Summary

创建瞬态细胞膜毛孔,使用标准的喷墨打印机

Published: March 16, 2012
doi:

Summary

用于成bioprinter转换的HP DeskJet 500打印机的方法的描述。打印机是能够处理活细胞,这将导致膜的瞬态毛孔。这些孔隙可以利用纳入印刷的细胞,包括荧光灯的G-肌动蛋白,小分子。

Abstract

,热喷墨打印bioprinting具有广泛的应用和意义,包括组织工程,细胞直接应用疗法和生物传感器的微细1-10最近也被用于基因转染。8,9热喷墨印刷过程中被证明暂时中断的细胞膜,在不影响细胞活力。在膜的瞬态毛孔可以用来引进的分子,这本来是太大,通过细胞膜,进入细胞的细胞质中,8,9,11

这里展示的应用是利用荧光标记的G-肌动蛋白单体掺入到细胞的热喷墨打印。使用热喷墨打印注入细胞分子的优点是,该技术是相对良性的细胞。,8,12印刷后的细胞活力,已被证明是类似的,以标准单元解放军婷方法1,8。此外,喷墨印刷可以在数分钟内处理数以千计的细胞,这是比手动显微注射快。印刷所创建的毛孔已被证明约两小时内关闭。然而,有一个创建印刷技术,这就限制了小的蛋白质和/或颗粒细胞注射技术(10纳米)的孔隙大小的限制。8,9,11

修改了一个标准的HP DeskJet 500打印机,使细胞印刷。3,5,8打印机盖被删除,送纸机制是绕过使用机械杠杆。一个阶段是创建允许直接打印头下放置载玻片和盖玻片。打开墨盒,墨水被拆除和清理之前使用细胞。印花图案是使用标准的绘图软件,然后通过一个简单的打印命令的打印机控制。 3T3纤维爆炸分别增长汇合,胰酶消化,然后进入磷酸盐水溶性荧光标记的G-肌动蛋白单体悬浮缓冲盐水。细胞悬液滴加入墨盒,印到玻璃显微镜盖玻片的细胞系。使用荧光显微镜的活细胞成像和肌动蛋白被发现在整个细胞质中。进入细胞内的肌动蛋白荧光团允许短时间的细胞骨架的动态影像,并为广泛的应用范围非常有用。13-15

