Summary

Dynamisk vedheft analysen for funksjonell analyse av anti-vedheft terapi i inflammatorisk tarmsykdom

Published: September 20, 2018
doi:

Summary

Dynamisk vedheft av immunceller fartøyet veggen er en forutsetning for gut homing. Her presenterer vi en protokoll for en funksjonell i vitro analysen for innvirkning analyse av anti-integrin antistoffer, chemokines eller andre faktorer på dynamisk celle vedheft av menneskelige celler ved hjelp av addressin-belagt kapillærer.

Abstract

Gut homing av immunceller er viktig for patogenesen av inflammatorisk tarm sykdommer (IBD). Integrin-avhengig celle vedheft til addressins er et viktig skritt i denne prosessen og strategier forstyrrer vedheft har blitt opprettet. Ulcerøs kolitt (UC) og videre forbindelser er trolig følge anti-α4β7 integrin antistoffer, vedolizumab, brukes for klinisk behandling av Crohns sykdom (CD).

Detaljer om vedheft prosedyren og handling mekanismer for anti-integrin antistoffer er fortsatt uklart i mange forhold på grunn av begrensede tilgjengelige teknikker for funksjonell forskning i dette feltet.

Her presenterer vi en dynamisk vedheft analysen for funksjonell analyse av human celle vedheft under strømningsforhold og virkningen av anti-integrin terapi i sammenheng med IBD. Den er basert på perfusjon av primære menneskelige celler gjennom addressin-belagt ultrathin glass kapillærene med sanntid mikroskopisk analyse. Analysen tilbyr en rekke muligheter for forbedringer og endringer, og har potensial for mekanistisk funn og translasjonsforskning programmer.

Introduction

Cellen bevegelse er en strengt regulert prosess uunnværlig for utvikling og funksjon av multi-mobilnettet organismer, men er også innblandet i patogenesen av en rekke sykdommer1. Nylig har homing prosessen av immunceller fra blodet perifere vev fått økende oppmerksomhet, siden det bidrar til påfylling og utvidelse av patogene celler i betent vev i immunologisk mediert sykdommer2 ,3. Spesielt har homing vist å ha translasjonsforskning relevans i inflammatorisk tarm sykdommer (IBD). Den terapeutiske anti-α4β7 integrin antistoff vedolizumab forstyrrer gut homing har vist effekt i store kliniske studier4,5 og har blitt brukt i reelle klinisk praksis6,7 , 8. videre forbindelser er trolig følge9,10. Tilsvarende brukes terapeutiske anti-α4 integrin antistoffer, natalizumab, for behandling av multippel sklerose (MS)11.

Men er våre funksjonell forståelse av homing prosessen generelt og virkningsmekanismen av slike terapeutiske antistoffer spesielt fortsatt begrenset. Det er godt etablert at homing består av flere trinn inkludert celle tethering og rulle med påfølgende celleadhesjon fører til fast arrestasjonen etterfulgt av trans endothelial migrasjon12,13. Ovennevnte antistoffer nøytralisere integrins på celleoverflaten forhindrer interaksjon med addressins på endothelium av fartøyet veggen. Dette er antatt å hindre fast celle vedheft14,15. Likevel, vi bare begynner å forstå differensial relevansen av bestemte integrins for cellen homing av forskjellige celle undergrupper. Videre effekten av anti-integrin antistoffer på ulike celle delsett og dose-respons foreninger er hovedsakelig ubekjent fører til mange åpne spørsmål innen gut homing og anti-vedheft terapi i IBD.

Derfor trengte praktisk verktøy for å ta opp slike spørsmål desperat. Effekten av anti-integrin antistoffer på integrin-addressin interaksjon er så langt hovedsakelig evaluert ved å vurdere bindende effekt binding hemming flowcytometri eller gjennom statisk vedheft analyser16,17 ,18,19,20, dermed med åpenbare forenkling og avvik fra fysiologiske situasjonen. Vi har nylig etablert en dynamisk vedheft analysen for å studere integrin-avhengige vedheft av menneskelige celler til addressins og effekten av anti-integrin antistoffer under skjæring stress2. Prinsippet om teknikken har tidligere blitt demonstrert med musen celler21,22. Her var tilpasset og utviklet for å håndtere de ovennevnte translasjonsforskning spørsmålene, åpning romanen veier for å bedre forstå mekanismene terapi med anti-integrin antistoffer i vivo.

