JCI Insight. 5 (3), 139377 (2020).
  7. Adamo, L., et al. Modulation of subsets of cardiac B lymphocytes improves cardiac function after acute injury. JCI Insight. 3 (11), (2018).
  8. Rocha-Resende, C., Pani, F., Adamo, L. B cells modulate the expression of MHC-II on cardiac CCR2(-) macrophages. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 157, 98-103 (2021).
  9. Zouggari, Y., et al. B lymphocytes trigger monocyte mobilization and impair heart function after acute myocardial infarction. Nature Medicine. 19 (10), 1273-1280 (2013).
  10. Wu, L., et al. IL-10-producing B cells are enriched in murine pericardial adipose tissues and ameliorate the outcome of acute myocardial infarction. Proceedings of the National Academy of Sciences. 116 (43), 21673-21684 (2019).
  11. Heinrichs, M., et al. The healing myocardium mobilizes a distinct B-cell subset through a CXCL13-CXCR5-dependent mechanism. Cardiovascular Research. 117 (13), 2664-2676 (2021).
  12. Sun, Y., et al. Splenic marginal zone B lymphocytes regulate cardiac remodeling after acute myocardial infarction in mice. Journal of the American College of Cardiology. 79 (7), 632-647 (2022).
  13. Yan, X., et al. Temporal dynamics of cardiac immune cell accumulation following acute myocardial infarction. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 62, 24-35 (2013).
  14. Iwata, M., et al. Autoimmunity against the second extracellular loop of beta(1)-adrenergic receptors induces beta-adrenergic receptor desensitization and myocardial hypertrophy in vivo. Circulation Research. 88 (1), 578-586 (2001).
  15. Jahns, R., et al. Direct evidence for a beta 1-adrenergic receptor-directed autoimmune attack as a cause of idiopathic dilated cardiomyopathy. The Journal of Clinical Investigation. 113 (10), 1419-1429 (2004).
  16. Christ, T., et al. Autoantibodies against the beta1 adrenoceptor from patients with dilated cardiomyopathy prolong action potential duration and enhance contractility in isolated cardiomyocytes. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 33 (8), 1515-1525 (2001).
  17. Jane-wit, D., et al. Adrenergic receptor autoantibodies mediate dilated cardiomyopathy by agonistically inducing cardiomyocyte apoptosis. Circulation. 116 (4), 399-410 (2007).
  18. Ludwig, R. J., et al. Mechanisms of autoantibody-induced pathology. Frontiers in Immunology. 8, 603 (2017).
  19. Haudek, S. B., et al. Fc receptor engagement mediates differentiation of cardiac fibroblast precursor cells. Proceedings of the National Academy of Sciences. 105 (29), 10179-10184 (2008).
  20. Staudt, A., Eichler, P., Trimpert, C., Felix, S. B., Greinacher, A. Fc(gamma) receptors IIa on cardiomyocytes and their potential functional relevance in dilated cardiomyopathy. Journal of the American College of Cardiology. 49 (16), 1684-1692 (2007).
  21. Zhang, M., et al. The role of natural IgM in myocardial ischemia-reperfusion injury. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 41 (1), 62-67 (2006).
  22. Zhang, M., et al. Identification of a specific self-reactive IgM antibody that initiates intestinal ischemia/reperfusion injury. Proceedings of the National Academy of Sciences. 101 (11), 3886-3891 (2004).
  23. Schulze, K., Becker, B. F., Schauer, R., Schultheiss, H. P. Antibodies to ADP-ATP carrier–an autoantigen in myocarditis and dilated cardiomyopathy–impair cardiac function. Circulation. 81 (3), 959-969 (1990).
  24. Matsumoto, Y., Park, I. K., Kohyama, K. B-cell epitope spreading is a critical step for the switch from C-protein-induced myocarditis to dilated cardiomyopathy. The American Journal of Pathology. 170 (1), 43-51 (2007).
  25. Caforio, A. L. P., et al. Current state of knowledge on aetiology, diagnosis, management, and therapy of myocarditis: a position statement of the European Society of Cardiology Working Group on Myocardial and Pericardial Diseases. European Heart Journal. 34 (33), 2636-2648 (2013).
  26. Pinto, A. R., et al. Revisiting cardiac cellular composition. Circulation Research. 118 (3), 400-409 (2016).
  27. Yu, Y. R., et al. A protocol for the comprehensive flow cytometric analysis of immune cells in normal and inflamed murine non-lymphoid tissues. PLoS One. 11 (3), 0150606 (2016).
  28. Epelman, S., et al. Embryonic and adult-derived resident cardiac macrophages are maintained through distinct mechanisms at steady state and during inflammation. Immunity. 40 (1), 91-104 (2014).
  29. Horckmans, M., et al. Pericardial adipose tissue regulates granulopoiesis, fibrosis and cardiac function after myocardial infarction. Circulation. 137 (9), 948-960 (2017).
  30. Lavine, K. J., et al. Distinct macrophage lineages contribute to disparate patterns of cardiac recovery and remodeling in the neonatal and adult heart. Proceedings of the National Academy of Sciences. 111 (45), 16029-16034 (2014).
  31. Bajpai, G., Lavine, K. J. Isolation of macrophage subsets and stromal cells from human and mouse myocardial specimens. Journal of Visualized Experiments. (154), e60015 (2019).
  32. Anderson, K. G., et al. Intravascular staining for discrimination of vascular and tissue leukocytes. Nature Protocols. 9 (1), 209-222 (2014).
  33. Coffman, R. L., Weissman, I. L. B220: a B cell-specific member of th T200 glycoprotein family. Nature. 289 (5799), 681-683 (1981).
  34. Montecino-Rodriguez, E., Dorshkind, K. B-1 B cell development in the fetus and adult. Immunity. 36 (1), 13-21 (2012).
  35. Bermea, K., Bhalodia, A., Huff, A., Rousseau, S., Adamo, L. The role of B cells in cardiomyopathy and heart failure. Current Cardiology Reports. , 01722-01724 (2022).
  36. Zhao, T. X., et al. Rituximab in patients with acute ST-elevation myocardial infarction: an experimental medicine safety study. Cardiovascular Research. 118 (3), 872-882 (2022).
  37. Kushnir, N., et al. B2 but not B1 cells can contribute to CD4+ T-cell-mediated clearance of rotavirus in SCID mice. Journal of Virology. 75 (12), 5482-5490 (2001).

Play Video

Citazione di questo articolo
Bermea, K. C., Rousseau, S. T., Adamo, L. Flow Cytometry-Based Quantification and Analysis of Myocardial B-Cells. J. Vis. Exp. (186), e64344, doi:10.3791/64344 (2022).

View Video