Protocol

1。转换的HP DeskJet 500 应当指出,这种技术应与许多商用喷墨打印机。然而,旧的打印机往往更好的工作,因为他们使用的墨盒,直径较大的喷嘴,不堵塞一样容易。此外,旧的打印机往往使用机械的进纸传感器,很容易绕过。打印机与光学传感器可以被欺骗,但使用打印机在每个周期远缘的小片纸,但比机械系统的​​“猫腻”多一点困难。目前市面上的打印机工作最好有低的分辨率(DPI)。 更高分辨率的打印机往往更容易堵塞。惠普Deskjet 500的分辨率为300 dpi。有许多市售的打印机(HP Deskjet系列及其他),有一个600 dpi的分辨率。这种类型的打印机可以使用只是一个小喷嘴增加堵塞可缓解(第3)仔细清洗的问题。 解锁从底座打印机的几个塑料夹,慢慢抬起顶部关闭删除打印机顶部的塑料外壳。 松开按钮/显示打印机顶部的光面板,离开它连接到打印机的主板。 清洁打印机内部,尤其是地区的地方在于墨盒和印刷发生。 找到电缆供电纸机制,并从主板上拔下。 在HP DeskJet 500,这些被发现略低于朝着左前方的纸盒。 找到纸张检测机制。绕过字符串或线环作为手动拉手追究机制。 纸检测机制中的HP DeskJet 500,上方和后方的印刷/纸机制发现一个灰色的塑料杆。 创建一个阶段,在进纸机制,以便将美联储从纸张和沉积前把所需的打印墨盒打印头正下方水平的幻灯片。 对于我们的实验中,泡沫航运持有15 mL离心管,用几个显微镜在印刷区域的地方录音,幻灯片,使幻灯片的最后一级所需的高度。 要保持无菌技术,打印机可以被放置在一个标准的生物危害柜或桌面层流罩。 重要的是要注意,修改市售喷墨打印机通常会打印机制造商的保修失效。 2。转换为股票的惠普墨盒(HP 26黑色墨盒) 从包装中取出墨盒,留下暂时覆盖打印机的接触和打印头的保护胶带。 稳住身体用夹具或台钳(只需牢牢抓住通常工作以及手工墨盒),留下任何障碍绿色明确墨盒(黑色部分)。 用钳子或活动扳手,把握绿色墨盒的顶部和扭动,来回几次,直到它打破了自由。 这是不应该花太多的力量,但不再需要的顶端,所以它是好的,如果它打破取出时。 用螺丝刀撬开现在暴露的透明塑料片。 再次,这不应该花太多的力量,但它不会需要,因此它是好的,如果它在搬迁过程中打破。 清空任何其余水库。 取下塑料覆盖打印机的接触和打印头的保护胶带。 水库的水彻底冲洗。 使用吸管或注射器推水通过渠道。 水从打印头中可能会泄漏这个过程中,这是可以接受的,并不会造成任何破坏墨盒的功能。 当水运行明确,使墨盒晾干。 3。清洁墨盒为了保持一个干净的印刷环境,使用前后应清洗墨盒。 这也有助于避免结晶盐和其他生物材料的墨盒可能会导致堵塞。 完全淹没在去离子水的烧杯墨盒,超声15分钟之前和之后,印刷。 超声波处理后,取出墨盒从水中,摇出多余的水分。 70%的乙醇喷入墨盒,以创造更多的无菌环境。 确保乙醇加入bioink印刷解决方案之前,干燥。 4。细胞悬液 – “生物墨“ 培养细胞,直到准备到通过。 3T3成纤维细胞:约1.3×10 4细胞/厘米2 Dulbeccos改性老鹰培养基(DMEM培养基),10%胎牛血清(FBS),对T-75瓶种子细胞。两天孵化器培养细胞在37°C间和5%的CO 2。 使G-肌动蛋白的荧光浓度原液在磷酸盐缓冲液(PBS)的50微克/毫升。 传代细胞。 3T3成纤维细胞:从烧瓶中取出的媒体,用PBS冲洗两次。覆盖细胞用5毫升0.25%胰蛋白酶+ EDTA和孵育5分钟。 新鲜培养基中加入5毫升到15毫升锥形离心管中,并在5分钟1000转离心吸取细胞悬液。抽吸介质花。 荧光G-肌动蛋白原液创建bioink PBS重悬细胞。 bioink应该有一个G-肌动蛋白的终浓度10微克/毫升和细胞合作ncentration的1×10 5细胞/毫升。这个浓度已经得到了优化,以限制每一滴水和打印头堵塞的细胞数量。 请注意,250μl的bioink的打印模式如图2所示的三个盖玻片。 5。 Bioprinting 电源和让打印机热身。 地方所需的印刷面(在这里,我们使用22毫米×22毫米盖玻片)在步骤1.6准备阶段的中心。 创建一个印刷图案文件。 打开Microsoft Word(或任何其他的绘图软件),并绘制所需的图案。 挑选一个细胞中的预制文件印刷所需的打印模式。 加载所需的细胞悬液的制备墨盒。 移液器悬挂墨盒舱底部的小圆形。使用约100-120微升的溶液。打印的墨滴大小,大约是130皮升8。 惠普Deskjet 500打印机打印文件。 为了达到最佳效果,打印小图案(5)多次,通过改变在文字处理程序所需的副本数量。 打印机将再次热身,然后墨盒会移动到“准备位置”。 当墨盒移动到准备位置(稍远低于左侧的墨水滴,并在那里停留),拉进纸机制电线,并应开始打印。 对于多个副本的印刷,纸机制将每个周期或页打印后公布。墨盒,然后将返回到“准备就绪”的位置,进纸机制电线应该再次被提出。 打印机将打印到盖玻片上的印刷阶段的中心放置在步骤5.2( 见图2)。 6。代表结果</ P> 整个转换过程中的一个标准的,现成的惠普Deskjet 500的有代表性的成果,标准HP 26系列墨盒,将创建一个打印机与如前所述印刷多种类型的细胞分析解决方案的能力。转换完成后的打印机, 如图3所示,放置在显微镜的盖玻片上印刷阶段。打印机可以在许多领域的分析是有用的,包括但不限于:单细胞力学,组织工程,基因转染,缩微传感器,和直接的细胞疗法1-10,16-22。 在这个例子中的HP Deskjet 500打印机和惠普26系列墨盒被为bioprinting修改。使用该打印机设置了一个G-肌动蛋白单体溶液中的成纤维细胞悬液组成bioink,细胞被印到玻璃显微镜的盖玻片。 图1说明了代表水库印刷的成纤维细胞的ULTS,这表明成立荧光的肌动蛋白单体。结果在控制的无菌环境中的细胞被印制成定制模式。 在这个例子中使用的模式是建立在Microsoft Word中( 图2)。这种模式建立了一个横跨大多数的显微镜幻灯片的打印解决方案的不断线。 图4显示了直线的bioink和细胞相互存放。应当指出后,立即打印,有一个背景荧光的增加,细胞被暂停,因为bioink解决方案,包含免费过量荧光的肌动蛋白单体。此背景荧光显着减小后增加细胞( 图1),洗去多余的基板单体的生长介质。 ad/3681/3681fig1.jpg“/> 图1。3T3成纤维细胞3小时后,使用修改后的喷墨打印机打印的代表图像。细胞内部,显示纳入荧光标记的肌动蛋白单体。标尺代表50微米。 图2。设计用于打印bioink的。 图3。与泡沫塑料阶段转换后的打印机。在中间的橙色线绕过纸杆传感器。 图4。代表的形象印在本地化印刷区3T3成纤维细胞。 5分钟后打印在20倍放大倍率的显微镜图像。 / files/ftp_upload/3681/3681fig5.jpg“/> 图5。3小时后,呈现出成纤维细胞具有内在荧光的肌动蛋白单体的印刷所采取的荧光图像(40倍放大倍率)。比例尺代表50微米。 图6。印刷15分钟后,采取了细胞的荧光显微镜(20倍放大倍率)。图像显示两个G-肌动蛋白(绿色)和细胞核(蓝色)。从左至右依次为:G-肌动蛋白的Alexa Fluor 488,细胞核用DAPI,两者的叠加。 图7显示在印刷后3小时的在线模式两成纤维细胞的荧光显微镜。左边的图像显示荧光标记的细胞内的肌动蛋白单体。右边的图片是一个荧光通道与背景图像的叠加显示,虽然幻灯片(左下角),可能会有一些碎片,它不会发出荧光。标尺代表50微米大小,如果不表示最右边是3个小时的培养与荧光标记单体的非印刷细胞的对照组。此控件是为了表明,单体无法穿透无膜通透性细胞膜细胞印刷。