Protocol

Studiene beskrevet nedenfor er utført etter godkjenning av den etiske komiteen av Friedrich-Alexander University Erlangen-Nuremberg. 1. utarbeidelse av kapillærene Koble rektangulære kapillærene til gummi slangen ved strekking slangen på én side med liten saks og nøye sette av kapillær (ca 0,5 cm) inn i røret. Forsegle forbindelsen mellom kapillære og røret med plast parafin film. Strøk av kapillær med 20 µL addressin (rekombinant Fc chimera, 5 µg/mL addressi…

Representative Results

Metoden presentert i dette manuskriptet å simulere i vivo prosessen med human celle vedheft til endotelial veggen så nært som mulig til funksjonelt vurdere celleadhesjon og rollen av forstyrrende antistoffer. Derfor er ultrathin kapillærene belagt med addressins og parfyme med fluorescently merket menneskelige celler av interesse ved hjelp av en perfusjonsmåling pumpe. Bruke levende celle imaging vedheft av menneskelige celler til addressins kan observeres i sanntid (<strong…

Discussion

Over protokollen beskriver en nyttig teknikk for å studere dynamisk vedheft av menneskelig immunceller endothelial ligander. Gjennom variasjon belagt ligander, parfyme celletyper eller delsett, inkubasjon med ekstra stimuli eller annen nøytraliserende antistoffer, har det nesten ubegrenset bruksmuligheter. Derfor kan slik dynamisk vedheft analyser være nyttig å svare både grunnleggende spørsmål om grunnleggende forskning samt translasjonsforskning spørringer som kan bidra til å utvikle og optimalisere kliniske m…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forskning av CN, IA, MFN og SZ ble støttet av tverrfaglig senter for klinisk forskning (IZKF) og ELAN programmet University Erlangen-Nuremberg, den andre Kröner-Fresenius-Stiftung, Fritz-Bender-Stiftung, tysk Crohns og Kolitt Foundation (DCCV), klinisk forskning gruppe CEDER av tysk Research Council (DFG), programmet DFG emnet på bakterieflora, nye feltet initiativ og den DFG samarbeidende forskning sentre 643, 796 og 1181.

Materials

48-Well plate Sarstedt 833,923
Adhesion buffer: 150mM NaCl + 1mM HEPES + 1mM MgCl2 + 1mM CaCl2
Blocking solution: 1x PBS in ddH2O + 5 % BSA
Bovine Serum albumin (BSA) Applichem A1391,0100
CaCl2 Merck 2382
Capillaries: Rectangle Boro Tubing 0,20×2.00 mm ID, 50 mm length CM Scientific 3520-050
CCL-2, human Immunotools 11343384
CD4-Microbeads, human Miltenyi Biotec 130-045-101
CellTrace™ CFSE Cell Proliferation Kit ThermoFischer Scientific C34554
Centrifuge (Rotixa 50 RS) Hettrich
Coating buffer: 150 mM NaCl + 1 mM HEPES
Confocal Microscope (TCS SP8) Leica
CXCL-10, human Immunotools 11343884
Dextran 500 Roth 9219.3
EDTA KE/9 ml Monovette Sarstedt
Falcons (50 mL) Sarstedt 62,547,004
Fc chimera isotype control R&D Systems 110-HG
Flow Rates Peristaltic Pump (LabV1) Baoding Shenchen Precision Pump Company
HEPES VWR J848-100ML
Human IgG Isotype Control ThermoFischer Scientific 31154
Intercellular Adhesion Molecule 1 (ICAM-1) Fc chimera R&D Systems 720-IC-050
LS-Columns Miltenyi Biotec 130-042-401
MgCl2 Roth
MnCl2 Roth
mouse IgG isotype control Miltenyi Biotec 130-106-545
Mucosal Vascular Addressin Cell Adhesion Molecule 1 (MAdCAM-1) Fc chimera R&D Systems 6056-MC
NaCl Roth 3957.3
Natalizumab Biogen
Neubauer Counting chamber Roth T729.1
Pancoll, human PAN Biotech P04-601000
Phosphate Buffered Saline (PBS)  Biochrom L 182-10 w/o Mg and Ca
Plastic paraffin film: Parafilm (PM-996) VWR 52858-000
purified anti-human CD18 Biolegend 302102
RPMI Medium 1640 Gibco Life Technologies 61870-010
Rubber tubing: SC0059T 3-Stop LMT-55 Tubing, 1.02mm ID, 406.4 mm length Ismatec SC0059
Serological Pipetts Sarstedt 861,254,025
Trypan blue Roth CN76.1
Vascular Cell Adhesion Molecule 1 (VCAM-1) Fc chimera Biolegend 553706
Vedolizumab (Entyvio) Takeda

