Summary

Generering av inducerade neurala stamceller från perifera mononukleära celler och differentiering mot dopaminerga neuron prekursorer för transplantations studier

Published: July 11, 2019
doi:

Summary

I protokollet presenteras omprogrammering av perifera mononukleära blodceller för att inducera neurala stamceller av Sendai virusinfektion, differentiering av iNSCs i dopaminerga neuroner, transplantation av DA-prekursorer till den ensidigt-lesioned Musmodeller för Parkinsons sjukdom och utvärdering av säkerheten och effekten av de iNSC-härledda DA-prekursorer för PD-behandling.

Abstract

Parkinsons sjukdom (PD) orsakas av degeneration av dopaminerga (DA) nervceller vid substantia nigra pars compacta (SNpc) i den ventrala mesencephalon (VM). Cell substitutionsterapi har ett stort löfte för behandling av PD. nyligen har inducerad neurala stamceller (iNSCs) vuxit fram som en potentiell kandidat för cell substitutionsterapi på grund av minskad risk för tumör bildning och plasticitet att ge upphov till regionspecifika nervceller och glia. iNSCs kan omprogrammeras från autolodiga somatiska cellulära källor, såsom fibroblaster, perifera mononukleära blodceller (PBMNCs) och olika andra typer av celler. Jämfört med andra typer av somatiska celler, PBMNCs är en tilltalande förrätt celltyp på grund av den lätthet att komma åt och expandera i kulturen. Sendai virus (SeV), en RNA icke-integrativ virus, kodning omprogrammering faktorer inklusive Human OCT3/4, SOX2, KLF4 och c-MYC, har en negativ känsla, enkelsträngad, icke-segmenterade genomet som inte integreras i värd arvsmassa, men bara replikat i cytoplasman hos infekterade celler, som erbjuder ett effektivt och säkert fordon för omprogrammering. I den här studien beskriver vi ett protokoll där iNSCs erhålls genom omprogrammering av PBMNCs, och differentieras till specialiserade VM DA-neuroner genom en tvåstegs metod. Sedan DA prekursorer transplanteras in ensidigt 6-hyroxydopamin (6-OHDA)-lesioned PD musmodeller för att utvärdera säkerhet och effekt för behandling av PD. Denna metod ger en plattform för att undersöka de funktioner och terapeutiska effekterna av patientspecifika DA neurala celler in vitro-och in vivo.

Introduction

Parkinsons sjukdom (PD) är en vanlig neurodegenerativ sjukdom, orsakad av degeneration av dopaminerga (DA) nervceller vid substantia nigra pars compacta (SNpc) i ventrala mesencephalon (VM), med en prevalens av mer än 1% i befolkningen över 60 års ålder 1 , 2. under det senaste decenniet, cellterapi, som syftar till att antingen ersätta de degenerativa eller skadade celler, eller näring mikromiljön runt degenererade neuroner, har visat potential i behandling av PD3. Samtidigt har omprogrammeringsteknik gjort betydande framsteg4, vilket ger en lovande cellulär källa för substitutionsterapi. Humana inducerade pluripotenta stamceller (iPSCs) och embryonala stamceller (ESCs) har visat sig kunna differentiera till DA neurala celler, som kan överleva, mognad, och förbättra motoriska funktioner när ympas till råtta och icke-mänskliga primater PD-modeller5 ,6,7,8. iPSCs utgör en milstolpe i cellulära omprogrammeringstekniker och har en stor potential vid celltransplantation. emellertid, det finns fortfarande en oro över risken för tumör bildning från ofullständigt differentierade celler. En alternativ cellulär källa för celltransplantation är härstamning-engagerade adulta stamceller erhållna genom direkt omprogrammering, såsom inducerade neurala stamceller (iNSCs), som kan härledas från de instabila intermediaterna, som förbigår pluripotensen etapp9,10,11.