Discussion

也不是特别困难的过程转换为bioprinting一个标准的喷墨桌面打印机。最具挑战性的一步是确定如何绕过进纸机制,这是取决于打印机的品牌和模型。然而,这是相对简单时,进纸传感器是机械此处所述。对于饲料用光学传感器的型号,其他技术可能需要采用欺骗,以为它是使用纸的打印机,例如,可以通过打印机的运行,而它在显微镜幻灯片打印的小纸条。旁路送纸机制是不同型号的打印机在应用这些程序可能是最困难的一步。

在建设阶段举行印刷盖玻片,它是重要的,以确保正确的路线和高度。该阶段应允许被放置在中间的印刷面积的盖玻片。此外,它应该PL王牌盖玻片,在适当的高度,使墨盒间隙过而不破坏它的幻灯片。该阶段的确切高度将取决于打印机型号。

为了确保印刷细胞没有得到冲走被放置在一个孵化器,幻灯片后立即打印约30分钟,使细胞附着前增加了额外的细胞生长介质。因为细胞被印在一个解决方案,包括大量的PBS没有干细胞仍然可行。细胞成像使用荧光显微镜,以可视化的标签G-肌动蛋白在细胞内的单体( 图1,5-7)的分布。 3T3成纤维细胞打印时, 图5显示了一个有代表性的结果,与肌动蛋白导致细胞发出荧光,但展示增加亮度线。荧光标记的G-肌动蛋白细胞骨架成立细胞骨架动力学和细胞力学的研究非常有用。12-15这种技术的局限性在于它是只适用有直径小于约10纳米的分子和蛋白质。

