Summary

Modulazione reversibile mediata dalla luce del percorso proteico di kinasi attivato da Mitogen durante la differenziazione cellulare e<em> Xenopus</em> Sviluppo embrionale

Published: June 15, 2017
doi:

Summary

Questo protocollo descrive una strategia optogenetica per modulare l'attivazione della proteina chinasi attivata dal mitogeno (MAPK) durante la differenziazione cellulare e lo sviluppo embrionale di Xenopus . Questo metodo consente l'attivazione reversibile del percorso di segnalazione MAPK nella coltura di cellule di mammiferi e negli organismi vivi multicellulari, come gli embrioni di Xenopus , con elevata risoluzione spaziale e temporale.

Abstract

L'attività cinasi è fondamentale per una pletora di funzioni cellulari, tra cui la proliferazione cellulare, la differenziazione, la migrazione e l'apoptosi. Durante il primo sviluppo embrionale, l'attività della chinasi è altamente dinamica e diffusa nell'embrione. Gli approcci farmacologici e genetici sono comunemente usati per sondare le attività di chinasi. Purtroppo, è difficile raggiungere una risoluzione spaziale e temporale superiore utilizzando queste strategie. Inoltre, non è possibile controllare l'attività cinasi in modo reversibile in cellule vive e organismi multicellulari. Tale limitazione rimane un collo di bottiglia per ottenere una comprensione quantitativa dell'attività cinasi durante lo sviluppo e la differenziazione. Questo lavoro presenta una strategia optogenetica che sfrutta un sistema bicistronic contenente proteine fotoattivatabili Arabidopsis thaliana cryptochrome 2 (CRY2) e il dominio N-terminale di citochrome-interazione di base elica-loop-elica (CIBN). ReversiL'attivazione del percorso di segnalazione della proteina chinasi attivata da mitogeni (MAPK) è ottenuta attraverso la traslocazione proteica mediata dalla luce in cellule vive. Questo approccio può essere applicato alle colture di cellule di mammiferi e agli embrioni di vertebrati vivi. Questo sistema bicistronic può essere generalizzato per controllare l'attività di altre chinasi con meccanismi di attivazione similari e può essere applicata ad altri sistemi di modello.

Introduction

I fattori di crescita sono coinvolti in un ampio spettro di funzioni cellulari, tra cui la proliferazione, la differenziazione, la migrazione e l'apoptosi e svolgono ruoli chiave in molti eventi biologici, inclusi lo sviluppo embrionale, l'invecchiamento e la regolazione dello stato mentale 1 , 2 , 3 , 4 , 5 . Molti fattori di crescita segnano attraverso complesse cascate intracellulari di segnalazione. Questi eventi di segnalazione sono spesso gestiti da fosforilazione proteica reversibile in modo preciso regolato 6 , 7 . Pertanto, una comprensione dei risultati di segnalazione delle proteine ​​chinasi, che sono responsabili della fosforilazione proteica, è fondamentalmente importante.

Diversi fattori di crescita agiscono attraverso una rete di segnalazione intracellulare piuttosto comune, anche se stimolano distRisposte cellulari inct 8 , 9 . I mediatori intracellulari comuni delle chinasi di tirosinici del recettore includono Ras, Raf, chinasi extracellulare-regolata (ERK), proteina chinasi attivata da mitogeni (MAPK) / ERK chinasi (MEK), fosfoinositide 3-chinasi (PI3K), Akt e gamma fosfolipasi C (PLCγ) 10 , 11 . L'accumulo di prove suggerisce che la diversità di segnalazione e la specificità dipendono dalla regolazione spaziale e temporale dell'attività di segnalazione 12 . Ad esempio, nelle cellule di phaocromocytoma di ratto (PC12), la stimolazione del fattore di crescita epidermico (EGF), che provoca la proliferazione cellulare, attiva temporaneamente il percorso ERK 9 . D'altra parte, la stimolazione con il fattore di crescita del nervo (NGF), che porta alla differenziazione cellulare, attiva il percorso ERK in modo sostenibile 9 , 13 . In colture rNei neuroni ippocampali, la segnalazione transitoria da un fattore neurotrofico derivato dal cervello (BDNF) favorisce la crescita primaria del neurite, mentre la segnalazione sostenuta porta ad una maggiore ramificazione del neurite 14 . Durante il primo sviluppo embrionale, l'attività ERK fosforilata è temporaneamente dinamica e diffusa nell'embrione 6 . Una recente schermata genetica durante l'embriogenesi iniziale di Xenopus ha mostrato che le cascate di segnalazione ERK e Akt, due percorsi di fattore di crescita primario a valle, mostrano i profili di attivazione specifici di fase 7 . Così, una comprensione dei risultati di segnalazione di chinasi richiede strumenti che possono sondare le caratteristiche spaziali e temporali dell'attività cinasi con una risoluzione sufficiente.

