Genel notlar: Tüm işlemler, dik bir diseksiyon mikroskobu (Olympus, STU2 Standı Boom Stand ile Z-Eksen Crank Post SZX10) altında bir cerrahi koagülatör (11) kullanılarak yapılmalıdır. Deneysel gruplar sonuçlarının karşılaştırılabilirliği sağlamak için en iyi yaş ve ağırlığı mümkün olduğunca uyumlu olmalıdır. Sıcaklık, kan basıncı, anestezi ve sıvı yönetimi boyunca sabit olmalıdır. 1. Anestezi ve trakea hazırlık Kullanın ve en az 10 hafta eski C57BL / 6 fareler 22-25 g. bir vücuda sahip. Anestezi neden doz 70 mg / kg vücut ağırlığı ip (6) pentobarbital sodyum kullanarak. Yaklaşık pentobarbital 10 mg / kg / saat sodyum ile anestezi koruyun. Bu kan basıncını önemli ölçüde azaltabilirsiniz doz aşımı ile dikkatli olun. Pentobarbital yeniden dozlama sonra bile plazma düzeylerinde ciddi artışlara yol saat-. Sonra anestezi indüksiyonu, bir teyp ve ayak bileklerine kadar bağlanmış bir dikiş kullanarak tabloya bağlı üst ve alt ekstremite ile yatar pozisyonda güvenli fareler. Dişler kullanarak kafa için de aynı işlemi yapın. Yeterli frenleyici başarılı bir entübasyon ve iyi kontrollü bir cerrahi için önemlidir. Ameliyat öncesinde, fare saç alerji riskini azaltmak için, mineral yağ ile fare kaplayın. Vücut ısısı, piyasada bulunan gıda ambalajlarında farelerin kapağı sabit kalmasını sağlamak için. 37 vücut ısısını korumak için termal geribildirim denetleyicisine bağlı bir rektal termometre probu ile sıcaklık kontrollü ısıtmalı masa (RT, Effenberg, Münih, Almanya) ° C Yeri fareler Trakeanın cerrahi Açığa. Bağ dokusu yer ve iki 3.0 ipek cerrahi sütür (Harvard cihazları, ABD) her 10 cm altında uzun trakea trakea lateral ve dorsal taraf parçalara ayır. Sütür dışında yaklaşık 1 cm olmalıdır. McPherson-Vannas Makas (Dünya Hassas Aletler, ABD 8 cm, düz bıçak) kullanarak iki dairesel kıkırdaklar arasındaki gırtlak altında 4 mm – dikkatlice trakea 3 insizyon. Kanamaya neden bu sonuç parametreleri etkileyebilecek, emin olun. Trakeal entübasyon künt polietilen kanül (Insyte 22g, Beckton Dickinson, ABD) kullanarak gerçekleştirin. Polietilen kanül ucu trakea içine 85 derecelik bir açıyla yerleştirin. Trakeal lümen böylece Sonra kanüller yatırın. Kanül ucu toraks diyafram kayboldu kadar tüp trakea aşağı yavaşça ilerler. Trakea (bkz. 1.4) dorsal yerleştirilen iki cerrahi ipek sütür ile bu pozisyonda tüp sabitleşmek. 2. Ventilatöre bağlı akciğer hasarı Tekniği Tüpün bir vantilatör bağlayın. Akciğer hasarına neden için Servo 900 C, Siemens (PRM Veteriner, ABD) kullanılarak bir basınç kontrollü ventilasyon tekniği kullanır . Hayvanlar FiO 2 = 1.0 ile 80 nefes / dk 45 mbar, frekans pik inspiratuar basınç ve 0-3 mbar bir pozitif ekspirasyon sonu basınç ile havalandırılmalıdır. Ilham sona erme oranı 1:1 olmalıdır. Servo 900 C, insanlar için vantilatör olarak inşa olduğu gerçeğine rağmen, bir basınç kontrollü ventilatör ortamda kullanılması farelerin havalandırma için mükemmel çalışır. Monitör EKG (örneğin, Hewlett Packard, B blingen, Almanya) ile kalp atım hızı. Kalp hızı 400 altına düştüğü olmadığından emin olun. Bir mekanik ventilasyon intratorasik basınç artışı takiben artan pulmoner arter basınçları bir işareti olarak tesis sağ kalp eksen kayması, göreceksiniz. Fare bradikardi oluşursa, sıcaklık ve anestezi dozu / konsantrasyon kontrol edin. Xylacin / Ketamin anestezisi 250 / dk bir kalp neden olur ve bu nedenle tavsiye edilmez. Uygun bir sıvı replasmanı uygulayın. Olan bir infüzyon serum fizyolojik 0.1 ml / saat arteriyel ya da venöz kateter yoluyla yeterli venöz dosyalama sağlamak için havalandırma önce yapılmalıdır. Ortalama arter basıncında önemli bir düşüşe yol açabilecek yüksek havalandırma basınçları, kalbe venöz dönüş bozulur nedeniyle. Ayrıca, 500 ul tuzlu bolus cerrahi öncesi ip verilebilir. Karotis arter kan basıncı (27) sürekli kayıt için bir kateter yerleştirin. Arter diseksiyon başlamadan önce vücut kol takın. Karotis arter paratrakeal kasların künt diseksiyon ile maruz kalmaktadır. Daha fazla maruz kalma ve herhangi bir doku travması (özellikle vagal sinir) dikkatli kaçınma ardından, iki sütür ve küçük bir