Både iPSCs och inscs kan omprogrammeras från autolodiga cellulära källor, såsom fibroblaster, perifera mononukleära blodceller (pbmncs) och olika andra typer av celler12,13,14, vilket minskar Immunogenicitet av transplanterade celler i hög grad. Dessutom, jämfört med iPSCs, iNSCs är inneboende med minskad risk för tumör bildning och härstamning-engagerade plasticitet, endast kunna differentiera till nervceller och glia11. I de första studierna, mänskliga eller mus iPSCs och inscs genererades från fibroblaster erhållits från hudbiopsier, vilket är ett invasivt förfarande14,15. Med detta avseende, PBMNCs är en tilltalande förrätt cell källa på grund av den mindre invasiva provtagning processen, och lätt att få ett stort antal celler inom en kort period av expansionstid16. Inledande omprogrammering studier anställda integrativ leveranssystem, såsom lentivirala eller retrovirala vektorer, som är effektiva och lätta att genomföra i många typer av celler17; dessa leveranssystem kan dock orsaka mutationer och reaktivering av kvarvarande transgener, som utgör säkerhetsfrågor för kliniska terapeutiska ändamål12. Sendai virus (SeV) är en icke-integrativ RNA-virus med en negativ känsla, enkelsträngad arvsmassa som inte integreras i värd arvsmassan, men bara replikat i cytoplasman hos infekterade celler, som erbjuder ett effektivt och säkert fordon för omprogrammering18 ,19. Rekombinanta SeV vektorer finns tillgängliga som innehåller omprogrammering faktorer inklusive Human OCT3/4, SOX2, KLF4 och c-MYC i sina öppna Läs ramar. Dessutom kan SeV virusvektorer förbättras ytterligare genom att införa temperaturkänsliga mutationer, så att de snabbt kan avlägsnas när odlings temperaturen höjs till 39 ° c20. I den här artikeln beskriver vi ett protokoll för att programmera PBMNCs till iNSCs med hjälp av SeV-systemet.

Många studier har rapporterat härledning av da neuroner från mänskliga ESCs eller iPSCs med hjälp av olika metoder6,8,21. Emellertid, det finns en brist på protokoll som beskriver differentiering av DA neuroner från iNSCs i detaljer. I detta protokoll kommer vi att beskriva den effektiva generationen av DA-neuroner från iNSCs med hjälp av en tvåstegs metod. DA neuronala prekursorer kan transplanteras in i striatum av PD musmodeller för säkerhet och effekt utvärderingar. Denna artikel kommer att presentera ett detaljerat protokoll som täcker olika stadier från generering av inducerad neurala stamceller av Sendai virus, differentiering av iNSCs i DA neuroner, inrättande av mus PD-modeller, till transplantation av DA prekursorer i striatum av PD-modellerna. Med hjälp av detta protokoll kan man generera iNSCs från patienter och friska donatorer och härleda DA neuroner som är säkra, standardiserade, skalbara och homogena för celltransplantation ändamål, eller för modellering PD i en maträtt och utredning av mekanismerna bakomliggande sjukdomsdebut och utveckling.

Protocol

Alla förfaranden måste följa riktlinjerna från den institutionella mänskliga forskningsetiska kommittén. Informerat samtycke måste erhållas från patienter eller friska frivilliga före blod insamling. Detta protokoll godkändes av institutionens etikkommitté för mänskliga forskningsfrågor och utfördes i enlighet med institutionens riktlinjer för skötsel och användning av djur. 1. insamling, isolering och expansion av PBMNCs Samling av PBMNCs <l…

Representative Results

Här rapporterar vi ett protokoll som täcker olika stadier av iNSC-DA cellterapi för att behandla PD-modeller. För det första var PBMNCs isolerade och expanderade, och omprogrammeras till iNSCs av SeV infektion. En schematisk representation av procedurerna med PBMNC-expansion och iNSC-induktion visas i figur 1. På dag-14, PBMNCs isolerades med hjälp av en densitet gradient medium (tabell över material). Före centrifugering separerades blod som späddes med PBS och de…

Discussion

Här presenterade vi ett protokoll som täckte olika stadier av iNSC-DA cellterapi för PD-modeller. Kritiska aspekter av detta protokoll inkluderar: (1) isolering och expansion av PBMNCs och omprogrammering av PBMNCs till iNSCs av SeV infektion, (2) differentiering av iNSCs till DA neuroner, (3) inrättande av ensidiga 6-OHDA-lesioned PD musmodeller och beteendemässiga bedömning och (4) celltransplantation av DA-prekursorer och beteendemässig bedömning.

I detta protokoll, den första dele…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbetet stöddes av följande bidrag: stamcells-och översättnings nationella nyckelprojekt (2016YFA0101403), Kinas National Natural Science Foundation (81661130160, 81422014, 81561138004), Beijing Municipal Natural Science Foundation (5142005), Peking Talents Foundation (2017000021223TD03), stödprojekt av hög nivå lärare i Peking kommunala universitet under perioden 13: e fem års plan (CIT & TCD20180333), Peking Medical system hög nivå Talent Award (2015-3-063), Peking Kommunal Health Commission Fund (PXM 2018_026283_000002), Peking 100, Thousand, och 10000 talanger Fund (2018A03), Beijing kommunal administration av sjukhus klinisk medicin utveckling av särskilda finansieringsstöd (ZYLX201706), och Royal Society-Newton avancerad gemenskap (NA150482).