为了确保细胞实际上被转换打印机处理的DAPI(1:5000)在PBS添加到bioink纯PBS量的一半的地方。荧光染色的DAPI结合氨基酸丰富的DNA位于细胞核中的部分。因此的DAPI是一个有用的污渍印刷细胞荧光成像原子核。 图6显示了双方的Alexa Fluor 488(肌动蛋白)和荧光的DAPI(核),两者的叠加图像显示的单元格的形象代表。 图7还说明了如何细胞会发出荧光,一旦G-肌动蛋白单体已被纳入非生物材料已进入样品存放不会因为的absenc的荧光E G-肌动蛋白单体。

一个重要的考虑因素bioprinting,是被用于bioink的水介质。结果发现,使用标准血清细胞的生长介质产生不一致的结果。这很可能是由于血清蛋白的打印头喷嘴堵塞。使用的PBS提高了印刷图案的一致性和沉积的细胞数量。用PBS的一个缺点是,不应悬挂在长时间离开细胞。然而,在这些例子中的成纤维细胞能够容忍没有改变细胞活力至少一个小时的bioink条件。这是与前几个结果,报告说,通过热喷墨机制印制的细 ​​胞已被证明具有较高的可行性率一致。2-8

此修改打印机设置可用于细胞印刷以外的应用程序。16-22矩阵的蛋白质,如胶原蛋白或fibronectin,可以很容易地印上使用这种技术,它可以是有用的细胞图案的衬底。例如,型胶原,我把线条图案印刷,会导致排列的胶原蛋白,可用于在体外细胞培养的研究17。基板除了基质蛋白,其他的分子,包括生长因子,可以可靠地本地化基板上细胞研究和潜在的治疗应用18。

在上述步骤中所述的设计的一个主要限制是,这台打印机是不能够在多个维度打印。这就限制了使用,如脚手架印刷图案的应用潜力。为了让3D印刷,需要使用一个专门的阶段。该阶段需要有增量调整高度层层沉积bioink。

bioprinting作为组织工程的效率和成本效益的方法的承诺基因转染,缩微和芯片制造1-12,16-22这种类型的设备,未来的应用有很多,包括:支架细胞微环境控制和图案,纳入细胞的细胞质中的大分子,细胞沉积的创作上。结构不发生自然或有效的。

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

笔者想承认博士托马斯·博兰细胞印刷使用HP DeskJet打印机的想法。从NSF,RII-EPS 0903795和NIH K25中HL0922280项目提供资金。

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
HP DeskJet 500 Hewlett-Packard C2106A Discontinued from manufacturer. Purchased refurbished DEC Trader.
HP 26 Black Ink Cartridge Hewlett-Packard 51626A  
Actin from rabbit muscle, Alexa Fluor 488 conjugate, 200 μg Invitrogen A12373  
Phosphate Buffered Saline (PBS) MP Biomedicals ICN1860454  
Dulbeccos Modified Eagles Medium (DMEM) Thermo Scientific SH3002201  
Fetal Bovine Serum Sigma-Aldrich F4135  
Amphotericin B Sigma-Aldrich A2942 Used at 0.5% in cell culture media
Penicillin-Streptomycin Sigma-Aldrich P4333 Used at 0.5% in cell culture media
Unidirectional Flow Clean Bench Envirco VLF 797 Optional housing for keeping printer aseptic

