Summary

Uppskattning av kristallin cellulosahalt i växtbiomassa med updegraff-metoden

Published: May 15, 2021
doi:

Summary

Updegraff-metoden är den mest använda metoden för cellulosauppskattning. Huvudsyftet med denna demonstration är att tillhandahålla ett detaljerat Updegraff-protokoll för uppskattning av cellulosahalten i prover av växtbiomassa.

Abstract

Cellulosa är den mest rikliga polymeren på jorden som genereras av fotosyntes och den huvudsakliga bärande komponenten i cellväggar. Cellväggen spelar en viktig roll för växttillväxt och utveckling genom att ge styrka, styvhet, hastighet och riktning för celltillväxt, cellformsunderhåll och skydd mot biotiska och abiotiska stressfaktorer. Cellväggen består främst av cellulosa, lignin, hemicellulosa och pektin. Nyligen har växtcellsväggarna varit inriktade på andra generationens biobränsle- och bioenergiproduktion. Specifikt används cellulosakomponenten i växtcellväggen för produktion av cellulosaetanol. Uppskattning av cellulosahalten i biomassa är avgörande för grundläggande och tillämpad cellväggsforskning. Updegraff-metoden är enkel, robust och den mest använda metoden för uppskattning av kristallin cellulosahalt i växtbiomassa. Alkohol olösliga rå cell vägg fraktion vid behandling med Updegraff reagens eliminerar hemicellulose och lignin fraktioner. Senare utsätts Updegraff reagensresistent cellulosafraktion för svavelsyrabehandling för att hydrolysera cellulosa homopolymeren till monomeriska glukosenheter. En regressionslinje utvecklas med hjälp av olika koncentrationer av glukos och används för att uppskatta mängden glukos som frigörs på cellulosahydrolys i de experimentella proverna. Slutligen uppskattas cellulosahalten baserat på mängden glukosmonomerer genom kolorimetrisk antropenanalys.

Introduction

Cellulosa är den primära bärande komponenten i cellväggar, som finns i både primära och sekundära cellväggar. Cellväggen är en extracellulär matris som omger växtceller och består främst av cellulosa, lignin, hemicellulosa, pektin och matrisproteiner. Ungefär en tredjedel av växternas biomassa är cellulosa1 och den spelar en betydande roll i växttillväxt och utveckling genom att tillhandahålla styrka, styvhet, hastighet och riktning för celltillväxt, cellformsunderhåll och skydd mot biotiska och abiotiska stressfaktorer. Bomullsfiber innehåller 95% cellulosa2 innehåll, medan träd innehåller 40% till 50% cellulosa beroende på växtart och organtyper3. Cellulosan består av upprepade enheter av cellobiose, en disackarid av glukosrester som är anslutna β-1,4 glykosidbindningar4. Cellulosaetanol framställs av glukosen som härrör från cellulosa som finns i växtcellsväggarna5. Cellulosafiber består av flera mikrofibriller där varje mikrofibril fungerar som kärnenhet med 500-15000 glukosmonomerer1,6. Cellulosor homopolymer syntetiseras av plasmamembran inbäddade cellulosa syntas komplex (CSC)1,7. Enskilda cellulosasyntas A-proteiner (CESA) syntetiserar glukankedjor och de intilliggande glukankedjorna är sammankopplade med vätebindningar för att bilda kristallin cellulosa1,8. Cellulosa finns i flera kristallina former med två dominerande former, cellulosa Iα och cellulosa Iβ som inhemska former9. I högre växter finns cellulosa i cellulosa Iβ-form medan lägre växtcellulosa finns i Iα-form10,11. Sammantaget spelar cellulosa en viktig roll för att ge styrka och styvhet till växtcellsväggarna.

