我们描述了一个多重PCR快速检测沙门氏菌血清型肠炎,哈达尔,海德堡和鼠伤寒沙门氏菌。具体的沙门氏菌血清型,可确定的目标是多重PCR技术,以独特的O -抗原生物合成集群和一个给定的血清型的鞭毛的基因和序列。血清型,然后分配到一个隔离基础上的具体化,规模扩增产物(PCR产物)对应的目标等位基因外观的沙门氏菌。
当前商业PCR的测试, 确定沙门氏菌靶基因,该属植物所特有的。但是,有两个品种,6个亚种,超过2500 种沙门氏菌血清型,而不是所有的都在他们的意义,等于对公众健康。例如,发现S。肠道亚种 IIIA亚利桑那州的一个表上鸡蛋层农场相比是微不足道的孤立的S.肠道亚种我沙门肠炎,沙门氏菌病的挂表鸡蛋消费的首要原因。血清型抗原的差异,在脂多糖(LPS)(O抗原)和鞭毛(H1和H2抗原)的基础上确定。这些抗原的差异与此表型的基因及相关基因的等位基因多样性的外观。
我们已经开发出一种allelotyping,多重PCR键上的四个主要南之间的遗传差异在家禽肠道亚种我血清型的发现和与重大人类疾病在美国相关。 PCR引物对目标的关键基因,或到一个特定的沙门氏菌血清型的独特序列,旨在产生一个大小为特定的基因或等位基因的扩增 。,沙门氏菌血清型分配到隔离PCR检测结果,结合具体脂多糖鞭毛蛋白基因的等位基因。本文中描述的多重PCR的具体检测的S.肠道亚种我血清型肠炎,哈达尔,海德堡,和鼠伤寒沙门氏菌。
在这里,我们将演示如何使用多重PCR反应,以确定为沙门氏菌的血清型隔离。
大多数市售的PCR试 验检测沙门氏菌的目标属独特的基因( 如入侵) 。然而,并非所有的沙门氏菌是导致人类或动物种群的流行疾病的能力是平等的。早期识别沙门氏菌脂多糖O抗原和flagellinH1和H2抗原的抗原差异导致分化成基于这些抗原的差异超过2500 血清型沙门氏菌。有46个不同的O抗原和86不同的鞭毛(H) 抗原属沙门氏菌中发现沙门氏菌可能拥有一(H1)或两个不同的(H1和H2 )flagellins。今天的O,H1和H2抗原为2500 沙门氏菌血清型的不同组合确认。一个血清型,是基于个人的O和H抗原识别所得的抗原公式分配。抗原公式写为O:H1:H2和“ – ”,是指没有O -抗原阴性沙门氏菌鞭毛蛋白H1或H2和“NT”(非typeable)。例如,血清型鼠伤寒沙门氏菌被分配到一个S。肠道分离的抗原性配方B:我:1,2的肠炎是一个孤立的公式D1:G,M: – 。这种沙门氏菌人口的抗原变异是在核苷酸水平上,因此可以很容易地利用PCR扩增的差异的外在表现。
我们已经确定与特定的O和H等位基因的遗传差异,发展allelotyping PCR 检测 ,确定S. 肠炎血清型:肠炎,哈达尔,海德堡和鼠伤寒沙门氏菌(3)。正确分配和沙门氏菌的血清型的报告要求,测试与O相关联的所有等位基因:H1:为肠炎H2抗原公式(首长级薪级第1点:G,M: – ),哈达尔(C2:Z10:E,N,X),海德堡(二R:1,2),鼠伤寒沙门氏菌(B:我:1,2)。没有知识O等位基因或抗原,发现的H1克,M等位基因单独并不一定确定隔离其他的沙门氏菌血清型肠炎沙门氏菌:戈纳,加利福尼亚州和蒙得维的亚,也具有这种相同的等位基因。虽然allelotyping PCR技术最初是设计,检测中脱颖而出提及沙门氏菌血清型,这种测试可以找出另外19个血清型(见表3) 。最初的设计我们的allelotyping PCR检测O和H等位基因。在实践中,它已经变得更加实际和具有成本效益,为我们确定的O -抗原玻片凝集试验,使用O型特异性抗血清,而不是执行的O allelotyping PCR分离出沙门氏菌文化工作时。不过,我们建议使用O allelotyping PCR检测,如果你的实验室使用屏幕(2) 或输入沙门氏菌株FTA卡(6)提交本项PCR,并包括与样品的第一个屏幕中的沙门氏菌特异性PCR(4 )。限制allelotyping PCR的只有那些被确定为沙门氏菌 PCR或生化/抗原测试样本。
在这篇文章中描述的协议已经使用爱达荷州技术Rapidcycler,热空气的热循环,允许一个规模低于许多加热块热循环时间的反应体积和运行反应条件进行了优化。为了适应这个协议与使用加热块热循环,可能需要优化反应条件,退火温度的降低/提高经验,调整引物浓度;或调整MgCl 2的浓度。例如,我们不得不适应的MJ研究的PTC – 200热循环如下协议。工作表1中描述的卷相同的反应,股市的工作concentrationof我引物稀释至2.5微米,退火温度降至55 ° C至45 ° C和变性的孵育时间,退火和延伸步骤I / G,M allelotyping PCR技术被延长至20秒。拥有适当的正面和负面的控制是必不可少的任何PCR最初的启动和优化,包括发布的协议。我们建议获取已知的沙门氏菌血清型,专门Anatum(E1:E,H:1,6),肠炎(首长级薪级第1点:G,M: – ),哈达尔(C2:Z10:E,N,X),海德堡(B: R :1,2),蒙得维的亚(C1:G,M,S:1,2,7)和鼠伤寒沙门氏菌(B:我:1,2);和实验室大肠杆菌 K12菌株(DH5α中,LE393,JM109等。 )分别为本文中所描述的allelotyping PCR试验阳性和阴性对照。这些沙门氏菌血清型,将作为积极或消极的控制,取决于测试的等位基因。
