הערות כלליות: כל הפעולות צריכות להתבצע תחת מיקרוסקופ לנתח זקוף (אולימפוס, SZX10 הודעה עם Z-Axis Crank עם סטנד בום סטנד STU2) וכן באמצעות coagulator כירורגית (11). קבוצות הניסוי צריך להיות תואם ככל האפשר גיל ומשקל כדי להבטיח את ההשוואה של התוצאות. הממשל, טמפרטורה לחץ דם, נוזל ההרדמה צריך להיות יציב לאורך כל הדרך. 1. הרדמה והכנת קנה הנשימה השתמש C57BL / 6 עכברים, כי הם לפחות 10 שבועות ויש לך גוף של 22-25 גרם להשרות הרדמה באמצעות נתרן pentobarbital ב 70 מנה ip מ"ג / ק"ג משקל גוף (6). שמור הרדמה עם כ 10 מ"ג / ק"ג / שעה נתרן pentobarbital. היה זהיר עם מינון יתר שכן הדבר עלול להפחית באופן משמעותי את לחץ הדם. Re-המינון של pentobarbital – גם לאחר שעות, יכולה להוביל לעלייה ברמות קשות פלזמה. לאחר אינדוקציה הרדמה, עכברים מאובטח במצב שכיבה עם הגפיים העליונות והתחתונות המצורפת השולחן באמצעות סרט דביק, תפר מהודק עד הקרסוליים. לעשות את אותו הדבר עבור הראש באמצעות השיניים. הרחקה מספיק חשוב אינטובציה מוצלחת ניתוח מבוקר היטב. לפני הניתוח, לכסות את העכבר עם שמן מינרלי כדי להפחית את הסיכון לאלרגיה שיער העכבר. על מנת להבטיח כי טמפרטורת הגוף נשאר יציב לכסות את העכברים עם לעטוף מזון זמינים מסחרית. המקום עכברים על השולחן בקרת טמפרטורה מחומם (RT, Effenberg, מינכן, גרמניה) עם בדיקה מדחום רקטלי המצורפת בקר משוב תרמי לשמירה על חום גופם על 37 ° C. לחשוף את קנה הנשימה בניתוח. לנתח הצדדים לרוחב הגב של קנה הנשימה של הרקמה החיבורית מקום שני 3.0 תפר משי כירורגית (הרווארד המנגנון, ארה"ב) כל 10 ס"מ מתחת לקנה הנשימה. התפרים צריך להיות כ 1 ס"מ זו מזו. בזהירות לחתוך את הקנה 3-4 מ"מ מתחת הגרון בין שני הסחוסים מעגלית באמצעות מקפרסון-Vannas מספריים (8 ס"מ, להב ישר; Precision Instruments העולם, ארה"ב). הקפד לא לגרום לדימום, שכן הדבר עלול לבלבל את הפרמטרים התוצאה. בצע אינטובציה לקנה הנשימה באמצעות פוליאתילן cannulae בוטה (Insyte 22g, Beckton דיקינסון, ארה"ב). הכנס את קצה cannulae פוליאתילן בזווית של 85 מעלות לתוך קנה הנשימה. ואז להטות את cannulae כך עולה בקנה אחד עם לומן קנה הנשימה. לאט לאט לקדם את הצינור בהמשך קנה הנשימה עד קצה cannulae נעלם בתוך הפתח החזה. לקבע את הצינורית בתנוחה זו עם תפר שתי משי כירורגית להציב הגבי של קנה הנשימה (ראה 1.4). 