Materials

15-ml conical tube Corning 430052
1-Thioglycerol Sigma-Aldrich M6145 Toxic for inhalation and skin contact
24-well plate Corning 3337
50-ml conical tube  Corning 430828
6-OHDA Sigma-Aldrich H4381
6-well plate Corning 3516
Accutase Invitrogen A11105-01 Cell dissociation reagent
Apomorphine Sigma-Aldrich A4393
Ascorbic acid Sigma-Aldrich A92902 Toxic with skin contact 
B27 supplement  Invitrogen 17504044
BDNF Peprotech 450-02 Brain derived neurotrophic factor
Blood collection tubes containing sodium heparin BD 367871
BSA yisheng 36106es60 Fetal bovine serum
cAMP Sigma-Aldrich D0627 Dibutyryladenosine cyclic monophosphate
CellBanker 2 ZENOAQ 100ml Used as freezing medium for PBMNCs
Chemically defined lipid concentrate Invitrogen 11905031
CHIR99021 Gene Operation 04-0004
Coverslip Fisher 25*25-2
DAPI Sigma-Aldrich D8417-10mg
DAPT Sigma-Aldrich D5942
Dexamethasone Sigma-Aldrich D2915-100MG
DMEM-F12 Gibco 11330
DMEM-F12 Gibco 11320
Donkey serum Jackson 017-000-121
EPO Peprotech 100-64-50UG Human Erythropoietin
FGF8b Peprotech 100-25
Ficoll-Paque Premium GE Healthcare 17-5442-02 P=1.077, density gradient medium
GDNF Peprotech 450-10 Glial derived neurotrophic factor
GlutaMAX Invitrogen 21051024 100 × Glutamine stock solution
Ham's-F12 Gibco 11765-054
HBSS Invitrogen 14175079 Balanced salt solution
Human leukemia inhibitory factor Millpore LIF1010
Human recombinant SCF Peprotech 300-07-100UG
IGF-1 Peprotech 100-11-100UG Human insulin-like growth factor 
IL-3 Peprotech 200-03-10UG Human interleukin 3
IMDM Gibco 215056-023 Iscove's modified Dulbecco's medium
Insulin Roche  12585014
ITS-X Invitrogen 51500-056 Insulin-transferrin-selenium-X supplement
Knockout serum replacement Gibco 10828028 Serum free basal medium
Laminin Roche  11243217001
Microsyringe Hamilton 7653-01
N2 supplement  Invitrogen 17502048
NEAA Invitrogen 11140050 Non-essential amino acid
Neurobasal Gibco 10888 Basic medium
PDL Sigma-Aldrich P7280 Poly-D-lysine
SAG1 Enzo ALX-270-426-M01
SB431542 Gene Operation 04-0010-10mg Store from light at -20℃
Sendai virus Life Technologies MAN0009378
Sucrose baiaoshengke
TGFβⅢ Peprotech 100-36E Transforming growth factor  βⅢ
Transferrin R&D Systems 2914-HT-100G
Triton X 100 baiaoshengke Nonionic surfactant
Trypan blue Gibco T10282
Xylazine Sigma-Aldrich X1126