Första generationens biobränslen produceras främst av majsstärkelse, sockerrör och sockerbetor, som är livsmedelskällor, medan andra generationens biobränslen fokuserar på biobränsleproduktion från biomassacellsmaterial från andra generationens biomassa som inte är livsmedelsväxter12. Noggrann uppskattning av kristallint cellulosainnehåll är inte bara viktigt för grundforskningen om cellulosabiosyntes och cellväggsdynamik utan även för forskning om tillämpat biobränsle och bioprodukter. Olika metoder har utvecklats och optimerats för uppskattning av cellulosa i växtbiomassan, och Updegraff-metoden är den mest använda metoden för cellulosauppskattning. Den första rapporterade metoden för cellulosauppskattning var av Cross och Bevan 190813. Metoden baserades på principen om alternativ klorering och extraktion genom natriumsulfat. Cellulosan som erhållits genom originalet samt modifierade protokoll av Cross och Bevan metoden visade dock förorening av små fraktioner av lignin utöver en betydande mängd xylans och mannans14. Trots flera modifieringar för att ta bort lignin och hemicelluloser från cellulosafraktionen behöll Cross-Bevan-metoden en betydande mängd mannaner tillsammans med cellulosa. Senare utvecklades Kurschners metod genom att använda salpetersyra och etanol för att extrahera cellulosa15. Denna metod uppgav att totalt lignin och 75% av pentosanerna avlägsnades men de verkliga cellulosaresultaten var desamma som de som uppskattades med kloreringsmetod för Cross och Bevan. En annan metod (Norman och Jenkins) utvecklades genom att använda metanol-bensen, natriumsulfat och natriumhypoklorit för att extrahera cellulosa16. Denna metod behöll också en bråkdel av lignin (3%) och betydande mängder pentosaner som leder till en korrekt uppskattning av cellulosa. Senare använde Kiesel och Semiganowsky ett annat tillvägagångssätt för hydrolyscellulosa med 80% koncentrerad svavelsyra, och de hydrolyserade reducerade sockerarter uppskattades med Bertrands metod17. De två metoderna, Waksmans och Stevens18 och Salo14,19 som utvecklades baserat på Kiesel och Semiganowskys metod, gav också 4-5% mindre cellulosainnehåll jämfört med tidigare metoder20.

Updegraff-metoden är den mest använda metoden för uppskattning av kristallint cellulosainnehåll. Denna metod beskrevs först av Updegraff för mätning av cellulosa 196921. Updegraff-metoden integrerar Kurschner-metoden (användning av salpetersyra), Kiesel- och Seminowsky-metoder (hydrolys av cellulosa i glukosmonomerer med svavelsyra) med vissa modifieringar och antropisk analys av viles och silverman för enkel kolorimetrisk uppskattning av glukos och kristallin cellulosahalt22. Principen för denna metod är användningen av ättiksyra och salpetersyra (Updegraff reagens) för att eliminera hemicellulosa och lignin från de homogeniserade växtvävnaderna, vilket lämnar ättiksyrabeständig cellulosa för vidare bearbetning och uppskattning15. Den ättiksyraresistenta cellulosa behandlas med 67% svavelsyra för att bryta cellulosan i glukosmonomerer och de frigjorda glukosmonomererna uppskattas av anthrone assay21,23. Flera ändringar av den ursprungliga Updegraff-metoden användes för att förenkla förfarandet och cellulosauppskattningen med anthrone-analys24. I stort sett kan denna metod delas in i fem faser. I den första fasen bereds växtmaterialet. I den andra fasen separeras råcellväggen från den totala biomassan, eftersom cellulosa är den viktigaste komponenten i växtcellsväggar. Senare, i den tredje fasen, separeras cellulosan från de icke-cellulosa cellväggskomponenterna genom behandling med Updegraff reagens. I den fjärde fasen bryts den ättiksyraresistenta cellulosan till glukosmonomerer genom svavelsyrabehandling. Svavelsyrabehandling av cellulosa resulterar i bildandet av 5-hydroxymethylfurfural föreningar från reaktionen av glukosmonomererer med svavelsyra. Slutligen, i den sista fasen, genererar antronen ett grönblått komplex genom att koka med furfuralföreningen som genereras i föregående fas25. Denna antropbaserade kolorimetriska metod användes första gången 1942 av Dreywood. Anthrone är ett färgämne som identifierar furfuralföreningar av pentos och hexose dehydrerade produkter såsom 5-hydroxymethylfurfural, under sura förhållanden. Reaktion med hexose ger en intensiv färg och bättre svar jämfört med pentoser25. Mängden bundet glukos mäts med spektrofotometerabsorbans vid 620 nm och intensiteten hos det grönblå komplexet står i direkt proportion till mängden socker i provet. De uppmätta absorbansvärdena jämfördes med en glukosstandardkurva regressionslinje för att beräkna provet glukoskoncentration. Den uppmätta glukoshalten användes för att uppskatta cellulosahalten i växtbiomassan.

Protocol

1. Experimentell förberedelse Mala torkat växtmaterial till ett fint pulver. Proteinlöslighetsbuffert (PSB): Förbered stamlösningar på 1 M Tris (pH 8.8), 0,5 M etylendiaminetetraacetsyra (EDTA) (pH 8.0) och autoklavera dem. Gör färsk PSB-buffert från dessa stamlösningar med slutliga koncentrationer på 50 mM Tris, 0,5 mM EDTA och 10% natriumddecylsulfat (SDS) i sterilt vatten. Bered 100 ml 70% etanol (v/v): 70 ml 100% etanol och 30 ml sterilt vatten. Bered 100 ml metanol:…