Riferimenti

  1. von Andrian, U. H., Mackay, C. R. T-Cell Function and Migration – Two Sides of the Same Coin. New England Journal of Medicine. 343 (14), 1020-1034 (2000).
  2. Zundler, S., et al. The α4β1 Homing Pathway Is Essential for Ileal Homing of Crohn’s Disease Effector T Cells In Vivo. Inflammatory Bowel Diseases. 23 (3), 379-391 (2017).
  3. Binder, M. -. T., et al. Similar inhibition of dynamic adhesion of lymphocytes from IBD patients to MAdCAM-1 by vedolizumab and etrolizumab-s. Inflammatory Bowel Diseases. , (2018).
  4. Feagan, B. G., et al. Vedolizumab as induction and maintenance therapy for ulcerative colitis. The New England Journal of Medicine. 369 (8), 699-710 (2013).
  5. Sandborn, W. J., et al. Vedolizumab as induction and maintenance therapy for Crohn’s disease. The New England Journal of Medicine. 369 (8), 711-721 (2013).
  6. Baumgart, D. C., Bokemeyer, B., Drabik, A., Stallmach, A., Schreiber, S. Vedolizumab Germany Consortium Vedolizumab induction therapy for inflammatory bowel disease in clinical practice–a nationwide consecutive German cohort study. Alimentary Pharmacology & Therapeutics. 43 (10), 1090-1102 (2016).
  7. Kopylov, U., et al. Efficacy and Safety of Vedolizumab for Induction of Remission in Inflammatory Bowel Disease-the Israeli Real-World Experience. Inflammatory Bowel Diseases. 23 (3), 404-408 (2017).
  8. Amiot, A., et al. Effectiveness and Safety of Vedolizumab Induction Therapy for Patients With Inflammatory Bowel Disease. Clinical Gastroenterology and Hepatology: The Official Clinical Practice Journal of the American Gastroenterological Association. 14 (11), 1593-1601 (2016).
  9. Vermeire, S., et al. Etrolizumab as induction therapy for ulcerative colitis: a randomised, controlled, phase 2 trial. Lancet. 384 (9940), 309-318 (2014).
  10. Vermeire, S., et al. Anti-MAdCAM antibody (PF-00547659) for ulcerative colitis (TURANDOT): a phase 2 randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet. 390 (10090), 135-144 (2017).
  11. Miller, D. H., et al. A Controlled Trial of Natalizumab for Relapsing Multiple Sclerosis. New England Journal of Medicine. 348 (1), 15-23 (2003).
  12. Ley, K., Laudanna, C., Cybulsky, M. I., Nourshargh, S. Getting to the site of inflammation: the leukocyte adhesion cascade updated. Nature Reviews. Immunology. 7 (9), 678-689 (2007).
  13. Ley, K., Rivera-Nieves, J., Sandborn, W. J., Shattil, S. Integrin-based therapeutics: biological basis, clinical use and new drugs. Nature Reviews. Drug Discovery. 15 (3), 173-183 (2016).
  14. Wyant, T., Yang, L., Fedyk, E. In vitro assessment of the effects of vedolizumab binding on peripheral blood lymphocytes. mAbs. 5 (6), 842-850 (2013).
  15. Fischer, A., et al. Differential effects of α4β7 and GPR15 on homing of effector and regulatory T cells from patients with UC to the inflamed gut in vivo. Gut. 65 (10), 1642-1664 (2016).