Approcci sperimentali convenzionali per sondare la natura dinamica della trasduzione del segnale durante lo sviluppo non hanno la desiderabile risoluzione spaziale e temporale. Ad esempio, gli approcci farmacologici utilizzano la piccola chemMolecole ical o biologiche per stimolare o sopprimere la trasduzione del segnale nelle cellule e nei tessuti. La natura diffusa di queste piccole molecole rende difficile limitare la loro azione ad una regione specifica di interesse. Gli approcci genetici ( ad esempio, transgenesi, il sistema Cre-Lox o mutagenesi) spesso portano all'attivazione o alla repressione irreversibili dell'espressione genica o dell'attività proteica 16 , 17 , 18 . Il sistema Tet-On / Tet-Off 19 offre un controllo temporale migliorato della trascrizione del gene, ma manca di un controllo spaziale rigoroso perché si basa sulla diffusione della tetraciclina. I recenti sviluppi nella dimerizzazione delle proteine ​​chimicamente indotti dalla chimica 20 o nella foto-scoperta 21 , 22 , 23 , 24 hanno notevolmente miglioramentiEd il controllo temporale delle reti di segnalazione. Il controllo spaziale, tuttavia, rimane impegnativo a causa della diffusione dei prodotti chimici in gabbia.

Recenti approcci optogenetici emergenti, che sfruttano il potere di luce per controllare le interazioni proteine-proteine, consentono la modulazione di percorsi di segnalazione con elevata precisione spatiotemporale e reversibilità. Poco dopo il suo successo iniziale nel controllo del cervello neuronale 25 , 26 , 27 , l'ottogenetica è stata estesa per controllare altri processi cellulari, come la trascrizione di geni, la traduzione, la migrazione cellulare, la differenziazione e l'apoptosi 28 , 29 , 30 , 31 , 32 , 33 , 34 . Una strategia che utilizza il pProteina hotoattivatabile La proteina cripto- cromica 2 (CRY2) di Arabidopsis thaliana e il dominio N-terminale dell'elica a base di elicoidale (CIBN) che interagiscono con citochrome è stato recentemente sviluppato per controllare l'attività di Raf1-chinasi nelle cellule di mammiferi e negli embrioni Xenopus 35 . CRY2 si lega a CIBN su stimolazione azzurra-luce e il complesso proteico CRY2 / CIBN dissociata spontaneamente nel buio 34 . La luce blu eccita il cofattore CRY2, il dinucleotide di flavin adenina (FAD), che porta ad un cambiamento conformazionale in CRY2 e successivamente legato a CIBN. I mutanti costituenti attivamente attivi (W374A) e flavin-deficienti (D387A) di CRY2 possono essere prodotti attraverso mutazioni nella tasca di legame FAD: il mutante CRY2 W374A si lega a CIBN indipendente dalla luce, mentre il mutante CRY2 D387A non si lega a CIBN sotto l'azzurro Stimolazione luminosa 36 , 37 . Il sistema ottogenetico descritto iN questo protocollo utilizza il tipo di wild-type CRY2 e CIBN per indurre l'attivazione Raf1 mediata dalla traslocazione proteica in cellule vive. È noto che il reclutamento della membrana di Raf1 aumenta la sua attività 38 . In questo sistema, un modulo CIBN tandem è ancorato alla membrana plasmatica e CRY2-mCherry è fuso al terminale N di Raf1 35 . In assenza di luce blu, CRY2-mCherry-Raf1 rimane nel citoplasma, e Raf1 è inattivo. La stimolazione della luce blu induce il legame CRY2-CIBN e recluta Raf1 alla membrana plasmatica, in cui viene attivata Raf1. L'attivazione Raf stimola una cascata di segnalazione Raf / MEK / ERK. Entrambe le proteine ​​di fusione CRY2 e CIBN sono codificate in un sistema genetico bicistronico. Questa strategia può essere generalizzata per controllare altre chinasi, come Akt, il cui stato di attivazione può essere attivato anche dalla traslocazione proteica nelle cellule 39 . Questo lavoro presenta protocolli dettagliati per l'implementazione di questa strategia optogenetica in cultu cellule di mammiferiRes e organismi multicellulari.

Protocol

La ricerca sugli animali è stata condotta in conformità con le linee guida stabilite dall'Istituto per l'Assicurazione e l'Utilizzazione degli Animali Istituzionali (IACUC) e dall'Università dell'Illinois Dipartimento di Risorse Animali (DAR). 1. Induzione ottogenetica della localizzazione della proteina nella cultura cellulare delle cellule BHK21 NOTA: i passaggi 1.1-1.3 forniscono un metodo per assemblare una camera di coltura cellulare per…

Representative Results

Espressione ratiometrica di coppie di proteine ​​fotoattivatabili: la figura 1A mostra la progettazione di un costrutto ottogenetico bicistronico, CRY2-mCherry-Raf1-P2A-CIBN-CIBN-GFP-CaaX (denominato CRY2-2A-2CIBN), basato sulla teschovirum- 1 2A (P2A), che mostra la più alta efficacia di riduzione dei ribosomi tra le linee cellulari mammiferi 42 . Nel lavoro precedente, è stato stabilito che il rapporto ottimale per CIBN-GFP-Ca…

Discussion

Quando si costruisce la scatola luminosa, è necessario misurare la potenza dei singoli LED. Sulla base dell'esperienza precedente, l'uscita di potenza può variare tra i singoli LED a causa della varianza di produzione. Selezionare un gruppo di LED che hanno una potenza entro il 10% dell'altro. Il numero di LED, la resistenza di limitazione corrente e l'ingresso di potenza possono essere modificati per diversi tipi di contenitori per la coltura cellulare ( ad esempio, una piastra a 6 oa un pozz…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato sostenuto dall'Università dell'Illinois a Urbana-Champaign (UIUC) e dagli Istituti Nazionali di Salute (NIGMS R01GM111816).