Representative Results

Bomullsplantor som odlades i det gröna huset valdes ut för denna studie. Två olika experimentella linjer av bomull valdes för jämförande analys av cellulosa innehåll. För varje experimentell linje samlades rotvävnaden in från tre biologiska replikat. Totalt 500 mg vävnad homogeniserades och 20 mg av det användes för rå cellvägg utvinning. Senare, 5 mg rå cell vägg extrakt användes för Updegraff reagens behandling för att ta bort hemicellulose och lignin från cellulosa. Den renade cellulosa hydrolyser…

Discussion

Bomullsfibrer är naturliga fibrer som produceras av bomullsfed. Bomullsfiber är en enda cell med ~95% cellulosainnehåll2 med hög kristallint cellulosainnehåll med omfattande tillämpningar inom textilindustrin31. Eftersom bomullsfiber innehåller ~ 95% cellulosa har vi använt bomullsrotvävnader för att demonstrera uppskattningen av kristallint cellulosainnehåll. Bomullsrotvävnader är måttligt rika på kristallint cellulosainnehåll och representerar en allmänt …

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Institutionen för växt- och markvetenskap och bomull Inc. för deras partiella stöd för denna studie.

Materials

Acetone Fisher Chemical A18-500 Used in the protocol
Anthrone Sigma Aldrich 90-44-8 For colorimetric assay
Centrifuge Eppendorf 5424 For centrifugation
Chloroform Mallinckrodt 67-66-3 Used in the protocol
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma Aldrich 6381-92-6 Used in the protocol
Ethanol Millipore Sigma EM-EX0276-4S Used in the protocol
Filter paper Whatman 1004-090 Positive control
Glacial acetic acid Sigma SKU A6283 Used in the protocol
Heat block/ ThermoMixer F1.5 Eppendorf 13527550 For controlled temperatures
Incubator Fisherbrand 150152633 Used for drying plant sample
Measuring Scale Mettler Toledo 30243386 For specific quantities
Methanol 100 % Fisher Chemical A412-500 Used in the protocol
Microplate (96 well) Evergreen Scientific 222-8030-01F For anthrone assay
Nitric acid Sigma Aldrich 695041 Used in the protocol
Polypropylene Microvials (2 mL) / screw capped tubes BioSpec Products 10831 For high temperatures
Spectrophotometer(Multimode Detector) Beckmancoulter DTX880 1000814 For measuring absorbances
Spex SamplePrep 6870 Freezer / Mill Spex Sample Prep 68-701-15 For grinding plant tissues into fine powder
Sulphuric acid J.T.Baker 02-004-382 Used in the protocol
Sodium dodecyl sulfate (SDS) Sigma Aldrich 151-21-3 Used in the PSB buffer
Tubes (2 mL) Fisher Scientific 05-408-138 Used in the protocol
Tris Hydrochloride Sigma Aldrich  1185-53-1 Used in the PSB buffer
Ultrapure distilled water Invitrogen 10977 Used in the protocol
Vacuum dryer (vacufuge plus) Eppendorf 22820001 For drying samples
Vortex mixer Fisherbrand 14-955-151 For mixing
Waterbath Thermoscientific TSGP02PM05 For temperature controlled conditions at specific steps
Weighing Paper Fisher Scientific 09-898-12A Used in the protocol