  16. Wyant, T., Estevam, J., Yang, L., Rosario, M. Development and validation of receptor occupancy pharmacodynamic assays used in the clinical development of the monoclonal antibody vedolizumab. Cytometry. Part B, Clinical Cytometry. 90 (2), 168-176 (2016).
  17. Tidswell, M., et al. Structure-function analysis of the integrin beta 7 subunit: identification of domains involved in adhesion to MAdCAM-1. Journal of Immunology. 159 (3), 1497-1505 (1997).
  18. Soler, D., Chapman, T., Yang, L. -. L., Wyant, T., Egan, R., Fedyk, E. R. The Binding Specificity and Selective Antagonism of Vedolizumab, an Anti-α4β7 Integrin Therapeutic Antibody in Development for Inflammatory Bowel Diseases. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 330 (3), 864-875 (2009).
  19. Parikh, A., et al. Vedolizumab for the treatment of active ulcerative colitis: a randomized controlled phase 2 dose-ranging study. Inflammatory Bowel Diseases. 18 (8), 1470-1479 (2012).
  20. Wendt, E., White, G. E., Ferry, H., Huhn, M., Greaves, D. R., Keshav, S. Glucocorticoids Suppress CCR9-Mediated Chemotaxis, Calcium Flux, and Adhesion to MAdCAM-1 in Human T Cells. The Journal of Immunology. 196 (9), 3910-3919 (2016).
  21. Nussbaum, C., et al. Sphingosine-1-phosphate receptor 3 promotes leukocyte rolling by mobilizing endothelial P-selectin. Nature Communications. 6, (2015).
  22. Pruenster, M., et al. Extracellular MRP8/14 is a regulator of β2 integrin-dependent neutrophil slow rolling and adhesion. Nature Communications. 6, (2015).
  23. Binder, M. -. T., et al. Similar Inhibition of Dynamic Adhesion of Lymphocytes From IBD Patients to MAdCAM-1 by Vedolizumab and Etrolizumab-s. Inflammatory Bowel Diseases. 24 (6), 1237-1250 (2018).
  24. Wang, L., et al. Vessel Sampling and Blood Flow Velocity Distribution With Vessel Diameter for Characterizing the Human Bulbar Conjunctival Microvasculature. Eye & Contact Lens. 42 (2), 135-140 (2016).
  25. House, S. D., Johnson, P. C. Diameter and blood flow of skeletal muscle venules during local flow regulation. The American Journal of Physiology. 250 (5 Pt 2), H828-H837 (1986).
  26. Zundler, S., Neurath, M. F. Pathogenic T cell subsets in allergic and chronic inflammatory bowel disorders. Immunological Reviews. 278 (1), 263-276 (2017).
  27. Zundler, S., Becker, E., Weidinger, C., Siegmund, B. Anti-Adhesion Therapies in Inflammatory Bowel Disease-Molecular and Clinical Aspects. Frontiers in Immunology. 8, (2017).
  28. Zhou, Y., Kucik, D. F., Szalai, A. J., Edberg, J. C. Human Neutrophil Flow Chamber Adhesion Assay. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (89), (2014).
  29. Zundler, S., et al. Blockade of αEβ7 integrin suppresses accumulation of CD8(+) and Th9 lymphocytes from patients with IBD in the inflamed gut in vivo. Gut. 66 (11), 1936-1948 (2017).

Play Video

Citazione di questo articolo
Becker, E., Schramm, S., Binder, M., Allner, C., Wiendl, M., Neufert, C., Atreya, I., Neurath, M., Zundler, S. Dynamic Adhesion Assay for the Functional Analysis of Anti-adhesion Therapies in Inflammatory Bowel Disease. J. Vis. Exp. (139), e58210, doi:10.3791/58210 (2018).

View Video