Referencias

  1. Williams-Gray, C. H., et al. The distinct cognitive syndromes of Parkinson’s disease: 5 year follow-up of the CamPaIGN cohort. Brain. 132, 2958-2969 (2009).
  2. Dexter, D. T., Jenner, P. Parkinson disease: from pathology to molecular disease mechanisms. Free Radical Biology and Medicine. 62, 132-144 (2013).
  3. Chen, Z. Cell Therapy for Parkinson’s Disease: New Hope from Reprogramming Technologies. Aging and Disease. 6 (6), 499-503 (2015).
  4. Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of Pluripotent Stem Cells from Mouse Embryonic and Adult Fibroblast Cultures by Defined Factors. Cell. 126 (4), 663-676 (2006).
  5. Doi, D., et al. Isolation of human induced pluripotent stem cell-derived dopaminergic progenitors by cell sorting for successful transplantation. Stem Cell Reports. 2 (3), 337-350 (2014).
  6. Kriks, S., et al. Dopamine neurons derived from human ES cells efficiently engraft in animal models of Parkinson’s disease. Nature. 480 (7378), 547-551 (2011).
  7. Perrier, A. L., et al. Derivation of midbrain dopamine neurons from human embryonic stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (34), 12543-12548 (2004).
  8. Kikuchi, T., et al. Human iPS cell-derived dopaminergic neurons function in a primate Parkinson’s disease model. Nature. 548 (7669), 592-596 (2017).
  9. Ma, T., Xie, M., Laurent, T., Ding, S. Progress in the reprogramming of somatic cells. Circulation Research. 112 (3), 562-574 (2013).
  10. Tang, X., et al. Conversion of adult human peripheral blood mononuclear cells into induced neural stem cell by using episomal vectors. Stem Cell Research. 16 (2), 236-242 (2016).
  11. Yuan, Y., et al. Dopaminergic precursors differentiated from human blood-derived induced neural stem cells improve symptoms of a mouse Parkinson’s disease model. Theranostics. 8 (17), 4679-4694 (2018).
  12. Takahashi, K., et al. Induction of Pluripotent Stem Cells from Adult Human Fibroblasts by Defined Factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  13. Aasen, T., et al. Efficient and rapid generation of induced pluripotent stem cells from human keratinocytes. Nature Biotechnology. 26 (11), 1276-1284 (2008).
  14. Thier, M., et al. Direct conversion of fibroblasts into stably expandable neural stem cells. Cell Stem Cell. 10 (4), 473-479 (2012).
  15. Takahashi, K., Okita, K., Nakagawa, M., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from fibroblast cultures. Nature Protocols. 2 (12), 3081-3089 (2007).
  16. Seki, T., Yuasa, S., Fukuda, K. Generation of induced pluripotent stem cells from a small amount of human peripheral blood using a combination of activated T cells and Sendai virus. Nature Protocols. 7 (4), 718-728 (2012).
  17. Bazley, F. A., et al. Direct Reprogramming of Human Primordial Germ Cells into Induced Pluripotent Stem Cells: Efficient Generation of Genetically Engineered Germ Cells. Stem Cells and Development. 24 (22), 2634-2648 (2015).
  18. Li, H. O., et al. A cytoplasmic RNA vector derived from nontransmissible Sendai virus with efficient gene transfer and expression. Journal of Virology. 74 (14), 6564-6569 (2000).
  19. Sochacki, J., Devalle, S., Reis, M., Mattos, P., Rehen, S. Generation of urine iPS cell lines from patients with Attention Deficit Hyperactivity Disorder (ADHD) using a non-integrative method. Stem Cell Research. 17 (1), 102-106 (2016).
  20. Ban, H., et al. Efficient generation of transgene-free human induced pluripotent stem cells (iPSCs) by temperature-sensitive Sendai virus vectors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (34), 14234-14239 (2011).
  21. Cho, M. S., et al. Highly efficient and large-scale generation of functional dopamine neurons from human embryonic stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (9), 3392-3397 (2008).
  22. Dowey, S. N., Huang, X., Chou, B. -. K., Ye, Z., Cheng, L. Generation of integration-free human induced pluripotent stem cells from postnatal blood mononuclear cells by plasmid vector expression. Nature Protocols. 7 (11), 2013-2021 (2012).
  23. Zhu, S., et al. Reprogramming of human primary somatic cells by OCT4 and chemical compounds. Cell Stem Cell. 7 (6), 651-655 (2010).
  24. Ono, Y., et al. Differences in neurogenic potential in floor plate cells along an anteroposterior location: midbrain dopaminergic neurons originate from mesencephalic floor plate cells. Development. 134 (17), 3213-3225 (2007).
  25. Kirkeby, A., et al. Generation of regionally specified neural progenitors and functional neurons from human embryonic stem cells under defined conditions. Cell Reports. 1 (6), 703-714 (2012).
  26. Chambers, S. M., et al. Highly efficient neural conversion of human ES and iPS cells by dual inhibition of SMAD signaling. Nature Biotechnology. 27 (3), 275-280 (2009).
  27. Fasano, C. A., Chambers, S. M., Lee, G., Tomishima, M. J., Studer, L. Efficient derivation of functional floor plate tissue from human embryonic stem cells. Cell Stem Cell. 6 (4), 336-347 (2010).
  28. Harvey, B. K., Wang, Y., Hoffer, B. J. Transgenic rodent models of Parkinson’s disease. Acta Neurochirurgica Supplements. 101, 89-92 (2008).
  29. Sheng, C., et al. Generation of dopaminergic neurons directly from mouse fibroblasts and fibroblast-derived neural progenitors. Cell Research. 22 (4), 769-772 (2012).
  30. Prasad, A., et al. A review of induced pluripotent stem cell, direct conversion by trans-differentiation, direct reprogramming and oligodendrocyte differentiation. Regenerative Medicine. 11 (2), 181-191 (2016).

Play Video

Citar este artículo
Zheng, W., Chen, Z. Generation of Induced Neural Stem Cells from Peripheral Mononuclear Cells and Differentiation Toward Dopaminergic Neuron Precursors for Transplantation Studies. J. Vis. Exp. (149), e59690, doi:10.3791/59690 (2019).

View Video