Riferimenti

  1. Calvert, P. Materials science. Printing cells. Science. 318, 208-209 (2007).
  2. Mironov, V., Reis, ., Derby, B. Review: Bioprinting: A beginning. Tissue Eng. 12, 631-634 (2006).
  3. Pepper, M. E., Parzel, C. A., Burg, T., Boland, T., Burg, K. J. L., Groff, R. E. Design and Implementation of a two-dimensional inkjet bioprinter. Proc. IEEE Eng. Med. Biol. Soc. 3-6, 6001-6005 (2009).
  4. Campbell, P., Weiss, L. Tissue engineering with the aid of inkjet printers. Expert Opin. Biol. Th. 7, 1123-1127 (2007).
  5. Boland, T., Xu, T., Damon, B., Cui, X. Application of inkjet printing to tissue engineering. Biotechnol. J. 1, 910-917 (2006).
  6. Mironov, V., Prestwich, G., Forgacs, G. Bioprinting Living Structures. J. Mater. Chem. 17, 2054-2060 (2007).
  7. Xu, T., Rohozinski, J., Zhao, W., Moorefield, E. C., Atala, A., Yoo, J. J. Inkjet-mediated gene transfection into living cells combined with targeted delivery. Tissue Eng. Part A. 15, 95-101 (2009).
  8. Cui, X., Dean, D., Ruggeri, Z., Boland, T. Cell Damage Evaluation of Thermal Inkjet Printed Chinese Hamster Ovary Cells. Biotechnol. Bioeng. 106, 963-969 (2010).
  9. Hamm, A., Krott, N., Breibach, I., Blindt, R., Bosserhoff, A. K. Efficient transfection method for primary cells. Tissue Eng. 8, 235-245 (2002).
  10. Saunders, R., Derby, B. B. i. o. p. r. i. n. t. i. n. g. Inkjet Deposition. Encyclopedia of Industrial Biotechnology: Bioprocess, Bioseparation, and Cell Technology. 15, (2010).
  11. Prabha, S., Zhou, W., Panyam, J., Labhasetwar, V. Size-dependency of nanoparticle mediated gene transfection: studies with fractioned nanoparticles. Int. J. Pharm. 244, 105-115 (2002).
  12. Derby, B. Bioprinting: inkjet printing proteins and hybrid cell-containing materials and structures. J. Mater. Chem. 18, 5717-5721 (2008).
  13. Apodaca, G. Endocytic Traffic in Polarized Epithelial Cells: Role of Actin and microtubule Cytoskeleton. Traffic. 2, 149-159 (2001).
  14. Hotulainen, P., Llano, O., Smirnov, S., Tanhuanpää, K., Faix, G., Rivera, C., Lappalainen, P. Defining mechanisms of actin polymerization and depolymerization during dendritic spine morphogenesis. J. Cell Biol. 185, 323-339 (2009).
  15. Allen, P. G. Actin filament uncapping localizes to ruffling lamellaw and rocketing vesicles. Nat Cell Biol. 5, 972-979 (2003).
  16. Cooper, G. M., Miller, E. D., Desesare, G. E., Usas, A., Lensie, E. L., Bykowski, M. R., Huard, J., Weiss, L. E., Losee, J. E., Campbell, P. G. Inkjet-based biopatterning of bone morphogenetic protein-2 to spatially control calvarial bone formation. Tissue Eng. Part A. 16, 1749-1759 (2010).
  17. Deitch, S., Kunkle, C., Cui, X., Boland, T., Dean, D. Collagen matrix alignment using inkjet printer technology. Proc. 1094 (DD. , 7-16 (2008).
  18. Ilkhanizadeh, S., Teixeira, A., Hermanson, O. Inkjet printing of macromolecules on hydrogels to steer neural stem cell differentiation. Biomaterials. 28, 3936-3943 (2007).
  19. Ringeisen, B. R., Orthon, C. M., Barron, J. A., Young, D., Sparago, B. J. Jet-based methods to print living cells. Biotechnol. J. 1, 930-948 (2006).
  20. Cui, X., Boland, T. Human microvasculature fabrication using thermal inkjet printing technology. Biomaterials. 30, 6221-6227 (2009).
  21. Langer, R., Vacanti, J. P. Tissue engineering. Science. 260, 920-926 (1993).
  22. Okamoto, T., Suzuki, T., Yamamoto, N. Microarray fabrication with covalent attatchment of DNA using Bubble Jet technology. Nature Biotechnol. 18, 438-441 (2000).

Play Video

Citazione di questo articolo
Owczarczak, A. B., Shuford, S. O., Wood, S. T., Deitch, S., Dean, D. Creating Transient Cell Membrane Pores Using a Standard Inkjet Printer. J. Vis. Exp. (61), e3681, doi:10.3791/3681 (2012).

View Video