Referencias

  1. Somerville, C. Cellulose synthesis in higher plants. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 22, 53-78 (2006).
  2. Balasubramanian, V. K., Rai, K. M., Thu, S. W., Hii, M. M., Mendu, V. Genome-wide identification of multifunctional laccase gene family in cotton (Gossypium spp.); expression and biochemical analysis during fiber development. Scientific Reports. 6, 34309 (2016).
  3. Mendu, V., et al. Identification and thermochemical analysis of high-lignin feedstocks for biofuel and biochemical production. Biotechnology for Biofuels. 4, 43 (2011).
  4. Kraszkiewicz, A., Kachel-Jakubowska, M., Lorencowicz, E., Przywara, A. Influence of cellulose content in plant biomass on selected qualitative traits of pellets. Agriculture and Agricultural Science Procedia. 7, 125-130 (2015).
  5. Jordan, D. B., et al. Plant cell walls to ethanol. Biochemical Journal. 442, 241-252 (2012).
  6. Brett, C. T. Cellulose microfibrils in plants: biosynthesis, deposition, and integration into the cell wall. International Review of Cytology. 199, 161-199 (2000).
  7. Li, S., et al. Cellulose synthase complexes act in a concerted fashion to synthesize highly aggregated cellulose in secondary cell walls of plants. Proceedings of the National Academy of Sciences. 113, 11348-11353 (2016).
  8. Polko, J. K., Kieber, J. J. The regulation of cellulose biosynthesis in plants. The Plant Cell. 31, 282-296 (2019).
  9. Brown, R. M. The biosynthesis of cellulose. Journal of Macromolecular Science, Part A. 33, 1345-1373 (1996).
  10. Gautam, S. P., Bundela, P. S., Pandey, A. K., Jamaluddin, M. K., Sarsaiya, A., Sarsaiya, S. A review on systematic study of cellulose. Journal of Applied and Natural Science. 2, (2010).
  11. Coughlan, M. P. Enzymic hydrolysis of cellulose: An overview. Bioresource Technology. 39, 107-115 (1992).
  12. Robak, K., Balcerek, M. Review of second generation bioethanol production from residual biomass. Food Technology and Biotechnology. 56, 174-187 (2018).
  13. Cross, C. F., Bevan, E. J. Cellulose and chemical industry. Journal of the Society of Chemical Industry. 27, 1187-1193 (1908).
  14. Paloheimo, L., Eine, H., Kero, M. L. A method for cellulose determination. Agricultural and Food Science. 34, (1962).
  15. Kurschner, K., Hanak, A., Diese, Z. . Zeitschrift für Lebensmittel-Untersuchung und-Forschung. 59, 448-485 (1930).
  16. Norman, A. G., Jenkins, S. A new method for the determination of cellulose, based upon observations on the removal of lignin and other encrusting materials. Biochemical Journalournal. 27, (1933).
  17. Kiesel, A., Semiganowsky, N. Cellulose-Bestimmung durch quantitative verzuckerung. Berichte der deutschen chemischen Gesellschaft (A and B Series). 60, 333-338 (1927).
  18. Waksman, S. A. S., et al. A system of proximate chemical analysis of plant materials. Industrial Engineering Chemistry and Analytical Edition. 2, 167-173 (1930).
  19. Salo, M. -. L. Determination of carbohydrates in animal foods as seven fractions. Agricultural and Food Science. , 32-38 (1961).
  20. Giger-Reverdin, S. Review of the main methods of cell wall estimation: interest and limits for ruminants. Animal Feed Science and Technology. 55, 295-334 (1995).
  21. Updegraff, D. M. Semimicro determination of cellulose inbiological materials. Analytical Biochemistry. 32, 420-424 (1969).
  22. Viles, F. J., Silverman, L. Determination of starch and cellulose with anthrone. Analytical Chemistry. 21, 950-953 (1949).
  23. Scott, T. A., Melvin, E. H. Determination of dextran with anthrone. Analytical Chemistry. 25, 1656-1661 (1953).
  24. Kumar, M., Turner, S. Protocol: a medium-throughput method for determination of cellulose content from single stem pieces of Arabidopsis thaliana. Plant Methods. 11, 46 (2015).
  25. Yemm, E. W., Willis, A. J. The estimation of carbohydrates in plant extractsby anthrone. Biochemical Journal. 57, 508-514 (1954).
  26. Houston, K., Tucker, M. R., Chowdhury, J., Shirley, N., Little, A. The plant cell wall: A complex and dynamic structure as revealed by the responses of genes under Stress conditions. Frontiers in Plant Science. 7, (2016).
  27. Jiang, G., et al. Biomass extraction using non-chlorinated solvents for biocompatibility improvement of polyhydroxyalkanoates. Polymers. 10, 731 (2018).
  28. Li, T., et al. A saponification method for chlorophyll removal from microalgae biomass as oil feedstock. Marine Drugs. 14, 162 (2016).
  29. Wiltshire, K. H., Boersma, M., Möller, A., Buhtz, H. Extraction of pigments and fatty acids from the green alga Scenedesmus obliquus (Chlorophyceae). Aquatic Ecology. 34, 119-126 (2000).
  30. Foster, C. E., Martin, T. M., Pauly, M. Comprehensive compositional analysis of plant cell walls (lignocellulosic biomass) part II: carbohydrates. Journal of Visualized Experiments. (1837), (2010).
  31. Haigler, C., Betancur, L., Stiff, M., Tuttle, J. Cotton fiber: a powerful single-cell model for cell wall and cellulose research. Frontiers in Plant Science. 3, (2012).
  32. Spirk, S., Nypelö, T., Kontturi, E. Editorial: Biopolymer thin films and coatings. Frontiers in Chemistry. 7, (2019).
  33. Long, L. -. Y., Weng, Y. -. X., Wang, Y. -. Z. Cellulose aerogels: Synthesis, applications, and prospects. Polymers. 10, 623 (2018).

Play Video

Citar este artículo
Dampanaboina, L., Yuan, N., Mendu, V. Estimation of Crystalline Cellulose Content of Plant Biomass using the Updegraff Method. J. Vis. Exp. (171), e62031, doi:10.3791/62031 (2021).

View Video