kelepçe (37) ile damar içine bir kateter yerleştirilir. Bu arter uzun bir segment gösterecektir. Karotis arter en sonunda bir ligatür yerleştirin. Gerginlik veya sabitleşmek inci elde etmek için dikiş sonuna kadar büyük bir kelepçe takınbant kullanarak tablo e dikin. Arter çevresinde başka bir dikiş yerleştirin ve çok distal ucu arter disseke. Burada, küçük bir kelepçe yerleştirin. Arter içine bir küçük çapraz açılış kesmek için mikro makas kullanın. Ince bir forseps (Dumont, TEFE) ile açılış tutun ve ellerinizi / forseps ile uygun büyüklükte kateter önceden. Ikinci sütür ile düğüm yapın ve arter güvenli. Kelepçe gevşetin ve kateter daha önceden. Kateter birkaç knot ve bant ile sabitleyin. Alternatif olarak, karotis arter kateter arter kan gazı analizi için kan örnekleri toplamak için deney sonunda yer olabilir. 3. Kurtarma doku örneklerinin 3 saat sonra mekanik ventilasyon, örnekler, akciğer hasarı ölçüde değerlendirmek için toplanır. Brochnoalveolar lavaj sıvısı (BAL), arteryel kan ve akciğer dokusunda toplayarak öneririz. Deneyin sonunda BAL sıvı alın. Anestezi derinleşen sonra, 1 ml fosfat ile trakeal tüp yıkayın tuzlu su (PBS) tamponlu. Bağlı enjektör ile kurtarma önce sıvı üç saniye için trakea / akciğer kalmalıdır. BAL, sıvı nitrojen içinde snap-dondurulmuş ve -80 ° C'de daha fazla analiz için saklanır. Kurtarılan hacmi 1 ml önemli ölçüde daha az olabileceğini farkında olun. Deney sonunda kan gazı analizi yapın. Bunu yapmak için, bir kesi sağ sternum altında yapılmalıdır. Forseps ve göğüs kafesi boyunca kesi ölçüde ile sternum tutun. Daha sonra, diyaframın kenarlarında kazıma ve kaburga dışarı kesilir. Şimdi alt toraks boşluğuna açık bir görüş vardır. Forseps ile sternum yukarı kaldırın ve tam anterior toraks duvar-koğuşta kadar açık olduğunu, sağ ve sol tarafında uzun kesintiler (mümkün olduğunca lateral) göğüs kafesi açmak. Deneysel hayvan hala mekanik ventilasyon ise bu yapılmalıdır. Sol ventrikül, 27 delinirse ½ G iğne ve arteryel kan analizi i-STAT Sistemi (Abbott, USA) kullanılarak yapılır. Bu sonuç önemli bir karıştırıcı olacağından, arteryel kan gazı analizi yapılmalıdır BAL, elde edilebilir değildir. Alternatif Yukarıdaki yöntem, arteryel kan örnekleri karotis arter kateter yoluyla toplanabilir. Ancak BAL elde önce yapılmalıdır. Kalp yukarı çekerek ve trakea kesmek Vergi akciğerlerin en blok. Kan emmek için hazır bir doku parçası vardır, cerrahi sitesi görünür. Karın yönünde kalp çekin ve tüm torasik organlar dikkatli bir şekilde harekete geçirmek için, omurga boyunca kesilir. Aort Kes, torasik organlar kaldırmak ve temiz bir cerrahi masanın üzerine koyun. Kalp ve büyük damar doku örneği kesip. Hiçbir timus dokusu hala akciğere bağlı olduğundan emin olun. Bireysel boru ve ek dondurucu bir makas ve yer ile akciğerlere ayırın. Daha fazla analiz için -80 ° C'de saklayın. 4. Akciğer hasarı ölçümü Biz akciğer hasarı ölçüde değerlendirmek için aşağıdaki sonuç parametreleri kullanmanızı tavsiye ederim: albümin ELISA (Bethyl Laboratories, USA) ve bariyer disfonksiyonu ölçüde ve inflamatuar miktarını değerlendirmek için bir miyeloperoksidaz (MPO) ELISA (Hycult Biyoteknoloji, ABD) yapın BAL sıvısı hücre. Da akciğer dokusunda MPO ELISA gerçekleştirin oluşturur. Islak-kuru oranı ölçülecek ise BAL sıvısı elde yoktur ve pulmoner dolaşım (3.3) kızarmış değildir. Eksizyon sonrası akciğer ağırlığı ölçün. Sonra akciğerler 48 saat ve akciğer dokusunun yeniden ölçülür için liyofilize. Sonra ıslak-kuru oranı kuru doku mg başına düşen su mg (5) olarak ölçülür. Şekil 1. Protein içeriği VILI. Fareler yanıt BAL pentobarbital ile anestezi, mekanik ventilasyon tesis edildi ve fareler, basınç kontrollü ayarları (45 mbar inspiratuar basınç, son exspiratory pozitif basınç 3 mbar, ilham% 100 kullanarak havalandırılan oksijen konsantrasyonu). 0 1, 2 ve 3 saat sonra, havalandırma BAL, hasat ve protein içeriği bicinchoninic asit tayini (BCA tahlil) kullanarak sayısal oldu. Protein içeriği göreceli değişim havalandırma 0 saat normalize gösterilir (n = 4 grup başına, * p <0.05, kontrole göre gösterir, ortalama ± SEM )