Materials

Glass coverslip  VWR 48393 230 Substrate for live cell imaging
Coverslip holder  Newcomer Supply 6817B Holder for coverslips
Detergent  ThermoFisher 16 000 104 For cleaning coverslips
Boric acid  Sigma-Aldrich B6768-500G For making PLL buffer
Disodium tetraborate Sigma-Aldrich 71996-250G For making  PLL buffer
Plastic beaker Nalgene 1201-1000 For cleaning coverslips
Sodium hydroxide  Sigma-Aldrich 221465-2.5KG For adjust pH
Poly-L-lysine hydrobromide Sigma-Aldrich P1274-500MG For coating coverslip
Diethylpyrocarbonate (DEPC)-Treated Water ThermoFisher Scientific 750024 For DNA preparation
Cover Glass Forceps Ted Pella 5645 Cover glass handling
Tissue cutlure dish Thermofisher 12565321 Cell culture dish
Sterile centrifuge tubes ThermoFisher 12-565-271 Buffer storage
Transfection Reagent ThermoFisher R0534 Transfection
CO2-independent medium ThermoFisher 18045088 For live cell imaging
Polydimethylsiloxane (PDMS) Ellsworth Adhesives 184 SIL ELAST KIT 0.5KG Form make cell chamber
Plasmid Maxiprep kit Qiagen 12965 Plasmid preparation
DMEM medium ThermoFisher 11965-084 Cell culturing medium component
F12K medium ThermoFisher 21127022 Cell culturing medium component
Horse serum ThermoFisher 16050122 Cell culturing medium component
Fetal Bovine Serum Signa-Aldrich 12303C-500 mL Cell culturing medium component
Penicillin-Streptomycin-Glutamine ThermoFisher 10378016 Cell culturing medium component
Trypsin (0.25%), phenol red ThermoFisher Scientific 15050065  For mammalian cell dissociation
Agarose Fisher Scientific BP1356-100 For DNA preparation
Ficoll PM400 GE Heathcare Life Sciences 17-5442-02 For embryo buffer
L-Cysteine hydrochloride monohydrate Sigma-Aldrich 1.02839.0025 Oocyte preparation
ApaI ThermoFisher FD1414 For linearization of plasmids
Dnase I ThermoFisher AM2222 For removing DNA template in the in vitro transcription assay
Index-match materials (immersion oil) Thorlabs MOIL-20LN For matching the index between sample substrate and objective
Blue LED Adafruit 301 Light source for optogenetic stimulation
Resistor kit Amazon EPC-103 current-limiting resistor
Aluminum boxes BUD Industries AC-401 light box 
BreadBoard Jekewin 837654333686 For making LED array
Hook up Wire Electronix Express 27WK22SLD25 For making LED array
Relay Module Jbtek SRD-05VDC-SL-C For intermittent light control
DC Power Supply  TMS DCPowerSupply-LW-(PS-305D) Power supply for LED
Silicon Power Head Thorlabs S121C For light intensity measurement
Power meter Thorlabs PM100D  For light intensity measurement
Microscope Leica Biosystems DMI8 For live cell imaging
BioSafety Cabinet ThermoFisher 1300 Series A2 For mammalian cell handling
CO2 incubator ThermoFisher Isotemp For mammalian cell culturing
Stereo microscope Leica M60 For embryo micro-manipulation
Microinjector Narishige IM300 For embryo microinjection
Micropipette puller Sutter Instruments P87 Needle puller
in vitro transcription kit ThermoFisher AM1340 For in vitro transcription. The kit includes nuclease-free water, SP6 RNA  Polymerase, ribonucleotide mixture, cap analog, lithium choride precipitation solution, and spin column  
RNA purfication kit Qiagen 74104 Silica-membrane spin column for purification of synthesized RNA 
Convection oven MTI corporation  EQ-DHG-9015 PDMS curing
Centrifugal mixer and teflon container THINKY AR310 For mixing PDMS
Silicon wafer UniversityWafer 452 Base for making PDMS  devices
Blade Techni Edge 01-801 For cutting PDMS
Capillary glass Sutter Instruments BF100-58-10 For fabrication of injecting needles. 

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Citazione di questo articolo
Krishnamurthy, V. V., Turgeon, A. J., Khamo, J. S., Mondal, P., Sharum, S. R., Mei, W., Yang, J., Zhang, K. Light-mediated Reversible Modulation of the Mitogen-activated Protein Kinase Pathway during Cell Differentiation and Xenopus Embryonic Development. J. Vis. Exp. (124), e55823, doi:10.3791/55823 (2017).

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