,同时执行这和任何其他诊断PCR需要遵循一定的预防措施和指引。首先,物理分离模板制备,PCR设置,凝胶电泳的关键是防止可能的PCR结转污染和误报的错误报告。此外,加入适当的控制是有必要在任何常规PCR,确定这些控制出现的问题,因为他们和协助解释结果(5)。最重要的,一致性是至关重要的,尤其是关于扩增(PCR产物)扩增大小的检测andestimation电泳条件。为了说明这一点,我们特意暂停电泳早在图1A打算。分子量标准(泳道1和13)和阳性对照(2巷)没有充分分开,准确估计大小或观察那里有小的差异,在尺寸(〜50个基点)的DNA片段的分离。充分分离的DNA片段,尤其是分子量标准,是必不可少的报告阳性是依赖于扩增的大小和区分“真阳性”,有时是在日常运行的任何PCR(5观察非特异性扩增产物的准确估计)。例如,在图1B,7巷的大小(约700 bp)的非特异性扩增。电泳被终止太早,当染料前端的中途点,在琼脂糖凝胶,将有500 bp和700 bp的DNA片段之间的小分化。因此,在7巷样本已被错误地报告为阳性,我和G,M等位基因。
最后,需要认识到测试与任何相关的限制。几个H1/H2 allelotyping PCR没有歧视性的权力,以辨别微妙的遗传等位基因的差异,属于H2的1,2,1,5,1,6,1,7抗原复合物; E,N,X / E ,N,Z15抗原复合物和H1摹抗原复杂,其中包括G,M等位基因。一个或两个氨基酸的变化,占目前在这些鞭毛抗原不同表位。因此,很难为我们设计引物,就可以利用这些有时在鞭毛蛋白基因序列(3)单碱基对差异。例如,都柏林沙门氏菌血清型(首长级薪级第1点:G,P: – )和伯塔(D1:F,G,T: – )也与我们克PCR阳性,mallelotyping引物。 H2的allelotyping引物不能区分的鼠伤寒沙门氏菌(B:1,2:我)从拉各斯(B:我:1,5),海德堡(B:R:1,2)从布拉德福德(乙:R:1,5), Winneba(B:R:1,6),或圣雷莫(乙:R:1,7),或哈达尔(C2:E,N,X:Z10)从Glostrup(C2:Z10:Z15 E,N,)。虽然遇到一些这些血清型的可能性:拉各斯,布拉德福德,Winneba,圣雷莫或Glustrup是远程的,它是一种可能性,并要求提供的测试限制或其他确证试验免责声明。
总之,这种基于PCR的血清分型迅速识别S.哈达尔,海德堡和鼠伤寒沙门氏菌, 肠炎血清型肠炎,和O,H1,H2等位基因与增设19个血清型。这种检测是一种快速,成本效益的替代传统的微生物方法血清型沙门氏菌。
The authors have nothing to disclose.
这项工作一直由美国农业部资助1999-35212-8680,2005-01378,并2010-04288-01,美国农业部方程式基金和格鲁吉亚的兽医农业研究资助国家的支持。本出版物中描述的协议,开发研究课程的一部分,基因4960H MIBO 4900L,BCMB 4960L,4960H BIOL在佐治亚大学的本科生使用几个分子流行病学研究项目的学生在毛雷尔实验室。我们要感谢支持我们的努力,将与研究本科教学,已经执行了毛雷尔和李实验室研究,许多本科生和我们的系主任,约翰Glisson。
Material Name | Tipo | Company | Catalogue Number | Comment |
---|---|---|---|---|
Luria Bertani | Fisher | (or any comparable source) | ||
Microfuge tubes | 1.5 ml capacity | Fisher | (or any comparable source) | |
Ethanol | 200 proof | Fisher | (or any comparable source) | |
dH2O | Molecular Biology Grade | Sigma | (or any comparable source; PCR only) | |
10 x PCR Buffer: | 20 mM MgCl2 | Idaho Technology | (buffer comes with BSA, Ficoll and Tartrazine) | |
30 mM MgCl2 | ||||
40 mM MgCl2 | ||||
PCR primers | ||||
DMSO | ||||
dNTP | Roche | (or any comparable source) | ||
Taq DNA Polymerase | Denville | (or any comparable source) | ||
Capillary pipettes | 10 μl volume | Idaho Technology | ||
Rapid Cycler | Idaho Technology | |||
Agarose | Low EEO; Molecular Biology Grade | BioRad | (or any comparable source) | |
50 X TAE Buffer or 5X TBE Buffer | Fisher | (or any comparable source) | ||
Ethidium bromide | BioRad | (or any comparable source) | ||
Horizontal, submersible gel electrophoresis chamber with gel mold | BioRad | (or any comparable source) | ||
Power supply | BioRad | (or any comparable source) | ||
Molecular Imager Gel Doc System | BioRad | (or any comparable source) |
Table 4. Materials