2. טכניקה של פגיעה ההנשמה-Induced ריאות חבר את צינור ההנשמה. כדי לגרום פגיעה ריאות אנו משתמשים בטכניקה נשלטת לחץ אוורור באמצעות C סרוו 900 מסימנס (DRE וטרינרית, ארה"ב). בעלי חיים יהיה מאוורר באמצעות לחץ inspiratory שיא של 45 תדר, mbar של 80 נשימות / דקה לבין לחץ חיובי בסוף הנשיפה של 0-3 mbar עם FiO 2 = 1.0. ההשראה יחס תפוגה צריכים להיות 01:01. למרות העובדה כי ה-C סרוו 900 בנוי כמו מאוורר לבני אדם, השימוש בו הגדרה ההנשמה נשלט הלחץ עובד מצוין אוורור של עכברים. מוניטור קצב הלב עם א.ק.ג. (למשל Hewlett Packard, B blingen, גרמניה). ודא כי קצב הלב לא לרדת מתחת 400. אחד צריך לראות שינוי של ציר הלב בצד ימין, כאשר אוורור מכני הוא הנהיג כסימן גדל הלחצים בעורק הריאה בעקבות עלייה בלחץ intrathoracic. אם העכבר מפתח ברדיקרדיה, לבדוק את הטמפרטורה ואת המינון הרדמה / ריכוז. Xylacin / Ketamin הרדמה מעוררת בלב ליבו של 250 / דקה ולכן אינו מומלץ. החלת החלפת נוזלים תקין. עירוי תמיסת מלח רגיל עם 0.1 מ"ל / שעה באמצעות קטטר עורקי או ורידי יש לבצע לפני אוורור כדי להבטיח הגשת ורידי מספיק. בשל הלחצים אוורור גבוהה החזרה ורידית ללב נפגעת, דבר שעשוי להוביל לירידה קריטית של לחץ עורקי ממוצע. כמו כן, בולוס מלוחים של μl 500 יכול להינתן ip לפני הניתוח. המקום קטטר בעורק הראש עבור הקלטה רציפה של לחץ דם (27). צרף את הזרוע לגוף לפני שאתה מתחיל לנתח את העורק. עורק הצוואר חשוף דרך לנתיחה בוטה של שרירי paratracheal. בעקבות חשיפת נוסף והימנעות קפדנית של טראומה כל רקמות (במיוחד של העצב מחנק), קטטר מוכנס לתוך הכלי באמצעות שני התפרים ואת מלחציים קטן (37). זה יחשוף עוד קטע של העורק. מניחים ליגטורה בסוף מאוד של עורק הצוואר. צרף מהדק גדול לסוף תפר כדי להשיג ה מתח או לקבעדואר תפר לשולחן באמצעות קלטת. מקום אחר תפר סביב העורק לנתח את העורק עד הסוף דיסטלי מאוד. כאן, במקום מהדק קטן. השתמש במספריים מיקרו לחתוך פתח אלכסוני קטן לתוך העורק. החזק את הפתיחה עם מלקחיים קנס (דומון, WPI) ולקדם את הקטטר בגודל תקין עם הידיים / מלקחיים. צור קשר עם תפר השני שלך ולהבטיח את העורק. שחרר את מהדק ולקדם את הקטטר יותר. Secure את הקטטר קשרים עם כמה קלטות. לחילופין את הקטטר העורק הראשי יכול להיות מקום בסוף הניסוי כדי לאסוף דגימות דם עורקי לניתוח גז דם. 3. שחזור של דגימות רקמה אחרי 3 שעות של אוורור מכני, נאספות דגימות כדי להעריך את מידת הפגיעה ריאות. אנו ממליצים על איסוף נוזל שטיפה brochnoalveolar (BAL), הדם בעורקים רקמת הריאה. השג נוזל BAL בסוף הניסוי. לאחר העמקה של הרדמה, שטוף את צינור לקנה הנשימה עם פוספט 1 מ"ל בופר סליין (PBS). הנוזל צריך להישאר קנה הנשימה / הריאות למשך שלוש שניות לפני זה הוא התאוששות באמצעות מזרק המחובר. BAL היא Snap-קפואים בחנקן נוזלי המאוחסן ב -80 ° C לניתוח נוסף. שים לב כי נפח התאושש יכול להיות משמעותית פחות מ"ל 1. בצע גז בדיקות דם בסוף הניסוי. כדי לעשות זאת, חתך צריכה להיעשות ממש מתחת לעצם החזה. החזק את החזה עם מלקחיים במידה חתך לאורך כלוב הצלעות. בשלב הבא, הסרעפת היא חרות בקצוות והוא לגזור מן הצלעות. עכשיו יש נוף פתוח לתוך הפתח התחתון של החזה. הרם את החזה עם מלקחיים ולפתוח את בית החזה על ידי חתכים ארוכים בצד ימין ושמאל (לרוחב ככל האפשר) כדי להשלים את קיר בית החזה הקדמי מופנה מעלה במחלקות. זה צריך להיעשות, בעוד בעלי החיים עדיין ניסיוני מאוורר מכאני. החדר השמאלי הוא ניקב באמצעות מחט 27 ½ G וניתוח דם עורקי מתבצע באמצעות מערכת i-STAT (אבוט, ארה"ב). אם ניתוח עורקי גז דם יש לבצע, BAL לא ניתן להשיג, שכן זו תהיה confounder משמעותית את התוצאות. לחילופין שיטה לעיל, דגימות דם עורקי ניתן לאסוף באמצעות קטטר העורק הראשי. אולם זה צריך להיעשות לפני BAL מתקבל. והבלו הריאות en-הגוש ידי משיכת את לב לחתוך את קנה הנשימה. האם פיסת רקמה מוכנה לספוג דם, כך באתר כירורגית גלוי. משוך את הלב לכיוון הבטן לחתוך בזהירות לאורך עמוד השדרה לגייס את כל איברי החזה. חותכים את אבי העורקים, להסיר את איברי החזה ומניחים אותם על שולחן הניתוח נקיים. לחתוך את הלב ואת כלי מרכזי של המדגם רקמות. ודא כי אין כל רקמת בלוטת התימוס מחוברת עדיין הריאה. הפרד את הריאות עם מספריים ומניחים צינורות בודדים Snap-להקפיא. חנות ב -80 ° C לניתוח נוסף. 4. מדידה של פגיעה ריאות אנו ממליצים להשתמש בפרמטרים התוצאה הבאה כדי להעריך את מידת הפגיעה ריאות: ביצוע ELISA אלבומין (Bethyl מעבדות, ארה"ב) ו myeloperoxidase (MPO) ELISA (Hycult ביוטכנולוגיה, ארה"ב) כדי להעריך את מידת תפקוד מחסום וכמות דלקתיות תאים בנוזל BAL. בצע ELISA MPO גם בצורת רקמת הריאה. אם רטוב עד יבש יחס נמדדת איננו להשיג נוזל BAL ואת מחזור הדם הריאתי אינו סמוק (ראה 3.3). מדדו את המשקל של הריאות לאחר כריתה. ואז הריאות הם lyophilized עבור 48 שעות ו רקמת הריאות שוב נמדד. אז היחס רטוב אל היבשה, כפי שהיא נמדדת מ"ג של מים לכל מיליגרם של רקמה יבשה (5). באיור 1. התוכן חלבון BAL בתגובה וילי. עכברים היו מורדמים עם pentobarbital, אוורור מכני הונהג ועכברים היו מאוורר באמצעות לחץ שבשליטת הגדרות (לחץ inspiratory של 45 mbar, חיובי בסוף exspiratory לחץ mbar 3, 100% השראה ריכוז החמצן). לאחר 0, 1, 2 ו – 3 שעות של אוורור BAL היה לקצור את תכולת החלבון היה לכמת באמצעות assay חומצה bicinchoninic (assay BCA). השינוי היחסי של התוכן חלבון מוצג מנורמל ל -0 שעות של אוורור (n = 4 לכל קבוצה, * מציין p <0.05 לעומת שליטה, ממוצע ± SEM)